stringtranslate.com

Молекулярная нейронаука

Молекулярная нейронаука — это раздел нейронауки , который изучает концепции молекулярной биологии , применяемые к нервной системе животных. Областью изучения этого предмета являются такие темы, как молекулярная нейроанатомия , механизмы молекулярной сигнализации в нервной системе , влияние генетики и эпигенетики на развитие нейронов, а также молекулярная основа нейропластичности и нейродегенеративных заболеваний . [1] Как и молекулярная биология, молекулярная нейронаука — это относительно новая область, которая весьма динамична.

Обнаружение нейротрансмиттеров

В молекулярной биологии коммуникация между нейронами обычно происходит посредством химической передачи через промежутки между клетками, называемые синапсами . Передаваемые химические вещества, известные как нейротрансмиттеры , регулируют значительную часть жизненно важных функций организма. [2] Возможно анатомическое определение местонахождения нейротрансмиттеров с помощью методов маркировки. Возможно химическое определение некоторых нейротрансмиттеров, таких как катехоламины, путем фиксации участков нервной ткани формальдегидом . Это может привести к формальдегид-индуцированной флуоресценции при воздействии ультрафиолетового света . Дофамин , катехоламин, был идентифицирован у нематоды C. elegans с помощью этого метода. [3] Иммуноцитохимия , которая включает в себя повышение уровня антител против целевых химических или биологических объектов, включает в себя несколько других интересных методов. Целевой нейротрансмиттер может быть специально помечен первичными и вторичными антителами с радиоактивной маркировкой для идентификации нейротрансмиттера с помощью авторадиографии . Присутствие нейротрансмиттеров (хотя и не обязательно их местоположение) можно наблюдать в иммуноферментном анализе с использованием иммуноферментного анализа (ELISA), в котором связывание субстрата в ферментативных анализах может вызывать преципитаты , флуорофоры или хемилюминесценцию . В случае, если нейротрансмиттеры не могут быть идентифицированы гистохимически, альтернативным методом является их обнаружение по механизмам нейронного захвата. [1]

Потенциалзависимые ионные каналы

Структура эукариотических потенциалзависимых калиевых ионных каналов

Возбудимые клетки в живых организмах имеют потенциалзависимые ионные каналы . Их можно наблюдать по всей нервной системе в нейронах. Первыми ионными каналами, которые были охарактеризованы, были натриевые и калиевые ионные каналы, описанные AL Hodgkin и AF Huxley в 1950-х годах при изучении гигантского аксона кальмара рода Loligo . Их исследования продемонстрировали избирательную проницаемость клеточных мембран, зависящую от физиологических условий, и электрические эффекты, которые являются результатом этой проницаемости для создания потенциалов действия . [4]

Каналы ионов натрия

Натриевые каналы были первыми потенциалзависимыми ионными каналами, которые были выделены в 1984 году из угря Electrophorus electricus Шосаку Нумой . Токсин рыбы-собаки тетродотоксин (TTX) , блокатор натриевых каналов, использовался для выделения белка натриевого канала путем связывания его с использованием метода колоночной хроматографии для химического разделения. Аминокислотная последовательность белка была проанализирована с помощью деградации Эдмана , а затем использована для создания библиотеки кДНК , которая могла быть использована для клонирования белка канала. Клонирование самого канала позволило использовать такие приложения, как идентификация тех же каналов у других животных. [1] Натриевые каналы известны тем, что работают совместно с калиевыми каналами во время развития градуированных потенциалов и потенциалов действия. Натриевые каналы обеспечивают приток ионов Na + в нейрон, что приводит к деполяризации от покоящегося мембранного потенциала нейрона, что приводит к градуированному потенциалу или потенциалу действия, в зависимости от степени деполяризации. [5]

