Гипоксия опухоли — это ситуация, когда опухолевые клетки лишены кислорода . По мере роста опухоли она быстро перерастает свое кровоснабжение, оставляя части опухоли с областями, где концентрация кислорода значительно ниже, чем в здоровых тканях. Гипоксическая микросреда в солидных опухолях является результатом потребления доступного кислорода в пределах 70–150 мкм сосудистой сети опухоли быстро пролиферирующими опухолевыми клетками, тем самым ограничивая количество кислорода, доступного для дальнейшей диффузии в опухолевую ткань. Для того чтобы поддерживать непрерывный рост и пролиферацию в сложных гипоксических условиях, раковые клетки, как обнаружено, изменяют свой метаболизм. Кроме того, известно, что гипоксия изменяет поведение клеток и связана с ремоделированием внеклеточного матрикса и повышенным миграционным и метастатическим поведением. [1] [2]
Определенное изменение метаболизма, исторически известное как эффект Варбурга [3], приводит к высоким показателям гликолиза как в нормоксических , так и в гипоксических раковых клетках. Экспрессия генов, ответственных за гликолитические ферменты и транспортеры глюкозы, усиливается многочисленными онкогенами, включая RAS, SRC и MYC. [4] [5]
Во время прогрессирования рака опухолевые клетки приобретают комплексное метаболическое перепрограммирование, а гипоксия тканей является характерной чертой солидных опухолей, что приводит к адаптивным изменениям клеточного метаболизма. Фактор-1α, индуцируемый гипоксией (HIF-1α), является ключевым активатором транскрипции, регулируемым кислородом, играющим фундаментальную роль в адаптации опухолевых клеток к гипоксии путем повышения регуляции транскрипции целевых генов, связанных с множественными биологическими процессами, включая выживание клеток, пролиферацию, ангиогенез и антиапоптоз. Значительная экспрессия HIF1A была отмечена в большинстве исследованных солидных опухолей, включая рак желудка и толстой кишки. [6]
Эти гены включают: семейство переносчиков растворенных веществ 2 ( GLUT1 ), гексокиназу (HK), фосфоглюкозоизомеразу (PGI), фосфофруктокиназу (PFKL), фруктозобисфосфатальдолазу (ALDO), глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназу (GAPDH), фосфоглицераткиназу (PGK), фосфоглицератмутазу (PGM), енолазу 1 (ENOA), пируваткиназу (PK), киназу пируватдегидрогеназы , изозим 1 (PDK1) и лактатдегидрогеназу A (LDH-A). [7]
В дополнение к изменениям концентрации кислорода, связанным с гипоксической микросредой, градиенты концентрации глюкозы, обнаруженные в опухолях, также влияют на скорость аэробного и анаэробного гликолиза. Элемент углеводного ответа (ChoRE) отвечает за регуляцию экспрессии генов гликолитических ферментов в ответ на изменение концентрации глюкозы посредством связывающего взаимодействия в той же консенсусной последовательности, что и HIF-1. Взаимодействие HIF-1 и ChoRE с последовательностью ДНК 5'-RCGTG-3' приводит к повышенной экспрессии генов, перечисленных выше. [8]
GLUT1 является членом семейства транспортеров GLUT из 14 транспортеров гексоз, ответственных за облегчение транспорта гексозных сахаров по градиенту концентрации. GLUT1 является наиболее широко экспрессируемым из семейства, которое, как полагают, поддерживает базальный транспорт глюкозы почти во всех типах клеток. Было показано, что уровни GLUT1 в ответ на гипоксические условия увеличиваются с изменениями как на уровне мРНК, так и на уровне белка. [9] Более того, было показано, что транспорт GLUT1 увеличивается в этих гипоксических условиях. С ролью транспортировки сахаров из внеклеточной во внутриклеточную среду GLUT1, наряду с другими членами семейства GLUT, может контролировать скорость клеточного гликолитического метаболизма. Повышенный уровень GLUT1 в случае гипоксических опухолей увеличивает поток глюкозы в клетки, обеспечивая более высокую скорость гликолиза и, таким образом, больший риск метастазирования (как подробно описано ниже). [10]
Гексокиназа (HK) является первым ферментом в гликолитическом пути, преобразующим глюкозу в глюкозо-6-фосфат через событие фосфорилирования, зависящее от АТФ. Важно, чтобы гликолиз продолжался, реакция гексокиназы активирует глюкозу для последующих этапов. В гипоксических опухолях значительно увеличивается количество мРНК гексокиназы, а также уровень белка. [11] Повышенная экспрессия гексокиназы 2, в некоторых случаях почти в 10 раз, обеспечивает повышенный поток глюкозы через гликолитический путь после повышенного поглощения GLUT1.< [12]
Фосфоглюкозоизомераза (PGI) — это цитозольный фермент, выполняющий функции как в гликолизе, так и в глюконеогенезе. Он отвечает за катализ взаимопревращения глюкозо-6-фосфата и фруктозо-6-фосфата. Внеклеточно PGI известен как аутокринный фактор подвижности (AMF), вызывающий митогенные, мотогенные функции, функции дифференциации, а также прогрессирование опухоли и метастазирование. [13] Активация PGI посредством предполагаемых механизмов, индуцированных HIF-1, приводит к повышению превращения глюкозо-6-фосфата во фруктозо-6-фосфат, а также способствует подвижности клеток и инвазии при метастазировании рака.
