Внутренняя клеточная масса ( ICM ) или эмбриобласт (известный как плюробласт у сумчатых ) представляет собой структуру на ранних стадиях развития эмбриона . Именно масса клеток внутри бластоцисты в конечном итоге даст начало дефинитивным структурам плода . Внутренняя клеточная масса формируется на самых ранних стадиях эмбрионального развития , до имплантации в эндометрий матки . [1] ICM полностью окружен одним слоем клеток трофобласта трофэктодермы .
Физическое и функциональное отделение внутренней клеточной массы от трофэктодермы (TE) является особенностью развития млекопитающих и первой спецификацией клеточных линий у этих эмбрионов. После оплодотворения в яйцеводе эмбрион млекопитающих подвергается относительно медленному дроблению с образованием восьмиклеточной морулы . Каждая клетка морулы, называемая бластомером, увеличивает поверхностный контакт со своими соседями в процессе, называемом уплотнением. Это приводит к поляризации клеток внутри морулы, и в результате дальнейшего расщепления образуется бластоциста, состоящая примерно из 32 клеток. [2] У мышей около 12 внутренних клеток составляют новую внутреннюю клеточную массу, а 20–24 клетки составляют окружающую трофэктодерму. [3] [4] Между видами млекопитающих существуют различия в количестве клеток при уплотнении: у бычьих эмбрионов различия, связанные с уплотнением, наблюдаются уже на 9-15 клетках, а у кроликов - только после 32 клеток. [5] Существуют также межвидовые различия в характере экспрессии генов у ранних эмбрионов. [6]
ICM и TE будут генерировать совершенно разные типы клеток по мере начала имплантации и продолжения эмбриогенеза. Клетки трофэктодермы образуют внеэмбриональные ткани, которые выполняют вспомогательную роль для самого эмбриона. Более того, эти клетки перекачивают жидкость внутрь бластоцисты, вызывая образование поляризованной бластоцисты с ICM, прикрепленным к трофэктодерме на одном конце (см. Рисунок). Эта разница в клеточной локализации приводит к тому, что клетки ICM, находящиеся в полости с жидкостью, принимают судьбу примитивной энтодермы (или гипобласта), в то время как оставшиеся клетки принимают судьбу примитивной эктодермы (или эпибласта). Гипобласт вносит вклад во внеэмбриональные мембраны, а эпибласт дает начало собственно эмбриону, а также некоторым внеэмбриональным тканям . [2]
Поскольку сегрегация плюрипотентных клеток внутренней клеточной массы от остальной части бластоцисты является неотъемлемой частью развития млекопитающих, были проведены значительные исследования для выяснения соответствующих клеточных и молекулярных механизмов этого процесса. Основной интерес представляет то, какие транскрипционные факторы и сигнальные молекулы управляют асимметричными делениями бластомеров, приводящими к так называемым внутренним и внешним клеткам и, таким образом, к спецификации клеточных клонов. Однако из-за изменчивости и регулятивной природы эмбрионов млекопитающих экспериментальные доказательства установления этих ранних судеб остаются неполными. [3]
На уровне транскрипции все транскрипционные факторы Oct4, Nanog, Cdx2 и Tead4 участвуют в установлении и усилении спецификации ICM и TE у ранних эмбрионов мышей. [3]
Вместе эти факторы транскрипции функционируют в петле положительной обратной связи , которая усиливает клеточное распределение ICM в TE. Начальная поляризация бластомеров происходит на стадии 8-16 клеток. Апикально-базолатеральная полярность видна благодаря визуализации апикальных маркеров, таких как Par3, Par6 и aPKC, а также базального маркера E-кадгерина. [3] Считается, что установление такой полярности во время уплотнения создает идентичность окружающей среды для внутренних и внешних клеток эмбриона. Следовательно, стохастическая экспрессия вышеупомянутых факторов транскрипции усиливается в петлю обратной связи, которая определяет судьбу внешних клеток на судьбу TE, а внутри клеток - судьбу ICM. В модели апикальная среда включает Cdx2 , который усиливает свою собственную экспрессию посредством нижестоящего транскрипционного фактора Elf5. Вместе с третьим фактором транскрипции, Eomes, эти гены подавляют гены плюрипотентности, такие как Oct4 и Nanog , во внешних клетках. [3] [9] Таким образом, ТЕ уточняется и дифференцируется. Однако внутри клеток ген Cdx2 не включается и экспрессируются высокие уровни Oct4 , Nanog и Sox2 . [3] [4] Эти гены подавляют Cdx2 , а внутренние клетки сохраняют плюрипотентность, генерируя ICM и, в конечном итоге, остальную часть самого эмбриона.
Хотя эта дихотомия генетических взаимодействий явно необходима для разделения бластомеров мышиного эмбриона как на ICM, так и на TE идентичности, инициация этих петель обратной связи остается дискуссионной. Неясно, устанавливаются ли они стохастически или посредством еще более ранней асимметрии, и текущие исследования направлены на выявление более ранних маркеров асимметрии. Например, некоторые исследования коррелируют первые два расщепления во время эмбриогенеза относительно предполагаемых животных и растительных полюсов с окончательной спецификацией. Асимметричное разделение эпигенетической информации во время этих первых двух расщеплений, а также ориентация и порядок, в котором они происходят, могут способствовать положению клетки либо внутри, либо снаружи морулы. [12] [13]
Бластомеры, выделенные из ICM эмбрионов млекопитающих и выращенные в культуре, известны как эмбриональные стволовые (ЭС) клетки. Эти плюрипотентные клетки при выращивании в тщательно скоординированной среде могут дать начало всем трем зародышевым слоям (эктодерме, энтодерме и мезодерме) взрослого организма. [14] Например, транскрипционный фактор LIF4 необходим для поддержания ES клеток мыши in vitro. [15] Бластомеры диссоциируются от изолированного ICM в ранней бластоцисте, и их транскрипционный код, управляемый Oct4 , Sox2 и Nanog , помогает поддерживать недифференцированное состояние.
Одним из преимуществ регуляторной природы развития эмбрионов млекопитающих является манипулирование бластомерами ICM для создания нокаутных мышей . У мышей мутации интересующего гена могут быть ретровирусно введены в культивируемые ES-клетки, и они могут быть повторно введены в ICM интактного эмбриона. В результате получается химерная мышь, часть клеток которой содержит геном ES-клеток. Целью такой процедуры является включение мутировавшего гена в зародышевую линию мыши таким образом, чтобы в ее потомстве отсутствовала одна или обе аллели интересующего гена. Генетики широко используют эту технику манипуляции ICM при изучении функции генов в системе млекопитающих. [2] [14]