Жасмонат ( JA ) и его производные — это растительные гормоны на основе липидов , которые регулируют широкий спектр процессов в растениях, от роста и фотосинтеза до репродуктивного развития. В частности, JA имеют решающее значение для защиты растений от травоядных и реакции растений на плохие условия окружающей среды и другие виды абиотических и биотических проблем. [1] Некоторые JA также могут выделяться в виде летучих органических соединений (ЛОС), обеспечивая связь между растениями в ожидании взаимных опасностей. [2]
Выделение метилжасмоната (MeJA) из жасминового масла, полученного из Jasminum grandiflorum, привело к открытию молекулярной структуры жасмонатов и их названию в 1962 году [3] [4] , в то время как сама жасмоновая кислота была выделена из Lasiodiplodia theobromae Олдериджем и др. в 1971 году [4].
Биосинтез рассмотрен Acosta и Farmer 2010, Wasternack и Hause 2013 и Wasternack и Song 2017. [4] Жасмонаты (JA) являются оксилипинами , т. е. производными оксигенированной жирной кислоты. Они биосинтезируются из линоленовой кислоты в мембранах хлоропластов. Синтез начинается с превращения линоленовой кислоты в 12-оксо-фитодиеноевую кислоту (OPDA), которая затем подвергается восстановлению и трем циклам окисления с образованием (+)-7-изо-JA, жасмоновой кислоты. Только превращение линоленовой кислоты в OPDA происходит в хлоропласте ; все последующие реакции происходят в пероксисоме . [5]
Сам JA может далее метаболизироваться в активные или неактивные производные. Метил JA (MeJA) является летучим соединением, которое потенциально отвечает за межрастительную коммуникацию . JA, конъюгированный с аминокислотой изолейцином (Ile), дает JA-Ile ((+)-7-изо-жасмоноил- L -изолейцин), который, как обнаружили Фонсека и др. в 2009 году, участвует в большинстве сигналов JA [6] - см. также обзор Катсира и др. в 2008 году. [5] Однако Ван Поке и Дике в 2003 году обнаружили, что эмиссия летучих веществ Arabidopsis не требует JA-Ile, как и ВанДоорн и др. в 2011 году для устойчивости Solanum nigrum к травоядным животным . [6] JA подвергается декарбоксилированию с образованием цис-жасмона .
Хотя жасмонат (JA) регулирует множество различных процессов в растении, его роль в реакции на рану изучена лучше всего. После механического ранения или травоядности биосинтез JA быстро активируется, что приводит к экспрессии соответствующих генов ответа. Например, у томата ранение производит защитные молекулы, которые подавляют пищеварение листьев в кишечнике насекомых . Другим косвенным результатом сигнализации JA является летучая эмиссия соединений, полученных из JA. MeJA на листьях может перемещаться по воздуху к близлежащим растениям и повышать уровни транскриптов, связанных с реакцией на рану. [1] В целом, эта эмиссия может дополнительно повышать регуляцию биосинтеза JA и клеточной сигнализации , тем самым побуждая близлежащие растения подготовить свою защиту в случае травоядности.
JA также вовлечены в гибель клеток и старение листьев. JA может взаимодействовать со многими киназами и факторами транскрипции, связанными со старением. JA также может вызывать гибель митохондрий, вызывая накопление активных форм кислорода (ROS). Эти соединения разрушают мембраны митохондрий и подвергают риску клетку, вызывая апоптоз или запрограммированную гибель клеток. Роль JA в этих процессах предполагает методы, с помощью которых растение защищает себя от биотических проблем и ограничивает распространение инфекций . [7]
ЖАК и его производные также участвуют в развитии растений, симбиозе и множестве других процессов, включенных в список ниже.
Pseudomonas syringae вызывает бактериальную пятнистость томатов, перехватывая сигнальный путь жасмоната (JA) растения. Эта бактерия использует систему секреции типа III для инъекции коктейля вирусных эффекторных белков в клетки-хозяева.
Одной из молекул, входящих в эту смесь, является фитотоксин коронатин (COR). Растения, нечувствительные к JA, обладают высокой устойчивостью к P. syringae и не реагируют на COR; кроме того, применение MeJA было достаточным для восстановления вирулентности мутантных бактерий COR. Инфицированные растения также экспрессировали нижестоящие гены JA и гены реакции на рану, но подавляли уровни генов, связанных с патогенезом (PR). Все эти данные свидетельствуют о том, что COR действует через путь JA, чтобы вторгнуться в растения-хозяева. Предполагается, что активация реакции на рану происходит за счет защиты от патогена. Активируя путь реакции на рану JA, P. syringae может отвлекать ресурсы от иммунной системы своего хозяина и заражать более эффективно. [16]
Растения вырабатывают N-ациламиды , которые обеспечивают устойчивость к некротрофным патогенам путем активации биосинтеза и сигнализации JA. Арахидоновая кислота (AA), аналог предшественника JA α-LeA, встречающегося у видов метазоа , но не у растений, воспринимается растениями и действует через повышение уровня JA одновременно с устойчивостью к некротрофным патогенам. AA является эволюционно консервативной сигнальной молекулой , которая действует в растениях в ответ на стресс, аналогичный таковому в животных системах. [17]
Хотя путь жасмоната (JA) имеет решающее значение для реакции на рану, это не единственный сигнальный путь, опосредующий защиту в растениях. Чтобы построить оптимальную, но эффективную защиту, различные пути защиты должны быть способны к перекрестному общению для тонкой настройки и определения ответов на абиотические и биотические вызовы.