6-Фосфофрукто-2-киназы/фруктозо-2,6-бисфосфатазы (PFKFB) относятся к семейству бифункциональных АТФ-зависимых ферментов, ответственных за контроль уровня промежуточного продукта гликолиза фруктозо-1,6-бисфосфата. Индуцированная HIF-1 экспрессия этих ферментов (PFK-2/FBPase-2) впоследствии изменяет баланс фруктозо-2,6-бисфосфата, который играет важную роль в качестве аллостерического активатора фосфофруктокиназы 1 (PFK-1). PFK-1 — это фермент, который контролирует один из наиболее критических этапов гликолиза. Регулирование PFK-1 также опосредовано клеточным энергетическим статусом в результате ингибирующего эффекта АТФ. Большее количество фруктозо-2,6-бисфосфата в раковых клетках в результате экспрессии HIF-1 PFK-2/FBPase-2, таким образом, активирует PFK-1, что позволяет увеличить гликолитический поток, преобразующий фруктозо-6-фосфат в фруктозо-1,6-бисфосфат. Аллостерическая регуляция гликолиза фруктозо-2,6-бисфосфатом позволяет раковым клеткам поддерживать гликолитический баланс, соответствующий их биоэнергетическим и биосинтетическим потребностям. [14]
Фруктозо-1,6-бисфосфат альдолаза (ALDO) принадлежит к семейству, включающему альдолазу A, B и C. Уникальные в гликолизе ферменты альдолаза расщепляют фруктозо-1,6-бисфосфат на две молекулы 3-C, включая глицеральдегид-3-фосфат (GAP) и дигидроксиацетонфосфат (DHAP). При опосредованной HIF-1 экспрессии альдолазы A в гипоксических условиях катализ фруктозо-2,6-бисфосфата в глицеральдегид-3-фосфат и дигидроксиацетонфосфат увеличивается, что приводит к увеличению гликолитического потока. [15]
Гликолитический фермент глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназа (GAPDH) отвечает за окислительное превращение глицеральдегид-3-фосфата (GADP) в 1,3-бисфосфоглицерат (1,3BPG). Повышение экспрессии глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназы максимально (в 4-5 раз) после гипоксических условий продолжительностью ~24 часа в эндотелиальных клетках сосудов. [16] Были предложены различные модели точных механизмов активации глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназы.