Каналы ионов калия

Калиевые каналы бывают разных форм, присутствуют в большинстве эукариотических клеток и, как правило, имеют тенденцию стабилизировать клеточную мембрану при равновесном потенциале калия . Как и в случае с ионами натрия, градуированные потенциалы и потенциалы действия также зависят от калиевых каналов. В то время как приток ионов Na + в нейрон вызывает клеточную деполяризацию, отток ионов K + из нейрона заставляет клетку реполяризоваться до мембранного потенциала покоя. Активация самих калиевых ионных каналов зависит от деполяризации, возникающей в результате притока Na + во время потенциала действия. [1] Как и в случае с натриевыми каналами, калиевые каналы имеют свои собственные токсины, которые блокируют действие белка канала. Примером такого токсина является большой катион, тетраэтиламмоний (TEA) , но примечательно, что токсин не имеет одинакового механизма действия на все калиевые каналы, учитывая разнообразие типов каналов у разных видов. Присутствие калиевых каналов было впервые обнаружено у мутантных мух Drosophila melanogaster , которые неконтролируемо тряслись при анестезии из-за проблем с клеточной реполяризацией, что приводило к аномальной электрофизиологии нейронов и мышц. Калиевые каналы были впервые обнаружены путем манипуляций с молекулярной генетикой (мух) вместо проведения очистки белка канала, поскольку на момент открытия не было известных высокоаффинных лигандов для калиевых каналов (таких как TEA). [1] [6]

Каналы ионов кальция

Кальциевые каналы важны для определенных каскадов клеточной сигнализации, а также для высвобождения нейротрансмиттеров в окончаниях аксонов . В возбудимых клетках обнаружено множество различных типов кальциевых ионных каналов. Как и в случае с натриевыми ионными каналами, кальциевые ионные каналы были выделены и клонированы с помощью методов хроматографической очистки. Примечательно, что, как и в случае с высвобождением нейротрансмиттеров, кальциевые каналы могут взаимодействовать с внутриклеточными белками и играют важную роль в передаче сигналов, особенно в таких местах, как саркоплазматический ретикулум мышечных клеток. [1]

Рецепторы

Различные типы рецепторов могут использоваться для клеточной сигнализации и коммуникации и могут включать ионотропные рецепторы и метаботропные рецепторы. Эти типы рецепторов клеточной поверхности различаются по механизму и продолжительности действия, причем ионотропные рецепторы связаны с быстрой передачей сигнала, а метаботропные рецепторы связаны с медленной передачей сигнала. Метаботропные рецепторы охватывают широкий спектр рецепторов клеточной поверхности с заметно отличающимися каскадами сигнализации . [1] [5]

Ионотропные рецепторы

Прототипическое изображение ионотропного рецептора в случае потока ионов Ca 2+

Ионотропные рецепторы , также известные как лиганд-управляемые ионные каналы , являются быстродействующими рецепторами, которые опосредуют нейронные и физиологические функции посредством потока ионных каналов с лиганд-связыванием. Никотиновые, ГАМК и глутаматные рецепторы входят в число некоторых рецепторов клеточной поверхности, регулируемых потоком лиганд-управляемых ионных каналов. ГАМК является основным тормозным нейромедиатором мозга, а глутамат является основным возбуждающим нейромедиатором мозга. [1]

ГАМК-рецепторы

Рецепторы ГАМК A и ГАМК C известны как ионотропные, в то время как рецептор ГАМК B является метаботропным. Рецепторы ГАМК A опосредуют быстрые ингибирующие реакции в центральной нервной системе (ЦНС) и находятся на нейронах, глиальных клетках и клетках мозгового вещества надпочечников . Он отвечает за индукцию притока ионов Cl в клетки, тем самым снижая вероятность того, что деполяризация мембраны произойдет при поступлении градуированного потенциала или потенциала действия. Рецепторы ГАМК также могут взаимодействовать с неэндогенными лигандами, чтобы влиять на активность. Например, соединение диазепам (продается как валиум) является аллостерическим агонистом, который увеличивает сродство рецептора к ГАМК. Увеличенные физиологические ингибирующие эффекты в результате увеличения связывания ГАМК делают диазепам полезным транквилизатором или противосудорожным средством (противоэпилептическими препаратами). С другой стороны, рецепторы ГАМК также могут быть нацелены на снижение притока Cl к клеткам с помощью воздействия конвульсантов, таких как пикротоксин . Антагонистический механизм действия этого соединения не направлен непосредственно на рецептор ГАМК, но существуют другие соединения, которые способны к аллостерической инактивации, включая Т-бутилбициклофоротионат (TBPS) и пентилентетразол (PZT). По сравнению с ГАМК А рецепторы ГАМК С имеют более высокое сродство к ГАМК, они, вероятно, будут более продолжительными в активности, и их ответы, вероятно, будут генерироваться более низкими концентрациями ГАМК. [1]

