stringtranslate.com

Метил-акцепторные белки хемотаксиса

Метил -акцепторные белки хемотаксиса ( MCP , также аспартатный рецептор ) представляют собой семейство трансмембранных рецепторов , которые опосредуют хемотаксический ответ у некоторых кишечных бактерий , таких как Salmonella enterica enterica и Escherichia coli . [3] Эти метил-акцепторные рецепторы хемотаксиса являются одними из первых компонентов в реакциях сенсорного возбуждения и адаптации у бактерий, которые изменяют поведение при плавании при обнаружении определенных химических веществ. Использование MCP позволяет бактериям определять концентрации молекул во внеклеточном матриксе , чтобы бактерии могли плавно плавать или кувыркаться соответственно. Если бактерия обнаруживает растущие уровни аттрактантов ( питательных веществ ) или снижающиеся уровни репеллентов ( токсинов ), бактерия продолжит плыть вперед или плавно плавать. Если бактерия обнаруживает снижающиеся уровни аттрактантов или повышающиеся уровни репеллентов, бактерия кувыркается и переориентируется в новом направлении. Таким образом, бактерия может перемещаться к питательным веществам и уходить от токсинов [4].

Эволюция

Существует много различных типов бактериальных трансмембранных рецепторов 60 кДа, которые имеют схожую топологию и механизмы сигнализации. Они обладают тремя доменами: периплазматическим доменом связывания лиганда, двумя трансмембранными сегментами и цитоплазматическим доменом. Структура домена связывания лиганда включает закрытый или частично открытый четырехспиральный пучок с левым поворотом. Различие в последовательности домена связывания лиганда между рецепторами отражает различную специфичность лиганда. Связывание лиганда вызывает конформационное изменение, которое передается через мембрану в домен цитоплазматической активации. [5]

Разнообразие окружающей среды приводит к разнообразию бактериальных сигнальных рецепторов, и, следовательно, существует множество генов, кодирующих МКП. [6] Например, в Escherichia coli обнаружено четыре хорошо охарактеризованных МКП : Tar (таксис в сторону аспартата и мальтозы, в сторону от никеля и кобальта), Tsr (таксис в сторону серина, в сторону от лейцина, индола и слабых кислот), Trg (таксис в сторону галактозы и рибозы) и Tap (таксис в сторону дипептидов).

Структура

MCP имеют схожую структуру и механизм сигнализации . MCP образуют димеры . Три димера MCP спонтанно образуют тримеры. Тримеры объединяются CheA и CheW в гексагональные решетки. MCP либо связывают лиганды напрямую, либо взаимодействуют с лиганд-связывающими белками, передавая сигнал нижестоящим сигнальным белкам в цитоплазме . Большинство MCP содержат: (a) N-концевой сигнальный пептид , который представляет собой трансмембранную альфа-спираль в зрелом белке; (b) плохо сохраняющийся периплазматический рецепторный (лиганд-связывающий) домен; (c) трансмембранную альфа-спираль; (d) как правило, один или несколько доменов HAMP и (e) высоко сохраняющийся C-концевой цитоплазматический домен, который взаимодействует с нижестоящими сигнальными компонентами. C-концевой домен содержит метилированные остатки глутамата .

MCPs подвергаются двум ковалентным модификациям: дезамидированию и обратимому метилированию ряда остатков глутамата . Аттрактанты повышают уровень метилирования, а репелленты снижают его. Метильные группы добавляются метилтрансферазой CheR и удаляются метилэстеразой CheB.

Функция

Связывание лиганда вызывает конформационное изменение в рецепторе MCP, который транслирует вниз по структуре шпильки и ингибирует ее сенсорную киназу. На кончике шпильки находятся два белка, которые связываются с MCP: CheW и CheA. CheA действует как сенсорная киназа . CheA обладает киназной активностью и аутофосфорилирует себя по остатку гистидила при активации MCP. Считается, что CheW является трансдуктором сигнала от MCP к CheA. Активированный CheA передает свою фосфорильную группу CheY, регулятору ответа. Фосфорилированный CheY фосфорилирует базальное тельце FliM, которое связано со жгутиком . Фосфорилирование базального тельца действует как переключатель жгутика и изменяет направление вращения жгутика. Это изменение направления позволяет чередовать плавное плавание и кувыркание, что смещает случайное блуждание бактерий в сторону аттрактанта.


Ссылки

  1. ^ Феррис, HU; Зет, K.; Хулко, M.; Дунин-Хоркавич, S.; Лупас, AN (2014). «Вращение осевой спирали как механизм регуляции сигнала, выведенный из кристаллографического анализа серинового хеморецептора E. Coli». Журнал структурной биологии . 186 (3): 349–356. doi : 10.1016/j.jsb.2014.03.015 . PMID  24680785.
  2. ^ PDB : 1VLT ​; Yeh JI, Biemann HP, Privé GG, Pandit J, Koshland DE Jr, Kim SH (1996). «Высокоразрешающие структуры домена связывания лиганда бактериального аспартатного рецептора дикого типа». J Mol Biol . 262 (2): 186–201. doi :10.1006/jmbi.1996.0507. PMID  8831788.; визуализировано с помощью PyMOL
  3. ^ Kim SH, Prive GG, Pandit J, Koshland DE, Yeh JI, Biemann HP (1996). «Высокоразрешающие структуры домена связывания лиганда бактериального аспартатного рецептора дикого типа». J. Mol. Biol . 262 (2): 186–201. doi :10.1006/jmbi.1996.0507. PMID  8831788.
  4. ^ Derr P, Boder E, Goulian M (февраль 2006 г.). «Изменение специфичности бактериального хеморецептора». J. Mol. Biol . 355 (5): 923–32. doi :10.1016/j.jmb.2005.11.025. PMID  16359703.
  5. ^ Koshland DE, Yu EW (2001). «Распространение конформационных изменений на большие (и короткие) расстояния в белках». Proc. Natl. Acad. Sci. USA . 98 (17): 9517–9520. Bibcode : 2001PNAS...98.9517Y. doi : 10.1073 /pnas.161239298 . PMC 55484. PMID  11504940. 
  6. ^ Александр РП, Жулин ИБ (февраль 2007). «Эволюционная геномика выявляет консервативные структурные детерминанты сигнализации и адаптации в микробных хеморецепторах». Proc. Natl. Acad. Sci. USA . 104 (8): 2885–90. doi : 10.1073/pnas.0609359104 . PMC 1797150 . PMID  17299051. 
В статье использован текст из общедоступных источников Pfam и InterPro : IPR004089
В статье использован текст из общедоступных источников Pfam и InterPro : IPR003122