stringtranslate.com

Оогенез

Оогенез ( / ˌ . ə ˈ ɛ n ɪ s ɪ s / ) или овогенез — это дифференциация яйцеклетки ( яйцеклетки) в клетку, способную к дальнейшему развитию при оплодотворении. [1] Она развивается из первичного ооцита путем созревания. Оогенез начинается на эмбриональной стадии.

Оогенез у млекопитающих, не являющихся человеком

Диаграмма, показывающая уменьшение числа хромосом в процессе созревания яйцеклетки . (У млекопитающих первое полярное тельце обычно распадается перед делением, поэтому образуются только два полярных тельца. [ необходима ссылка ] )

У млекопитающих первая часть оогенеза начинается в зародышевом эпителии , что приводит к развитию овариальных фолликулов — функциональной единицы яичника .

Оогенез состоит из нескольких подпроцессов: ооцитогенез , оотидогенез и, наконец, созревание с образованием яйцеклетки (собственно оогенез). Фолликулогенез — это отдельный подпроцесс, который сопровождает и поддерживает все три оогенетических подпроцесса.

Оогоний — (Ооцитогенез) —> Первичный ооцит — (Мейоз I) —> Первое полярное тельце (впоследствии отбрасывается) + Вторичный ооцит — (Мейоз II) —> Второе полярное тельце (впоследствии отбрасывается) + Яйцеклетка

Мейоз ооцитов, важный для всех жизненных циклов животных, однако в отличие от всех других случаев деления животных клеток, происходит полностью без помощи координирующих веретено центросом . [2] [3]

Создание оогоний

Создание оогоний традиционно не относится к собственно оогенезу, а, вместо этого, к общему процессу гаметогенеза , который у женщин начинается с процессов фолликулогенеза , ооцитогенеза и оотидогенеза . Оогонии вступают в мейоз во время эмбрионального развития, становясь ооцитами. Мейоз начинается с репликации ДНК и мейотического кроссинговера. Затем он останавливается в ранней профазе.

Поддержание мейотического ареста

Ооциты млекопитающих поддерживаются в состоянии остановки мейотической профазы в течение очень долгого времени — месяцы у мышей и годы у людей. Первоначально остановка происходит из-за отсутствия достаточного количества белков клеточного цикла для мейотической прогрессии. Однако по мере роста ооцита эти белки синтезируются, и остановка мейоза становится зависимой от циклического АМФ . [4] Циклический АМФ вырабатывается ооцитом аденилатциклазой в мембране ооцита. Аденилатциклаза поддерживается активной конститутивно активным рецептором, связанным с G-белком, известным как GPR3 , и G-белком, Gs, также присутствующим в мембране ооцита. [5]

Поддержание мейотического ареста также зависит от наличия многослойного комплекса клеток, известного как фолликул, который окружает ооцит. Удаление ооцита из фолликула вызывает прогрессирование мейоза в ооците. [6] Клетки, составляющие фолликул, известные как гранулезные клетки, соединены друг с другом белками, известными как щелевые контакты, которые позволяют небольшим молекулам проходить между клетками. Гранулезные клетки вырабатывают небольшую молекулу, циклический ГМФ , которая диффундирует в ооцит через щелевые контакты. В ооците циклический ГМФ предотвращает расщепление циклического АМФ фосфодиэстеразой PDE3 и, таким образом, поддерживает мейотический арест. [7] Циклический ГМФ вырабатывается гуанилатциклазой NPR2. [8]

Реинициация мейоза и стимуляция овуляции лютеинизирующим гормоном

По мере роста фолликулов они приобретают рецепторы для лютеинизирующего гормона, гормона гипофиза, который повторно инициирует мейоз в ооците и вызывает овуляцию оплодотворяемой яйцеклетки. Лютеинизирующий гормон действует на рецепторы во внешних слоях гранулезных клеток фолликула, вызывая снижение циклического ГМФ в гранулезных клетках. [4] Поскольку гранулезные клетки и ооцит соединены щелевыми контактами, циклический ГМФ также снижается в ооците, заставляя мейоз возобновляться. [9] Затем мейоз переходит ко второй метафазе, где он снова останавливается до оплодотворения. Лютеинизирующий гормон также стимулирует экспрессию генов, приводящую к овуляции. [10]