Рецепторы глутамата

Ионотропные глутаматные рецепторы могут включать NMDA , AMPA и каинатные рецепторы . Эти рецепторы названы в честь агонистов, которые способствуют активности глутамата. NMDA-рецепторы известны своими возбуждающими механизмами, влияющими на пластичность нейронов при обучении и памяти, а также на такие нейропатологии, как инсульт и эпилепсия. NDMA-рецепторы имеют несколько участков связывания, как и ионотропные ГАМК-рецепторы, и могут находиться под влиянием коагонистов, таких как нейротрансмиттер глицин или фенциклидин (PCP). NMDA-рецепторы переносят ток ионами Ca2 + и могут блокироваться внеклеточными ионами Mg2 + в зависимости от напряжения и мембранного потенциала. Этот приток Ca2 + увеличивается возбуждающими постсинаптическими потенциалами (EPSP), создаваемыми NMDA-рецепторами, активирующими каскады сигнализации на основе Ca2 + (такие как высвобождение нейротрансмиттера). AMPA генерируют более короткие и большие возбуждающие постсинаптические токи, чем другие ионотропные рецепторы глутамата. [5]

Никотиновые АХ-рецепторы

Никотиновые рецепторы связывают нейротрансмиттер ацетилхолин (ACh) для создания неселективного потока катионных каналов, который генерирует возбуждающие постсинаптические реакции. Активность рецепторов, на которую может влиять потребление никотина, вызывает чувства эйфории, расслабления и неизбежной зависимости в высоких дозах. [5]

Метаботропные рецепторы

Каскад сигнализации рецепторов, связанных с G-белком

Метаботропные рецепторы — это медленно реагирующие рецепторы в постсинаптических клетках. Обычно эти медленные реакции характеризуются более сложными внутриклеточными изменениями в биохимии. Реакции захвата нейротрансмиттеров метаботропными рецепторами могут приводить к активации внутриклеточных ферментов и каскадов, включающих вторичные мессенджеры, как в случае с рецепторами, связанными с G-белком . Различные метаботропные рецепторы могут включать определенные глутаматные рецепторы, мускариновые АХ-рецепторы, ГАМК- B- рецепторы и рецепторные тирозинкиназы .

Рецепторы, связанные с G-белком

Каскад сигнализации, связанный с G-белком, может значительно усиливать сигнал определенного нейротрансмиттера, чтобы производить сотни или тысячи вторичных мессенджеров в клетке. Механизм действия, посредством которого рецепторы, связанные с G-белком, вызывают каскад сигнализации, следующий:

  1. Нейротрансмиттер связывается с рецептором
  2. Рецептор претерпевает конформационные изменения, позволяющие связываться с комплексом G-белка
  3. GDP обменивается с GTP при связывании комплекса G-белка с рецептором
  4. α-субъединица комплекса G-белка связана с ГТФ и отделяется для связывания с целевым белком, таким как аденилатциклаза.
  5. Связывание с целевым белком либо увеличивает, либо уменьшает скорость продукции вторичного мессенджера (например, циклического АМФ ).
  6. ГТФаза гидролизует α-субъединицу, которая связывается с ГДФ, а α-субъединица возвращается в комплекс белка G в неактивном состоянии.