Было показано, что гипоксия вызывает 10-кратное накопление мРНК фосфоглицераткиназы 1 (PGK-1) в клетках мышиной гепатомы (Hepa 1c1c7). Фосфоглицераткиназа 1 — это фермент, участвующий в превращении 1,3-бисфосфоглицерата (1,3-BPG) в 3-фосфоглицерат (3-PG), что приводит к образованию АТФ из АДФ. Считается, что индукция экспрессии генов HIF-1 зависит от присутствия ядерного транслокатора ароматического углеводородного рецептора (ARNT1). Считается, что N-концевая область Arnt и HIF-1 работают вместе, чтобы вызвать транскрипцию фосфоглицераткиназы 1. [17]
Фосфоглицератмутаза B (PGM-B) является одним из последних гликолитических ферментов, ответственных за преобразование 3-фосфоглицерата (3PG) в 2-фосфоглицерат (2PG). Было показано, что уровни белка и мРНК увеличиваются в 2-3 раза в исследованиях, подвергающих фибробласты легких плода крысы гипоксическим условиям. Повышенные уровни, по-видимому, регулируются на уровне транскрипции, как и многие другие гликолитические ферменты. Максимальная регуляция была показана через 16 часов, что подтверждает ее роль в содействии увеличению гликолитического потока для адаптации клеток к гипоксии. [18]
Энолаза 1, также известная как α-енолаза, кодируется геном ENOA и отвечает за преобразование 2-фосфоглицерата в фосфоенолпируват в гликолитическом пути. Как сверхэкспрессия энолазы 1, так и ее посттрансляционные модификации могут иметь ценность для диагностической и прогностической работы с точки зрения рака. Хотя точные роли посттрансляционных модификаций не были полностью выяснены, показаны закономерности между определенными типами раковых клеток, предполагающие, что они могут иметь важное влияние на функцию, локализацию и иммуногенность. [19] Помимо своей роли в содействии гликолитическому потоку и анаэробной выработке энергии, было показано, что она вызывает специфический гуморальный и клеточный иммунный ответ. На всех уровнях вызванная гипоксией сверхэкспрессия энолазы 1 может играть важную роль в гипоксических опухолях, включая наиболее прямолинейное увеличение анаэробного дыхания.
HIF-1 активирует пируваткиназу M в нескольких изоформах, известных как PKM1 и PKM2. Показано, что пируваткиназа преобразует фосфоенолпируват в пируват, образуя АТФ из АДФ. Наряду с фосфофруктокиназой 1, пируваткиназа также аллостерически активируется фруктозо-2,6-бисфосфатом. Было показано, что в раковых клетках пируваткиназа M2 напрямую взаимодействует с HIF-1α, усиливая связывание HIF-1 и привлечение p300 к элементам ответа на гипоксию. Эта положительная обратная связь приводит к трансактивации HIF-1 и усилению влияния на метаболизм глюкозы. [20]
Пируваткиназу M2 часто считают основным регулятором метаболизма рака, играющим роль в различных параллельных, прямых, положительных и отрицательных механизмах обратной связи. Генетическое различие между пируваткиназой M1 и пируваткиназой M2 составляет всего 22 из 531 аминокислот, что имеет огромное значение. Пируваткиназа M2 имеет метаболическую активность, регулируемую посттрансляционными модификациями, включая ацетилирование, окисление, фосфорилирование, гидроксилирование и сумоилирование. Эти различные модификации могут вызывать переход от метаболически активной тетрамерной формы к неактивной мономерной форме. Показано, что хорошо известная EGFR-активируемая внеклеточная регулируемая сигналом киназа 2 (ERK2) и ассоциированная со смертью протеинкиназа связывают и напрямую фосфорилируют пируваткиназу M2, что приводит к повышению активности в пути гликолиза. [21] В гипоксических условиях, обнаруженных в солидной опухоли, пируваткиназа M2 играет большую роль в содействии анаэробной выработке энергии.
Пируватдегидрогеназа напрямую следует гликолитическому пути и отвечает за превращение пирувата в ацетил-КоА, который входит в цикл TCA. Цикл TCA, хотя и не требует непосредственно кислорода, требует циклирования NADH в NAD+, которое выполняется цепью переноса электронов в аэробных условиях. В анаэробных условиях, таких как те, которые обнаруживаются в гипоксических опухолях, цикл TCA обеспечивает небольшой выход АТФ из-за отсутствия функции цепи переноса электронов. Для того чтобы направить гликолитически произведенный пируват из цикла TCA, киназа пируватдегидрогеназы сверхэкспрессируется в ответ на гипоксические условия. Киназа пируватдегидрогеназы не является гликолитическим ферментом, а скорее гликолитическим регулятором. Киназы пируватдегидрогеназы, транскрипционно активируемые HIF-1 в гипоксических условиях, отвечают за фосфорилирование субъединицы E1 пируватдегидрогеназы, в конечном итоге подавляя ее функцию. [22] При ингибировании этого специфического пути гликолитические продукты направляются из митохондриального цикла трикарбоновых кислот в сторону лактатдегидрогеназы. [23]
Активированная экспрессия лактатдегидрогеназы A (LDH-A), параллельная деактивации пируватдегидрогеназы, опосредованной киназой пируватдегидрогеназы. Последующая инактивация пируватдегидрогеназы после фосфорилирования и повышенная экспрессия лактатдегидрогеназы A отводит пируват от митохондриального цикла TCA. Во многих различных типах опухолей лактатдегидрогеназа A обнаруживается на повышенных уровнях и даже связана с плохим прогнозом и большим метастатическим потенциалом [24] Высокие уровни продукции лактата поднимают вопрос о том, оказывает ли лактат какое-либо влияние на агрессивное поведение, наблюдаемое в гипоксических опухолях.
