stringtranslate.com

Микроразмножение

Роза, которая возникла из клеток, выращенных в культуре тканей.

Микроразмножение или культура тканей — это практика быстрого размножения растительного материала для получения множества потомственных растений с использованием современных методов культуры растительных тканей . [1]

Микроразмножение используется для размножения широкого спектра растений, таких как генетически модифицированные или выведенные с помощью обычных методов селекции растений . Оно также используется для получения достаточного количества ростков для посадки из бессемянных растений, растений, которые плохо реагируют на вегетативное размножение или когда микроразмножение является более дешевым способом размножения (например, орхидеи [2] ). Ботаник Корнеллского университета Фредерик Кэмпион Стюард открыл и стал пионером микроразмножения и культуры растительных тканей в конце 1950-х и начале 1960-х годов. [3]

Шаги

Короче говоря, этапы микроразмножения можно разделить на четыре этапа:

  1. Выбор материнского растения
  2. Умножение
  3. Укоренение и акклиматизация
  4. Пересадка нового растения в почву

Выбор материнского растения

Культивирование растений in vitro в контролируемой стерильной среде

Микроразмножение начинается с выбора растительного материала для размножения. Растительные ткани удаляются из неповрежденного растения в стерильных условиях. Чистые исходные материалы, свободные от вирусов и грибков, важны для производства самых здоровых растений. После того, как растительный материал выбран для культивирования, начинается сбор эксплантата(ов), который зависит от типа ткани, которая будет использоваться, включая верхушки стеблей, пыльники, лепестки, пыльцу и другие растительные ткани. Затем материал эксплантата стерилизуется, как правило, в ходе нескольких циклов промывки отбеливателем и спиртом, и, наконец, промывается в стерилизованной воде. Эта небольшая часть растительной ткани, иногда только одна клетка, помещается в питательную среду , обычно содержащую макро- и микроэлементы, воду, сахарозу в качестве источника энергии и один или несколько регуляторов роста растений (фитогормоны ) . Обычно среда загущается гелеобразующим агентом, таким как агар , для создания геля, который поддерживает эксплантат во время роста. Некоторые растения легко выращиваются на простых средах, но другим требуются более сложные среды для успешного роста; растительная ткань растет и дифференцируется в новые ткани в зависимости от среды. Например, среды, содержащие цитокинин, используются для создания разветвленных побегов из почек растений.

Умножение

Размножение — это взятие образцов тканей, полученных на первом этапе, и увеличение их количества. После успешного внедрения и роста растительной ткани следует стадия установления. Благодаря повторным циклам этого процесса один образец экспланта может быть увеличен с одного до сотен и тысяч растений. В зависимости от типа выращиваемой ткани, размножение может включать различные методы и среды. Если выращенный растительный материал представляет собой каллусную ткань, его можно поместить в блендер, разрезать на более мелкие части и повторно культивировать на том же типе питательной среды для выращивания большего количества каллусной ткани. Если ткань выращивается как небольшие растения, называемые проростками, часто добавляют гормоны, которые заставляют проростки производить много маленьких ответвлений. После образования нескольких побегов эти побеги переносятся в среду для укоренения с высоким соотношением ауксина и цитокинина. После развития корней проростки можно использовать для закалки.

Предтрансплантационный

Банановые ростки пересаживаются в почву (с вермикомпостом ) из растительного субстрата. Этот процесс проводится для акклиматизации ростков к почве, поскольку они ранее выращивались в растительном субстрате. После нескольких дней роста ростки пересаживаются в поле.

На этом этапе происходит обработка полученных ростков/побегов для стимуляции роста корней и «закалки». Она проводится in vitro или в стерильной среде «пробирки».

«Закаливание» относится к подготовке растений к естественной среде роста. До этой стадии проростки выращивались в «идеальных» условиях, предназначенных для поощрения быстрого роста. Из-за контролируемого характера их созревания проростки часто не имеют полностью функциональных дермальных покровов. Это делает их крайне восприимчивыми к болезням и неэффективными в использовании воды и энергии. Условия in vitro характеризуются высокой влажностью, и растения, выращенные в таких условиях, часто не образуют рабочую кутикулу и устьица , которые предохраняют растение от высыхания. При изъятии из культуры проросткам нужно время, чтобы приспособиться к более естественным условиям окружающей среды. Закаливание обычно включает в себя медленное отлучение проростков от высоковлажной, слабоосвещенной, теплой среды к тому, что можно было бы считать нормальной средой роста для рассматриваемого вида.