Высвобождение нейротрансмиттера

Структура синапса, где происходит высвобождение и захват нейромедиатора

Нейротрансмиттеры высвобождаются в дискретных пакетах, известных как кванты, из терминала аксона одного нейрона в дендриты другого через синапс . Эти кванты были идентифицированы с помощью электронной микроскопии как синаптические пузырьки . Два типа пузырьков — это маленькие синаптические пузырьки (SSV), которые имеют диаметр около 40-60 нм , и большие пузырьки с плотным ядром (LDCV), электронно-плотные пузырьки диаметром около 120-200 нм . [1] Первые происходят из эндосом и содержат нейротрансмиттеры, такие как ацетилхолин , глутамат , ГАМК и глицин . Последние происходят из аппарата Гольджи и содержат более крупные нейротрансмиттеры, такие как катехоламины и другие пептидные нейротрансмиттеры . [7] Нейротрансмиттеры высвобождаются из терминалей аксона и связываются с постсинаптическими дендритами в следующей последовательности: [5]

  1. Мобилизация/привлечение синаптических пузырьков из цитоскелета
  2. Стыковка везикулы (связывание) с пресинаптической мембраной
  3. Праймирование везикулы АТФ (относительно медленный этап)
  4. Слияние активированной везикулы с пресинаптической мембраной и экзоцитоз размещенного нейромедиатора
  5. Поглощение нейротрансмиттеров в рецепторах постсинаптической клетки
  6. Инициирование или ингибирование потенциала действия в постсинаптической клетке в зависимости от того, являются ли нейротрансмиттеры возбуждающими или ингибирующими (возбуждающие приведут к деполяризации постсинаптической мембраны)

Высвобождение нейротрансмиттера зависит от кальция

Высвобождение нейротрансмиттера зависит от внешнего источника ионов Ca 2+ , которые поступают в терминали аксона через потенциалзависимые кальциевые каналы . Везикулярное слияние с терминальной мембраной и высвобождение нейротрансмиттера вызвано генерацией градиентов Ca 2+ , вызванных входящими потенциалами действия . Ионы Ca 2+ вызывают мобилизацию вновь синтезированных везикул из резервного пула для прохождения этого мембранного слияния. Этот механизм действия был обнаружен в гигантских аксонах кальмара. [8] Снижение внутриклеточных ионов Ca 2+ обеспечивает прямой ингибирующий эффект на высвобождение нейротрансмиттера. [1] После того, как происходит высвобождение нейротрансмиттера, везикулярные мембраны возвращаются к источникам своего производства. Каналы ионов кальция могут различаться в зависимости от места падения. Например, каналы в терминале аксона отличаются от типичных кальциевых каналов тела клетки (будь то нервные или нет). Даже на окончаниях аксонов типы кальциевых ионных каналов могут различаться, как в случае с кальциевыми каналами P-типа, расположенными в нервно-мышечном соединении . [1]

Экспрессия нейронных генов

Половые различия

Различия в определении пола контролируются половыми хромосомами . Выбросы половых гормонов оказывают значительное влияние на половой диморфизм (фенотипическую дифференциацию половых признаков) мозга. Недавние исследования, по-видимому, предполагают, что регулирование этих диморфизмов имеет значение для понимания нормальной и ненормальной функции мозга. Половой диморфизм может значительно зависеть от половой экспрессии генов мозга, которая варьируется от вида к виду.

Животные модели, такие как грызуны, Drosophila melanogaster и Caenorhabditis elegans , использовались для наблюдения за происхождением и/или степенью половой предвзятости в мозге по сравнению с гормон-продуцирующими гонадами животного. В случае с грызунами исследования генетической манипуляции половыми хромосомами привели к эффекту на один пол, который был полностью противоположен эффекту на другой пол. Например, нокаутирование определенного гена привело только к тревожно-подобным эффектам у самцов. В ходе исследований на D. menlanogaster было обнаружено, что большая мозговая половая предвзятость выражения имела место даже после удаления гонад, что предполагает, что половая предвзятость может быть независимой от гормонального контроля в определенных аспектах. [9]