Повышенная экспрессия почти каждого гликолитического фермента наблюдается в гипоксических опухолевых состояниях. Повышенная экспрессия этих белков опосредована HIF-1 и полностью изменяет нормальный клеточный метаболизм. При снижении скорости митохондриального окисления начинают накапливаться лактат и протоны. Высокий уровень гликолиза и выработка лактата, как показано в гипоксических опухолевых клетках, является отличительной чертой раковых клеток даже в присутствии кислорода.
Чтобы избавить опухолевые клетки от ацидоза , карбоангидразы, по-видимому, снова высоко экспрессируются ниже активации HIF-1. Эти ферменты катализируют обратимую гидратацию углекислого газа в бикарбонат и протоны. Они также помогают подкислять внеклеточную среду и поддерживать слегка щелочные внутриклеточные отсеки, способствуя выживанию опухолевых клеток. [25] Лактат из гипоксических опухолевых клеток выделяется в окружающую среду карбоангидразой 9 и натрий-водородным обменником 1 MCT4. Предполагается, что местные аэробные раковые клетки поглощают этот лактат, образуя метаболический симбиоз. [26]
Общепризнанно, что раковые клетки (как гипоксические, так и нормоксические ) вырабатывают большое количество лактата в результате большого метаболического сдвига от окислительного фосфорилирования к измененному гликолизу. Высокие уровни высвобождаемого лактата способствуют иммунному ускользанию опухолевых клеток. Активированные Т-клетки используют гликолиз в качестве источника энергии и, таким образом, должны регулировать свои собственные уровни лактата. Традиционно это делается методом секреции, иммунные клетки в среде, богатой лактатом, не могут избавиться от своего собственного лактата из-за градиента концентрации. Считается, что лейкоциты могут быть асфиксированы лактатом, в то время как низкие внеклеточные pH могут также снижать цитотоксическую функцию Т-клеток. [27]
В эндотелиальных клетках также было показано, что лактат стимулирует выработку фактора роста эндотелия сосудов (VEGF), что приводит к усилению клеточной миграции в результате ангиогенеза, вызванного лактатом [28]. Недавние исследования также выявили, что поглощение лактата MCT-1 в эндотелиальных клетках стимулирует активацию NF-κB и, таким образом, экспрессию IL-8. Высвобождение лактата из опухолевых клеток через MCT-4 было достаточным для стимуляции ангиогенеза и роста опухоли через механизм, зависимый от IL-8.
Лактат продемонстрировал способность увеличивать выработку гиалуронана, что приводит к повышенной экспрессии CD44. Гиалуронан — это гликозаминогликановый полимер, критически важный для поддержания целостности внеклеточного матрикса и модуляции межклеточных взаимодействий. Гиалуронан прикреплен к клеточным поверхностям с помощью CD44, которые закреплены в липидных плотах, богатых кавеолином. Расщепление и дальнейшая деградация гиалуронана облегчаются Hyal2 и Hyal1 соответственно. [29] Повышенные уровни гиалуронана, окружающие карциномы, приводят к стимуляции клеточного роста и подвижности. Был идентифицирован чувствительный к лактату элемент ответа для генов в фибробластах, участвующих в метаболизме гиалуронана.
Наконец, стоит также отметить, что концентрации лактата положительно коррелируют с радиорезистентностью . Многие противораковые терапии, включая ионизирующее излучение и многие химиотерапевтические препараты, полагаются на перепроизводство активных форм кислорода, чтобы вызвать геномную нестабильность. Лактат, как антиоксидант, может действовать, чтобы вычищать уровни активных форм кислорода, тем самым повышая устойчивость к радиации и химиотерапии. [30]
Считается, что низкий pH гипоксических опухолей в результате высокого уровня молочной кислоты может способствовать инвазии опухолевых клеток путем разрушения прилегающих нераковых тканей. [31] Карбоангидраза 9, участвующая в поддержании слегка щелочного внутриклеточного pH, делает это путем удаления карбоната из внеклеточного пространства, в результате чего подкисляется окружающая среда клеток. Более того, перекачка протонов из гипоксических опухолевых клеток еще больше снижает окружающий pH. С другой стороны, как кратко обсуждалось выше, аутокринная функция фосфоглюкозоизомеразы также способствует подвижности клеток и метастазированию.