Оогенез в эукариотических клетках. (A) оогоний, где происходит митотическое деление (B) дифференциация и начинается мейоз I (C) первичный ооцит (D) мейоз I завершен и начинается мейоз II (E) вторичный ооцит (F) первое полярное тельце (G) должна произойти овуляция, а наличие проникновения сперматозоида (оплодотворение) индуцирует завершение мейоза II (H) яйцеклетка (I) второе полярное тельце

Оогенез человека

Оогенез на протяжении жизни женщины

Оогенез

Оогенез начинается с процесса развития первичных ооцитов, который происходит посредством трансформации оогоний в первичные [ооциты], процесс, называемый ооцитогенезом . [11] Из одного единственного оогония вырастет только один зрелый ооцит с тремя другими клетками, называемыми полярными тельцами. Ооцитогенез завершается либо до, либо вскоре после рождения.

Количество первичных ооцитов

Обычно считается, что, когда ооцитогенез завершен, никаких дополнительных первичных ооцитов не создается, в отличие от мужского процесса сперматогенеза, где гаметоциты создаются непрерывно. Другими словами, первичные ооциты достигают своего максимального развития примерно на 20 неделе гестационного возраста, когда создается около семи миллионов первичных ооцитов; однако при рождении это число уже сокращается примерно до 1-2 миллионов на яичник. В период полового созревания количество ооцитов уменьшается еще больше и достигает примерно 60 000-80 000 на яичник, и только около 500 зрелых ооцитов будут произведены в течение жизни женщины, остальные подвергнутся атрезии (дегенерации). [12] Две публикации подвергли сомнению убеждение в том, что конечное число ооцитов устанавливается примерно во время генерации рождения в яичниках взрослых млекопитающих предполагаемыми зародышевыми клетками в костном мозге и периферической крови. [13] [14] Обновление фолликулов яичников из стволовых клеток зародышевой линии (происходящих из костного мозга и периферической крови) было отмечено в постнатальном яичнике мыши. Напротив, измерения ДНК-часов не указывают на продолжающийся оогенез в течение жизни человеческих женщин. [15] Таким образом, необходимы дальнейшие эксперименты для определения истинной динамики формирования малых фолликулов.

Оотидогенез

Последующая фаза оотидогенеза происходит, когда первичный ооцит развивается в оотиду . Это достигается в процессе мейоза. Фактически, первичный ооцит, по своему биологическому определению, является клеткой, чьей основной функцией является деление в процессе мейоза. [16]

Однако, хотя этот процесс начинается в пренатальном возрасте, он останавливается в профазе I. В конце фетальной жизни все ооциты, все еще первичные ооциты, останавливаются на этой стадии развития, называемой диктиатом . После менархе эти клетки продолжают развиваться, хотя лишь немногие делают это каждый менструальный цикл .

Мейоз I

Мейоз I оотидогенеза начинается во время эмбрионального развития, но останавливается на стадии диплотены профазы I до полового созревания. Ооцит мыши на стадии диктиата (длительной диплотены) активно восстанавливает повреждения ДНК, тогда как на стадиях предиктиата ( лептотена , зиготена и пахитена ) мейоза восстановление ДНК не обнаруживается. [17] Однако для тех первичных ооцитов, которые продолжают развиваться в каждом менструальном цикле, происходит синапсис и образуются тетрады , что позволяет происходить хромосомному кроссинговеру . В результате мейоза I первичный ооцит теперь развился во вторичный ооцит .

Мейоз II

Сразу после мейоза I гаплоидный вторичный ооцит инициирует мейоз II . Однако этот процесс также останавливается на стадии метафазы II до оплодотворения , если таковое когда-либо произойдет. Если яйцеклетка не оплодотворена, она распадается и высвобождается ( менструация ), а вторичный ооцит не завершает мейоз II (и не становится яйцеклеткой ) . Когда мейоз II завершается, создаются яйцеклетка и еще одно полярное тельце. Полярное тельце имеет небольшой размер.