Наблюдение за генами, связанными с полом, имеет потенциальную клиническую значимость в наблюдении за физиологией мозга и потенциальную возможность связанных (прямо или косвенно) неврологических расстройств. Примерами заболеваний, связанных с полом в развитии, являются болезнь Хантингтона , церебральная ишемия и болезнь Альцгеймера . [9]

Эпигенетика мозга

На многие функции мозга можно влиять на клеточном и молекулярном уровне с помощью вариаций и изменений в экспрессии генов, не изменяя последовательность ДНК в организме. Это также известно как эпигенетическая регуляция. Примерами эпигенетических механизмов являются модификации гистонов и метилирование ДНК . Было обнаружено, что такие изменения оказывают сильное влияние на частоту заболеваний мозга, психических заболеваний и наркомании. [10] Было показано, что эпигенетический контроль участвует в высоких уровнях пластичности на раннем этапе развития, тем самым определяя его важность в критический период организма. [11] Примеры того, как эпигенетические изменения могут влиять на мозг человека, следующие:

Молекулярные механизмы нейродегенеративных заболеваний

Эксайтотоксичность и глутаматные рецепторы

Эксайтотоксичность — это явление, при котором рецепторы глутамата активируются ненадлежащим образом. Это может быть вызвано длительной возбуждающей синаптической передачей, при которой высокие уровни нейротрансмиттера глутамата вызывают чрезмерную активацию в постсинаптическом нейроне, что может привести к гибели постсинаптического нейрона. После травмы мозга (например, от ишемии ) было обнаружено, что эксайтотоксичность является существенной причиной повреждения нейронов. Это можно понять в случае, когда внезапная перфузия крови после снижения притока крови к мозгу может привести к чрезмерной синаптической активности, вызванной наличием повышенного уровня глутамата и аспартата в период ишемии. [5] [13]

болезнь Альцгеймера

Болезнь Альцгеймера является наиболее распространенным нейродегенеративным заболеванием и наиболее распространенной формой слабоумия у пожилых людей. Расстройство характеризуется прогрессирующей потерей памяти и различных когнитивных функций. Предполагается , что отложение пептида амилоида-β (40-42 аминокислотных остатка) в мозге является неотъемлемой частью заболеваемости болезнью Альцгеймера. Предполагается, что накопление блокирует долгосрочную потенциацию гиппокампа . Также возможно, что рецептором для олигомеров амилоида-β может быть прионный белок. [14]

болезнь Паркинсона

Болезнь Паркинсона является вторым по распространенности нейродегенеративным заболеванием после болезни Альцгеймера. Это гипокинетическое заболевание базальных ганглиев , вызванное потерей дофаминергических нейронов в черной субстанции человеческого мозга. Таким образом, тормозной отток базальных ганглиев не уменьшается, и поэтому верхние двигательные нейроны , опосредованные таламусом , не активируются своевременно. Конкретные симптомы включают ригидность, проблемы с осанкой, медленные движения и тремор. Блокирование входа ГАМК-рецепторов от средних шипиковых нейронов к ретикулярным клеткам вызывает торможение верхних двигательных нейронов, подобное торможению, которое происходит при болезни Паркинсона. [5]

болезнь Хантингтона

Болезнь Хантингтона — это гиперкинетическое заболевание базальных ганглиев , вызванное отсутствием нормальных ингибирующих сигналов от средних шипиковых нейронов базальных ганглиев. Это вызывает эффекты, противоположные тем, которые связаны с болезнью Паркинсона, включая неадекватную активацию верхних двигательных нейронов . Как и в случае с ГАМКергическими механизмами, наблюдаемыми в связи с болезнью Паркинсона, агонист ГАМК, введенный в черную субстанцию ​​pars reticulata, снижает ингибирование верхних двигательных нейронов, что приводит к баллистическим непроизвольным двигательным движениям, похожим на симптомы болезни Хантингтона. [5]