Поскольку гипоксические опухолевые клетки потребляют большое количество глюкозы для поддержания энергетического гомеостаза , опухоль нашла способ использовать свои ресурсы наиболее эффективно. Конечный гликолитический продукт гипоксических опухолей, лактат, транспортируется из гипоксической клетки монокарбоксилатным транспортером 4 (MCT4), который является транспортером, индуцируемым гипоксией. Свободный лактат во внеклеточном пространстве затем поглощается монокарбоксилатным транспортером 1 (MCT1), который является негипоксией индуцируемым транспортером, обнаруженным на поверхности аэробных клеток. Этот транспортер позволяет аэробным раковым клеткам эффективно поглощать лактат, преобразовывать его обратно в пируват с помощью кислородзависимой экспрессии лактатдегидрогеназы B (LDH-B) и использовать его в качестве источника энергии. Это освобождает эти клетки от необходимости в больших количествах глюкозы, позволяя гипоксическим клеткам поглощать большую часть доступных ресурсов.
Опухолевые клетки также продемонстрировали замечательную способность адаптироваться к региональным изменениям доступности кислорода. Раковые клетки демонстрируют способность быть гипоксическими в один момент времени и аэробными в следующий. [32] Это показывает циклические изменения в оксигенации, подразумевающие динамическую регуляцию метаболического симбиоза между состояниями, продуцирующими и потребляющими лактат.
Чтобы удовлетворить потребности быстрого роста опухоли, опухоль должна найти способы поддержать синтез полноценной дочерней клетки, сталкиваясь с истощением запасов питательных веществ. Они должны координировать производство предшественников для макромолекулярного синтеза, а также поддерживать клеточную биоэнергетику, не нарушая рост, пролиферацию и жизнеспособность клеток. Одним из способов сделать это является перетасовка гликолитических промежуточных продуктов, таких как глюкозо-6-фосфат, в пентозофосфатный путь для получения рибозо-5-фосфата и НАДФН. Рибозо-5-фосфат действует как промежуточное вещество для производства нуклеотидов, тем самым обеспечивая связь между гликолизом и синтезом нуклеотидов в гипоксических опухолевых клетках. В случаях, когда гликолиз остается высокоактивным в нормоксических условиях, НАДФН действует как медиатор антиоксидантных реакций для защиты клеток от окислительного повреждения. [33]
Наличие или отсутствие кислорода оказывает сильное влияние на ионизирующее излучение, вызывая гибель опухолевых и нормальных клеток. [34] Это называется кислородным эффектом . В условиях гипоксии было показано, что клетки приобретают радиорезистентность через механизмы, опосредованные HIF-1. Чтобы преодолеть эту проблему, радиационные онкологи разработали мощные инструменты и подходы, такие как одновременная интегрированная усиленная лучевая терапия с модулированной интенсивностью (SIB-IMRT), которая позволяет доставлять усиленную дозу радиации к небольшим целевым фракциям в злокачественной опухоли, селективные к гипоксии цитотоксины/препараты и ингибиторы HIF-1. [35] Более того, можно лечить гипоксическую опухоль с помощью ионно-лучевой терапии, в частности, с помощью ионов углерода. [36] Поскольку повреждение ионами является прямым, OER ( коэффициент усиления кислорода ) равен 1, поэтому влияние кислорода не имеет значения.
Важным подходом к лечебным вмешательствам, связанным с гипоксией, является процедура, называемая дозовой окраской, при которой более высокая доза облучения направляется на гипоксические субобъемы опухоли. [37] Однако одной из основных проблем является отсутствие клинически применимого метода для обнаружения гипоксии опухоли. [38] Соответственно, оценка неинвазивных методов обнаружения гипоксии, таких как позитронно-эмиссионная томография (ПЭТ) и магнитно-резонансная томография (МРТ), была предметом интенсивных исследований в течение нескольких лет. ПЭТ-визуализация является предпочтительным методом в клиническом использовании, [39] и наиболее исследованными ПЭТ-радиофармами для визуализации гипоксии опухоли являются 18F- FMISO , 18F-EF5 , 18F-FAZA и 18F-HX4. [40] Возможность дозовой окраски гипоксии на основе ПЭТ уже оценивается в нескольких интервенционных клинических испытаниях. [41] [42]
Биоредуктивные пролекарства играют важную роль в борьбе с этими типами клеток: они могут избирательно убивать клетки опухоли с дефицитом кислорода как пролекарства, активируемые гипоксией . Примерами препаратов являются тирапазамин и эвофосфамид . Изучение опухолей в таких условиях было начато доктором Л. Х. Греем .
