Оогенез , овогенез , или оогенез / ˌ oʊ . ə ˈ dʒ ɛ n ɪ s ɪ s / [1] — дифференцировка яйцеклетки ( яйцеклетки) в клетку, способную к дальнейшему развитию при оплодотворении. [2] Он развивается из первичного ооцита в процессе созревания. Оогенез начинается на эмбриональной стадии.
У млекопитающих первая часть оогенеза начинается в зародышевом эпителии , что дает начало развитию овариальных фолликулов — функциональной единицы яичника .
Оогенез состоит из нескольких подпроцессов: ооцитогенеза , отидогенеза и, наконец, созревания с образованием яйцеклетки (собственно оогенеза). Фолликулогенез — отдельный подпроцесс, сопровождающий и поддерживающий все три оогенетических подпроцесса.
Оогоний — (Ооцитогенез) —> Первичный ооцит — (Мейоз I) —> Первое полярное тельце (позже отбрасывается) + Вторичный ооцит — (Мейоз II) —> Второе полярное тельце (отбрасывается позже) + Яйцеклетка
Мейоз ооцитов, важный для всех жизненных циклов животных, но в отличие от всех других случаев деления клеток животных, происходит совершенно без помощи центросом , координирующих веретено . [3] [4]
Образование оогоний традиционно относится не к собственно оогенезу, а к общему процессу гаметогенеза , который у женщины женского пола начинается с процессов фолликулогенеза , ооцитогенеза и отидогенеза . Оогонии вступают в мейоз во время эмбрионального развития, становясь ооцитами. Мейоз начинается с репликации ДНК и мейотического кроссинговера. Затем он останавливается в ранней профазе.
Ооциты млекопитающих находятся в состоянии остановки профазы мейоза в течение очень длительного времени — месяцев у мышей и лет у человека. Первоначально остановка происходит из-за отсутствия достаточного количества белков клеточного цикла, необходимых для мейотической прогрессии. Однако по мере роста ооцита эти белки синтезируются, и остановка мейоза становится зависимой от циклического АМФ . [5] Циклический АМФ вырабатывается ооцитом под действием аденилатциклазы в мембране ооцита. Активность аденилатциклазы поддерживается конститутивно активным рецептором, связанным с G-белком, известным как GPR3 , и G-белком Gs, также присутствующим в мембране ооцита. [6]
Поддержание остановки мейоза также зависит от наличия многослойного комплекса клеток, известного как фолликул, который окружает ооцит. Удаление ооцита из фолликула приводит к прогрессированию мейоза в ооците. [7] Клетки, составляющие фолликул, известные как гранулезные клетки, соединены друг с другом белками, известными как щелевые соединения, которые позволяют небольшим молекулам проходить между клетками. Клетки гранулезы производят небольшую молекулу циклического ГМФ , которая диффундирует в ооцит через щелевые контакты. В ооците циклический ГМФ предотвращает расщепление циклического АМФ фосфодиэстеразой ФДЭ3 и, таким образом, поддерживает арест мейоза. [8] Циклический GMP вырабатывается гуанилилциклазой NPR2. [9]
По мере роста фолликулы приобретают рецепторы лютеинизирующего гормона — гормона гипофиза, который повторно инициирует мейоз в ооците и вызывает овуляцию оплодотворенной яйцеклетки. Лютеинизирующий гормон действует на рецепторы наружных слоев гранулезных клеток фолликула, вызывая снижение циклического ГМФ в гранулезных клетках. [5] Поскольку гранулезные клетки и ооцит соединены щелевыми соединениями, циклический ГМФ также снижается в ооците, вызывая возобновление мейоза. [10] Затем мейоз переходит ко второй метафазе, где он снова приостанавливается до оплодотворения. Лютеинизирующий гормон также стимулирует экспрессию генов, приводящую к овуляции. [11]
Оогенез начинается с процесса развития первичных ооцитов, который происходит посредством трансформации оогониев в первичные ооциты , процесс, называемый ооцитогенезом . [12] Из одного оогония вырастет только один зрелый ооцит, а еще 3 клетки называются полярными тельцами. Ооцитогенез завершается либо до, либо вскоре после рождения.