Ссылки

  1. ^ abcdefghijkl Лонгстафф, Алан; Ревест, Патрисия (1998). Молекулярная нейронаука . Гирляндная наука. ISBN 978-1859962503.
  2. ^ "Что такое нейротрансмиттеры?". Архивировано из оригинала 25 сентября 2019 года . Получено 1 ноября 2013 года .
  3. ^ Риддл, Дональд (1998). C. Elegans II. Нью-Йорк: Cold Spring Harbor Laboratory Press. ISBN 978-0879695323.
  4. ^ Ходжкин, Аллан Л.; Эндрю Ф. Хаксли (1952). «Двойной эффект мембранного потенциала на натриевую проводимость в гигантском аксоне Лолиго». Журнал физиологии . 116 (4): 497–506. doi :10.1113/jphysiol.1952.sp004719. PMC 1392212. PMID  14946715 . 
  5. ^ abcdefgh Purves, Dale (2012). Neuroscience (5-е изд.). Массачусетс, США: Sinauer Associates, Inc. стр. 80. ISBN 978-0-87893-695-3.
  6. ^ Камб, Александр; Линда Э. Айверсон; Марк А. Тануйе (31 июля 1987 г.). «Молекулярная характеристика Shaker, гена Drosophila, кодирующего калиевый канал». Cell . 50 (3): 405–413. doi :10.1016/0092-8674(87)90494-6. PMID  2440582. S2CID  31247228.
  7. ^ Дэвис, Р. Уэйн; Брайан Дж. Моррис (1997). Молекулярная биология нейрона . Оксфорд, Великобритания: BIOS Scientific Publishers Ltd. ISBN 978-1859962404.
  8. ^ Dipolo, R.; C. Caputo; F. Bezanilla (март 1983 г.). «Потенциал-зависимый кальциевый канал в аксоне кальмара». Proc Natl Acad Sci USA . 80 (6): 1743–1745. Bibcode : 1983PNAS...80.1743D. doi : 10.1073/pnas.80.6.1743 . PMC 393680. PMID  6300873 . 
  9. ^ ab Jazin, E.; Cahill, L. (январь 2010 г.). «Различия пола в молекулярной нейронауке: от плодовых мушек до людей». Nature Reviews Neuroscience . 11 (1): 9–17. doi :10.1038/nrn2754. PMID  20019686. S2CID  2545405.
  10. ^ "Эпигенетика и человеческий мозг". Центр генетической науки и обучения при Университете Юты . Получено 10 ноября 2013 г.
  11. ^ ab Fagiolini, Michela; Catherin L. Jensen; Frances A. Champagne (2009). "Epigenetic Influences on brain development and plasticity" (PDF) . Current Opinion in Neurobiology . 19 (2): 1–6. doi :10.1016/j.conb.2009.05.009. PMC 2745597 . PMID  19545993. Архивировано из оригинала (PDF) 22 июня 2010 г. . Получено 14 ноября 2013 г. . 
  12. ^ abc Tsankova, Nadia; Renthal, William; Kumar, Arvind; Nestler, Eric J. (2007). «Эпигенетическая регуляция при психических расстройствах». Nature Reviews Neuroscience . 8 (5): 355–367. doi :10.1038/nrn2132. PMID  17453016. S2CID  34125955.
  13. ^ Lau, A.; M. Tymianski (2010). «Рецепторы глутамата, нейротоксичность и нейродегенерация». Pflügers Arch . 460 (2): 525–542. doi :10.1007/s00424-010-0809-1. PMID  20229265. S2CID  12421120.
  14. ^ Laren, Juha; David A. Gimbel; Haakon B. Nygaard; John W. Gilbert (февраль 2009 г.). «Клеточный прионный белок опосредует нарушение синаптической пластичности олигомерами амилоида-β». Nature . 457 (7233): 1128–1132. Bibcode :2009Natur.457.1128L. doi :10.1038/nature07761. PMC 2748841 . PMID  19242475.