Один из наиболее изученных примеров перекрестного взаимодействия JA происходит с салициловой кислотой (SA). SA, гормон, опосредует защиту от патогенов, вызывая как экспрессию генов, связанных с патогенезом, так и системную приобретенную устойчивость (SAR), при которой все растение приобретает устойчивость к патогену после локального воздействия на него.
Рана и реакция на патоген, по-видимому, взаимодействуют отрицательно. Например, подавление фенилаланинаммиачной лиазы (PAL), фермента, синтезирующего предшественников SA, снижает SAR, но усиливает устойчивость травоядных к насекомым. Аналогично, повышенная экспрессия PAL усиливает SAR, но снижает реакцию на рану после травоядных насекомых. [18] В целом было обнаружено, что патогены, живущие в живых растительных клетках, более чувствительны к защите, вызванной SA, в то время как травоядные насекомые и патогены, которые получают выгоду от смерти клеток, более восприимчивы к защите JA. Таким образом, этот компромисс в путях оптимизирует защиту и экономит растительные ресурсы. [19]
Перекрестные связи также происходят между JA и другими путями гормонов растений, такими как абсцизовая кислота (ABA) и этилен (ET). Эти взаимодействия аналогичным образом оптимизируют защиту от патогенов и травоядных животных с различным образом жизни. Например, активность MYC2 может стимулироваться как путями JA, так и путями ABA, что позволяет ей интегрировать сигналы с обоих путей. Другие факторы транскрипции, такие как ERF1, возникают в результате сигнализации JA и ET. Все эти молекулы могут действовать в комбинации, активируя определенные гены реакции на рану. [19]
Наконец, перекрестные разговоры не ограничиваются защитой: взаимодействия JA и ET также имеют решающее значение для развития, и баланс между двумя соединениями необходим для правильного развития апикальных крючков в сеянцах Arabidopsis . Тем не менее, необходимы дальнейшие исследования для выяснения молекул, регулирующих такие перекрестные разговоры. [18]
В целом, этапы сигнализации жасмоната (JA) отражают этапы сигнализации ауксина : первый этап включает комплексы убиквитинлигазы E3, которые помечают субстраты убиквитином, чтобы пометить их для деградации протеасомами . Второй этап использует факторы транскрипции для осуществления физиологических изменений. Одной из ключевых молекул в этом пути является JAZ, которая служит переключателем включения-выключения для сигнализации JA. В отсутствие JA белки JAZ связываются с нижестоящими факторами транскрипции и ограничивают их активность. Однако в присутствии JA или его биоактивных производных белки JAZ деградируют, освобождая факторы транскрипции для экспрессии генов, необходимых в ответах на стресс . [20]
Поскольку JAZ не исчезал в нулевых мутантных растениях coi1 , было показано, что белок COI1 опосредует деградацию JAZ. COI1 принадлежит к семейству высококонсервативных белков F-box и рекрутирует субстраты для E3 убиквитинлигазы SCF COI1 . Комплексы, которые в конечном итоге образуются, известны как комплексы SCF . [21] Эти комплексы связывают JAZ и направляют его на протеасомную деградацию. Однако, учитывая большой спектр молекул JA, не все производные JA активируют этот путь для сигнализации, и диапазон тех, кто участвует в этом пути, неизвестен. [5] До сих пор было показано, что только JA-Ile необходим для деградации JAZ11, опосредованной COI1. JA-Ile и структурно родственные производные могут связываться с комплексами COI1-JAZ и способствовать убиквитинированию и, таким образом, деградации последнего. [5]
Эта механистическая модель повышает вероятность того, что COI1 служит внутриклеточным рецептором для сигналов JA. Недавние исследования подтвердили эту гипотезу, продемонстрировав, что комплекс COI1-JAZ действует как корецептор для восприятия JA. В частности, JA-Ile связывается как с лиганд-связывающим карманом в COI1, так и с 20-аминокислотным участком консервативного мотива Jas в JAZ. Этот остаток JAZ действует как пробка для кармана в COI1, удерживая JA-Ile связанным в кармане. Кроме того, Sheard et al 2010 [22] совместно очистили и впоследствии удалили инозитолпентакисфосфат (InsP 5 ) из COI1, продемонстрировав, что InsP 5 является необходимым компонентом корецептора и играет роль в потенцировании корецепторного комплекса. Результаты Sheard могут показать различную специфичность связывания для различных комплексов SCF COI1 -InsP 5 -JAZ. [6]
После освобождения от JAZ факторы транскрипции могут активировать гены, необходимые для специфического ответа JA. Наиболее изученные факторы транскрипции, действующие в этом пути, относятся к семейству факторов транскрипции MYC, которые характеризуются основным мотивом связывания ДНК спираль-петля-спираль (bHLH). Эти факторы (их три, MYC2, 3 и 4) имеют тенденцию действовать аддитивно. Например, растение, которое потеряло только один myc, становится более восприимчивым к травоядным насекомым, чем нормальное растение. Растение, которое потеряло все три, будет столь же восприимчивым к повреждениям, как мутанты coi1, которые полностью не реагируют на JA и не могут обеспечить защиту от травоядных. Однако, хотя все эти молекулы MYC имеют общие функции, они сильно различаются по паттернам экспрессии и функциям транскрипции. Например, MYC2 оказывает большее влияние на рост корней по сравнению с MYC3 или MYC4. [8]
Кроме того, MYC2 будет возвращаться в исходное положение и регулировать уровни экспрессии JAZ, что приведет к отрицательной обратной связи . [8] Все эти факторы транскрипции оказывают различное влияние на уровни JAZ после сигнализации JA. Уровни JAZ, в свою очередь, влияют на уровни экспрессии факторов транскрипции и генов. Другими словами, помимо активации различных генов ответа, факторы транскрипции могут изменять уровни JAZ для достижения специфичности в ответ на сигналы JA.