Перевод из культуры

Культуры растительных тканей, выращиваемые в семенном банке Министерства сельского хозяйства США , Национальном центре сохранения генетических ресурсов

На заключительном этапе микроразмножения растений проростки извлекаются из питательной среды и переносятся в почву или (чаще) в горшечный компост для дальнейшего роста традиционными методами.

Эту стадию часто совмещают с «предтрансплантационной» стадией.

Методы

Существует множество методов микроразмножения растений.

Культура меристемы

В культуре меристемы меристема и несколько прилегающих листовых зачатков помещаются в подходящую среду для выращивания, где они индуцируются для образования новой меристемы. Затем эти меристемы делятся и далее выращиваются и размножаются. Для получения ростков меристемы извлекаются из их среды пролиферации и помещаются в среду регенерации. Когда через несколько недель образуется удлиненный корневой росток, его можно перенести в почву. С помощью этого метода можно получить растение, не подверженное болезням. Экспериментальные результаты также показывают, что этот метод можно успешно использовать для быстрого размножения различных видов растений, например, кокоса , [4] клубники , [5] сахарного тростника . [6]

Культура каллуса

Каллус — это масса недифференцированных паренхиматозных клеток. Когда живая растительная ткань помещается в искусственную среду для выращивания с другими благоприятными условиями, образуется каллус. Рост каллуса варьируется в зависимости от гомогенных уровней ауксина и цитокинина и может управляться эндогенным поступлением этих регуляторов роста в культуральную среду. Рост каллуса и его органогенез или эмбриогенез можно разделить на три различные стадии.

Эмбриональная культура

В эмбриональной культуре эмбрион вырезают и помещают в питательную среду с надлежащими питательными веществами в асептических условиях. Для получения быстрого и оптимального роста в проростки его переносят в почву. Это особенно важно для производства межвидовых и межродовых гибридов и для преодоления эмбриона.

Культура протопластов

В культуре протопластов растительная клетка может быть изолирована с помощью ферментов, разрушающих стенки, и роста в подходящей культуральной среде в контролируемых условиях для регенерации проростков. При подходящих условиях протопласт развивает клеточную стенку, за которой следует увеличение деления клеток и дифференциации, и вырастает в новое растение. Сначала протопласты культивируют в жидкой среде при температуре от 25 до 28 °C с интенсивностью света от 100 до 500 люкс или в темноте, а после существенного деления клеток их переносят в твердую среду, конгениальную или морфогенез во многих садовых культурах, хорошо реагирующих на культуру протопластов.

Преимущества

Микроклональное размножение имеет ряд преимуществ по сравнению с традиционными методами размножения растений:

Недостатки

Микроразмножение не всегда является идеальным способом размножения растений. Условия, ограничивающие его использование, включают:

Основным ограничением в использовании микроразмножения для многих растений является стоимость производства; для многих растений использование семян, которые обычно не болеют и производятся в больших количествах, легко дает растения (см. ортодоксальные семена ) в больших количествах по более низкой цене. По этой причине многие селекционеры растений не используют микроразмножение, поскольку его стоимость непомерно высока. Другие селекционеры используют его для получения исходных растений, которые затем используются для размножения семенами.

Механизация процесса могла бы снизить затраты на рабочую силу, но оказалась труднодостижимой, несмотря на активные попытки разработки технологических решений.

Приложения

Микроразмножение облегчает выращивание, хранение и уход за большим количеством растений в небольших помещениях, что делает его экономически эффективным процессом. Микроразмножение используется для хранения зародышевой плазмы и защиты исчезающих видов. Микроразмножение широко используется в декоративных растениях для эффективного производства большого количества однородных, свободных от болезней образцов, что значительно улучшает коммерческие садоводческие операции. [8] Среди видов, широко размножаемых in vitro, можно упомянуть хризантему , [9] дамасскую розу , [10] сенполию ионанту , [11] замиокулькас замиелистный [12] и дицентра . [13] Микроразмножение также можно использовать с плодовыми деревьями, например, грушой обыкновенной . [14] Чтобы сократить расходы, натуральные растительные экстракты можно использовать вместо традиционных регуляторов роста растений. [15]