Овариальный цикл

Овариальный цикл делится на несколько фаз:

Маточный цикл

Маточный цикл [20] происходит параллельно овариальному циклу и индуцируется эстрогеном и прогестероном. Эндометрий , образованный моностратифицированным цилиндрическим эпителием с маточными железами (простыми трубчатыми), соединенными с функциональным поверхностным слоем (разделенным на губчатый слой, компактный слой и более глубокий базальный слой, который всегда сохраняется), представляет четыре фазы:

Если же вместо этого происходит оплодотворение, слизистая оболочка матки модифицируется, чтобы принять оплодотворенную яйцеклетку, и секреторная фаза сохраняется.

Созревание в яйцеклетку

Оба полярных тельца распадаются в конце мейоза II, оставляя только яйцеклетку, которая затем в конечном итоге созревает в зрелую яйцеклетку.

Функция формирования полярных телец заключается в отбрасывании дополнительных гаплоидных наборов хромосом, которые образовались в результате мейоза.

Созревание in vitro

Созревание in vitro ( IVM ) — это метод, позволяющий фолликулам яичников созреть in vitro . Потенциально его можно проводить перед ЭКО . В таких случаях гиперстимуляция яичников не является обязательной. Напротив, ооциты могут созревать вне организма до ЭКО. Следовательно, в организм не нужно вводить гонадотропины (или, по крайней мере, вводить их в меньших дозах). [21] Незрелые яйцеклетки выращивались до созревания in vitro с 10%-ным коэффициентом выживаемости, но этот метод пока не доступен клинически. [22] С помощью этого метода криоконсервированную ткань яичников можно было бы использовать для создания ооцитов, которые могут напрямую подвергаться оплодотворению in vitro . [22]

Оогенез in vitro

По определению это означает повторение оогенеза млекопитающих и получение оплодотворяемых ооцитов in vitro. Это сложный процесс, включающий несколько различных типов клеток, точные взаимные взаимодействия фолликулярных клеток и ооцитов, различные питательные вещества и комбинации цитокинов, а также точные факторы роста и гормоны в зависимости от стадии развития. [23] В 2016 году в двух статьях, опубликованных Морохаку и др. и Хикабе и др., сообщалось о процедурах in vitro, которые, по-видимому, эффективно воспроизводят эти условия, позволяя производить полностью в чашке Петри относительно большое количество ооцитов, которые оплодотворяемы и способны дать начало жизнеспособному потомству у мышей. Этот метод может быть в основном полезен для онкологических пациентов, у которых в сегодняшнем состоянии их ткань яичников криоконсервируется для сохранения фертильности. В качестве альтернативы аутологичной трансплантации разработка систем культивирования, которые поддерживают развитие ооцитов со стадии первичного фолликула, представляет собой действенную стратегию восстановления фертильности. Со временем было проведено множество исследований с целью оптимизации характеристик систем культивирования тканей яичников и лучшей поддержки трех основных фаз: 1) активация примордиальных фолликулов; 2) изоляция и культивирование растущих преантральных фолликулов; 3) удаление из среды фолликулов и созревание комплексов кумулюса ооцитов. В то время как полное развитие ооцитов in vitro было достигнуто у мышей с получением живого потомства, цель получения ооцитов достаточного качества для поддержки развития эмбриона не была полностью достигнута у высших млекопитающих, несмотря на десятилетия усилий. [24]

Старение яичников

Белки BRCA1 и ATM используются для восстановления двухцепочечных разрывов ДНК во время мейоза . Эти белки, по-видимому, играют решающую роль в сопротивлении старению яичников . [25] Однако гомологичная рекомбинационная репарация двухцепочечных разрывов ДНК, опосредованная BRCA1 и ATM, ослабевает с возрастом в ооцитах людей и других видов. [25] Женщины с мутациями BRCA1 имеют более низкие резервы яичников и испытывают более раннюю менопаузу, чем женщины без этих мутаций. Даже у женщин без специфических мутаций BRCA1 старение яичников связано с истощением резервов яичников, что приводит к менопаузе, но более медленными темпами, чем у женщин с такими мутациями. Поскольку у пожилых женщин в пременопаузе обычно нормальное потомство, их способность к мейотической рекомбинационной репарации, по-видимому, достаточна для предотвращения ухудшения их зародышевой линии, несмотря на сокращение резерва яичников. Повреждения ДНК могут возникать в зародышевой линии в течение десятилетий длительного периода у людей между ранним ооцитогенезом и стадией мейоза, на которой гомологичные хромосомы эффективно спариваются ( стадия диктиата ). Было высказано предположение, что такие повреждения ДНК могут быть устранены, в значительной степени, механизмами, зависящими от спаривания хромосом, такими как гомологичная рекомбинация. [26]