Связь между гипоксией опухоли и метастатическим прогрессированием была показана в многочисленных публикациях. [43] [44]
Для решения проблемы гипоксии опухолей было предпринято несколько подходов. Некоторые компании пытались разработать препараты, которые активируются в гипоксической среде (Novacea, Inc. Proacta, Inc и Threshold Pharmaceuticals, Inc), в то время как другие в настоящее время пытаются уменьшить гипоксию опухолей (Diffusion Pharmaceuticals, Inc. и NuvOx Pharma, LLC).
Несколько компаний пытались разработать препараты, которые активируются в гипоксической среде. Эти кандидаты на препараты нацелены на уровни гипоксии, которые распространены в опухолях, но редки в нормальных тканях. Гипоксические зоны опухолей, как правило, уклоняются от традиционных химиотерапевтических агентов и в конечном итоге способствуют рецидиву. В литературе было показано, что гипоксия связана с худшим прогнозом, что делает ее определяющим фактором прогрессирования рака и терапевтического ответа [43] Несколько обзорных статей суммируют текущий статус гипоксических цитотоксинов ( пролекарств, активируемых гипоксией ). [45] [46] [47] Компании, которые пробовали препараты, активируемые гипоксической средой, включали Novacea, Inc. Proacta и Threshold Pharmaceuticals. Novacea Inc прекратила разработку своего препарата, активируемого гипоксией. [48] Препарат PR610 компании Proacta не прошел клиническое испытание I фазы из-за токсичности. [49] Threshold Pharmaceuticals прекратила выпуск гипоксически активируемого пролекарства TH-302 после того, как испытания фазы III не продемонстрировали статистически значимой общей выживаемости. [50]
Ниацинамид , активная форма витамина B3 , действует как химио- и радиосенсибилизирующий агент, усиливая кровоток в опухоли, тем самым уменьшая гипоксию опухоли. Ниацинамид также ингибирует поли(АДФ-рибоза) полимеразы (PARP-1), ферменты, участвующие в воссоединении разрывов цепей ДНК, вызванных радиацией или химиотерапией. [51] По состоянию на август 2016 года клинические испытания по этому показанию, по-видимому, не проводились.
Другой подход к лечению опухолевой гипоксии заключается в использовании соединения, усиливающего диффузию кислорода, для реоксигенации гипоксических зон опухолей. Разработчик соединений, усиливающих диффузию кислорода, Diffusion Pharmaceuticals , протестировал свое ведущее соединение, транс-натрий кроцетинат (TSC), в клиническом исследовании фазы II на 59 пациентах, которым недавно поставили диагноз мультиформная глиобластома . [52] Результаты фазы II показали, что 36% пациентов, которым была введена полная доза TSC, были живы в течение 2 лет, по сравнению с историческими значениями выживаемости в диапазоне от 27% до 30% для стандартного лечения. [53] Главной конечной точкой исследования была выживаемость в течение двух лет, а не общая выживаемость. [52]
Еще один разрабатываемый препарат, предназначенный для снижения гипоксии опухоли, — это NVX-108 компании NuvOx Pharma. NVX-108 — это формула перфторуглерода , додекафторпентана (DDFPe). NVX-108 вводится внутривенно, проходит через легкие и захватывает кислород, затем проходит через артерии и выделяет кислород в присутствии гипоксической ткани. В настоящее время проводится клиническое исследование фазы Ib/II для недавно диагностированной мультиформной глиобластомы. [54] Первые результаты показали устранение гипоксии опухоли, и исследование продолжает развиваться. [55]
Другой подход к нацеливанию на гипоксию заключается в использовании наночастиц, покрытых или загруженных специфическими целевыми группами. Хотя путь гиалуроновой кислоты CD44 для нацеливания на рак и метастазы рака был исследован ранее; Альмустафа и др. продемонстрировали, что нацеливание рецепторов CD44 с помощью наночастиц, покрытых гиалуроновой кислотой, снижает лекарственную устойчивость к доксорубицину по сравнению со свободным препаратом и нецелевыми наночастицами. Однако необходимо провести больше доклинических исследований с использованием моделирования гипоксии in vitro и in vivo. [56]