Принято считать, что после завершения ооцитогенеза дополнительные первичные ооциты не образуются, в отличие от мужского процесса сперматогенеза, при котором гаметоциты создаются непрерывно. Другими словами, первичные ооциты достигают своего максимального развития примерно на 20 [13] неделях гестационного возраста, когда было создано около семи миллионов первичных ооцитов; однако при рождении это число уже сократилось примерно до 1-2 миллионов на яичник. В период полового созревания количество ооцитов снижается еще больше и достигает примерно 60 000–80 000 на яичник, и в течение жизни женщины образуется только около 500 зрелых ооцитов, остальные подвергаются атрезии (дегенерации).
Две публикации подвергли сомнению мнение о том, что ко времени рождения формируется конечное количество ооцитов. [14] [15] Сообщалось об обновлении фолликулов яичников из стволовых клеток зародышевой линии (происходящих из костного мозга и периферической крови) в постнатальных яичниках мышей. Напротив, измерения часов ДНК не указывают на продолжающийся оогенез в течение жизни женщин. [16] Таким образом, необходимы дальнейшие эксперименты, чтобы определить истинную динамику образования малых фолликулов.
Последующая фаза оотидогенеза наступает, когда первичный ооцит развивается в яйцеклетку . Это достигается процессом мейоза. Фактически, первичный ооцит по биологическому определению — это клетка, основной функцией которой является деление в процессе мейоза. [17]
Однако, хотя этот процесс начинается еще в пренатальном возрасте, он останавливается в профазе I. На позднем этапе внутриутробного развития все яйцеклетки, все еще первичные, останавливаются на этой стадии развития, называемой диктиатом . После менархе эти клетки продолжают развиваться, хотя лишь немногие из них делают это каждый менструальный цикл .
Мейоз I оотидогенеза начинается во время эмбрионального развития, но останавливается на стадии диплотены профазы I до полового созревания. Мышиный ооцит на стадии диктиата (длительная диплотена) активно восстанавливает повреждения ДНК, тогда как репарация ДНК не обнаруживается на преддиктиатных ( лептотене , зиготене и пахитене ) стадиях мейоза. [18] Однако для тех первичных ооцитов, которые продолжают развиваться в каждом менструальном цикле, возникает синапсис и образуются тетрады , что позволяет происходить хромосомному кроссинговеру . В результате мейоза I первичный ооцит превратился во вторичный ооцит .
Сразу после мейоза I гаплоидный вторичный ооцит инициирует мейоз II . Однако этот процесс также останавливается на стадии метафазы II до момента оплодотворения , если оно когда-либо произойдет. Если яйцеклетка не оплодотворена, она распадается и выделяется ( менструация ), а вторичный ооцит не завершает мейоз II (и не становится яйцеклеткой ) . Когда мейоз II завершился, были созданы яйцеклетка и еще одно полярное тельце. Полярное тело имеет небольшие размеры.
Синхронно с оотидогенезом окружающий яйцеклетку овариальный фолликул развился из примордиального фолликула в преовуляторный.
Оба полярных тельца распадаются в конце мейоза II, оставляя только яйцеклетку, которая затем в конечном итоге созревает в зрелую яйцеклетку.
Функция формирования полярных телец заключается в отбрасывании лишних гаплоидных наборов хромосом, образовавшихся в результате мейоза.