Ссылки

  1. ^ "Микроразмножение - Определения из Dictionary.com". dictionary.reference.com . Получено 2008-03-17 .
  2. ^ Чуг, Самира; Гуха, Сатьякам; Рао, И. Уша (2009-11-03). «Микроразмножение орхидей: обзор потенциала различных эксплантов». Scientia Horticulturae . 122 (4): 507–520. Bibcode : 2009ScHor.122..507C. doi : 10.1016/j.scienta.2009.07.016. ISSN  0304-4238.
  3. ^ "Фредерик Кэмпион Стюард" (PDF) . Заявление о памяти факультета Корнеллского университета. Архивировано из оригинала (PDF) 2012-04-02.
  4. ^ Вильмс, Ханнес; Де Бьевр, Драйс; Лонгин, Кевин; Свеннен, Рони; Ри, Джухи; Панис, Барт (15.09.2021). «Разработка первого протокола размножения пазушных побегов in vitro для кокосовых пальм». Scientific Reports . 11 (1): 18367. Bibcode :2021NatSR..1118367W. doi :10.1038/s41598-021-97718-1. ISSN  2045-2322. PMC 8443624 . PMID  34526563. 
  5. ^ Naing, Aung Htay; Kim, Si Hyun; Chung, Mi Young; Park, Soon Ki; Kim, Chang Kil (2019-04-13). "Метод размножения in vitro для получения морфологически и генетически стабильных растений различных сортов клубники". Plant Methods . 15 (1): 36. doi : 10.1186/s13007-019-0421-0 . ISSN  1746-4811. PMC 6461810. PMID 31011361  . 
  6. ^ Салохе, Шубханги (2021-06-01). «Разработка эффективного протокола для производства здорового семенного тростника сахарного тростника через культуру меристемы». Журнал исследований сельского хозяйства и продовольствия . 4 : 100126. doi : 10.1016/j.jafr.2021.100126 . ISSN  2666-1543. S2CID  233618279.
  7. ^ Мацей Хемпель, М. Хемпель и М. Хемпел (1986) Некоторые экономические аспекты коммерческого микроразмножения, биотехнологии и биоиндустрии, 1:5, 22-26, DOI: 10.1080/02052067.1986.10824247
  8. ^ Кулус Д., 2015. Отдельные аспекты микроразмножения декоративных растений в Польше и мире. Nauki Przyrodnicze 4(10): 10-25. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.5086.8082
  9. ^ Милер Н., Тимошук А., Реверс М., Кулус Д., 2023. Регенерация хризантемы in vitro из завязей и семяпочек, обработанных термическими и химическими стимулами: морфогенетические и цитогенетические эффекты. Сельское хозяйство 13(11): 2069. https://doi.org/10.3390/agriculture13112069
  10. ^ Kaviani B., Deltalab B., Kulus D., Khoddamzadeh AA, Roque-Borda CA 2024. Размножение побегов in vitro и укоренение генотипов дамасской розы 'Kashan' и 'Hervy Azerbaijan' (Rosa damascena Mill.) для косметических и декоративных целей. Растения 13(10): 1364. https://doi.org/10.3390/plants13101364
  11. ^ Deltalab B., Kaviani B., Kulus D., Sajjadi SA 2024. Оптимизация размножения побегов и индукции корней у Saintpaulia ionantha H. Wendl. с использованием тиамина (витамина B1) и IBA: перспективный подход для экономически важного размножения африканской фиалки. Plant Cell Tissue and Organ Culture 156: 74. https://doi.org/10.1007/s11240-024-02698-5
  12. ^ Поурхассан А., Кавиани Б., Кулус Д., Милер Н., Негадар Н.А., 2023. Полный протокол микроразмножения чернолистного Zamioculcas zamiifolia (Lodd.) Engl. «Довон». Horticulturae 9(4): 422. https://doi.org/10.3390/horticulturae9040422.
  13. ^ Кулус Д., 2020. Влияние регуляторов роста на развитие, качество и физиологическое состояние размножаемых in vitro Lamprocapnos spectabilis (L.) Fukuhara. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant 56(4): 447-457. https://doi.org/10.1007/s11627-020-10064-1
  14. ^ Кавиани Б., Барандан А., Тимошук А., Кулус Д., 2023. Оптимизация in vitro размножения подвоя груши (Pyrus communis L.) 'Pyrodwarf®(S)'. Агрономия 13(1): 268. https://doi.org/10.3390/agronomy13010268
  15. ^ Кулус Д., Милер Н., 2021. Применение растительных экстрактов в микроразмножении и криоконсервации кровоточащего сердца: декоративно-лекарственного вида растений. Сельское хозяйство 11(6): 542. https://doi.org/10.3390/agriculture11060542