Созревание in vitro ( IVM ) – это метод, позволяющий фолликулам яичников созреть in vitro . Потенциально это может быть выполнено перед ЭКО . В таких случаях гиперстимуляция яичников не является существенной. Скорее, ооциты могут созреть вне организма до ЭКО. Следовательно, в организм не нужно вводить гонадотропины (или, по крайней мере, меньшие дозы). [19] Незрелые яйца выращивали до созревания in vitro с выживаемостью 10%, но этот метод еще клинически не доступен. [20] С помощью этого метода криоконсервированная ткань яичников может быть использована для создания ооцитов, которые могут быть непосредственно подвергнуты экстракорпоральному оплодотворению . [20]
По определению это означает повторение оогенеза млекопитающих и получение оплодотворяемых ооцитов in vitro. Это сложный процесс, включающий несколько различных типов клеток, точные реципрокные взаимодействия фолликулярных клеток и ооцитов, различные питательные вещества и комбинации цитокинов, а также точные факторы роста и гормоны. в зависимости от стадии развития. [21] В 2016 году две статьи, опубликованные Morohaku et al. и Хикабе и др. сообщили о процедурах in vitro, которые, по-видимому, эффективно воспроизводят эти условия, позволяя производить полностью в чашке относительно большое количество ооцитов, которые пригодны для оплодотворения и способны дать начало жизнеспособному потомству у мышей. Этот метод может быть полезен главным образом у онкологических больных, у которых в сегодняшнем состоянии ткань яичников криоконсервируется для сохранения фертильности. В качестве альтернативы аутологичной трансплантации разработка культуральных систем, поддерживающих развитие ооцитов со стадии примордиального фолликула, представляет собой действительную стратегию восстановления фертильности. Со временем было проведено множество исследований с целью оптимизации характеристик систем культуры тканей яичников и лучшей поддержки трех основных фаз: 1) активации примордиальных фолликулов; 2) выделение и культура растущих преантральных фолликулов; 3) удаление из среды фолликула и созревание кумулюсных комплексов ооцита. Хотя полное развитие ооцитов in vitro было достигнуто у мышей с получением живого потомства, цель получения ооцитов достаточного качества для поддержки развития эмбриона не была полностью достигнута у высших млекопитающих, несмотря на десятилетия усилий. [22]
Белки BRCA1 и ATM используются для восстановления двухцепочечного разрыва ДНК во время мейоза . Эти белки, по-видимому, играют решающую роль в сопротивлении старению яичников . [23] Однако гомологичная рекомбинационная репарация двухцепочечных разрывов ДНК, опосредованная BRCA1 и ATM, ослабевает с возрастом в ооцитах человека и других видов. [23] Женщины с мутациями BRCA1 имеют более низкие резервы яичников и наступают более раннюю менопаузу , чем женщины без этих мутаций. Даже у женщин без специфических мутаций BRCA1 старение яичников связано с истощением резервов яичников, что приводит к менопаузе, но более медленными темпами, чем у женщин с такими мутациями. Поскольку пожилые женщины в пременопаузе обычно имеют нормальное потомство, их способность к мейотической рекомбинационной репарации, по-видимому, достаточна для предотвращения ухудшения их зародышевой линии , несмотря на снижение овариального резерва. Повреждения ДНК могут возникнуть в зародышевой линии в течение десятилетий у людей между ранним ооцитогенезом и стадией мейоза, на которой гомологичные хромосомы эффективно спариваются ( стадия диктиата ). Было высказано предположение, что такие повреждения ДНК могут быть устранены в значительной степени с помощью механизмов, зависящих от спаривания хромосом, таких как гомологичная рекомбинация. [24]
Некоторые водоросли и оомицеты откладывают яйца в оогониях . У бурой водоросли Fucus все четыре яйцеклетки переживают оогенез, что является исключением из правила, согласно которому обычно до зрелости доживает только один продукт женского мейоза.
У растений оогенез происходит внутри женского гаметофита посредством митоза . У многих растений (например , мохообразных , папоротников , голосеменных ) яйцеклетки образуются в архегониях . У цветковых растений женский гаметофит уменьшен до восьмиклеточного зародышевого мешка внутри семязачатка внутри завязи цветка. Оогенез происходит внутри зародышевого мешка и приводит к образованию одной яйцеклетки на семязачаток.
У аскарид ооцит даже не начинает мейоз до тех пор, пока его не коснется сперматозоид , в отличие от млекопитающих, у которых мейоз завершается в цикле течки .
У самок мух -дрозофил во время мейоза происходит генетическая рекомбинация . Эта рекомбинация связана с образованием двухцепочечных разрывов ДНК и их репарацией . [25] Процесс репарации приводит к образованию кроссинговерных рекомбинантов , а также по меньшей мере в три раза большему количеству некроссинговерных рекомбинантов (например, возникающих в результате конверсии генов без кроссинговера). [25]
Чо В.К., Стерн С., Биггерс Дж.Д. 1974. Ингибирующее действие дибутирил-цАМФ на созревание ооцитов мышей in vitro. J Exp Zool.187:383-386
{{cite journal}}
: Требуется цитировать журнал |journal=
( помощь )