Оогенез у не млекопитающих

Схема оогенеза у дигенеи ( Plathelminthes )

Некоторые водоросли и оомицеты производят яйца в оогониях . У бурой водоросли Fucus все четыре яйцеклетки выживают в оогенезе, что является исключением из правила, согласно которому обычно только один продукт женского мейоза доживает до зрелости.

У растений оогенез происходит внутри женского гаметофита посредством митоза . У многих растений, таких как мохообразные , папоротники и голосеменные , яйцеклетки образуются в архегониях . У цветковых растений женский гаметофит был редуцирован до восьмиклеточного зародышевого мешка внутри семяпочки внутри завязи цветка. Оогенез происходит внутри зародышевого мешка и приводит к образованию одной яйцеклетки на семяпочку.

У аскарид ооцит даже не начинает мейоз, пока к нему не прикоснется сперматозоид , в отличие от млекопитающих, у которых мейоз завершается в течение эстрального цикла.

У самок мух Drosophila генетическая рекомбинация происходит во время мейоза . Эта рекомбинация связана с образованием двухцепочечных разрывов ДНК и их восстановлением . [27] Процесс восстановления приводит к образованию кроссоверных рекомбинантов, а также по крайней мере в три раза большего количества некроссоверных рекомбинантов (например, возникающих в результате генной конверсии без кроссинговера). [27]

Смотрите также

Ссылки

Cho WK, Stern S, Biggers JD. 1974. Ингибирующее действие дибутирил цАМФ на созревание ооцитов мышей in vitro. J Exp Zool.187:383-386

  1. ^ Гилберт, Скотт Ф. (2000-01-01). «Оогенез». Sinauer Associates. {{cite journal}}: Цитировать журнал требует |journal=( помощь )
  2. ^ Szollosi D, Calarco P, Donahue RP (1972). «Отсутствие центриолей в первом и втором мейотических веретенах ооцитов мыши». J Cell Sci . 11 (2): 521–541. doi :10.1242/jcs.11.2.521. PMID  5076360.
  3. ^ Manandhar G, Schatten H, Sutovsky P (январь 2005 г.). «Редукция центросомы во время гаметогенеза и ее значение». Biol. Reprod . 72 (1): 2–13. doi : 10.1095/biolreprod.104.031245 . PMID  15385423. S2CID  37305534.
  4. ^ ab Джаффе, Лауринда А.; Эгберт, Джереми Р. (2017-02-10). «Регуляция мейоза ооцитов млекопитающих с помощью межклеточной коммуникации в пределах фолликула яичника». Annual Review of Physiology . 79 (1): 237–260. doi :10.1146/annurev-physiol-022516-034102. PMC 5305431. PMID  27860834 . 
  5. ^ Мельманн, Лиза М.; Саэки, Ёсинага; Танака, Сигеру; Бреннан, Томас Дж.; Евсиков Алексей Владимирович; Пендола, Фрэнк Л.; Ноулз, Барбара Б.; Эппиг, Джон Дж.; Яффе, Лауринда А. (10 декабря 2004 г.). «G s -связанный рецептор GPR3 ​​поддерживает остановку мейоза в ооцитах млекопитающих». Наука . 306 (5703): 1947–1950. Бибкод : 2004Sci...306.1947M. дои : 10.1126/science.1103974. PMID  15591206. S2CID  37342089.
  6. ^ Эдвардс, РГ (октябрь 1965 г.). «Созревание in vitro ооцитов мышей, овец, коров, свиней, макак-резусов и ооцитов яичников человека». Nature . 208 (5008): 349–351. Bibcode :1965Natur.208..349E. doi :10.1038/208349a0. PMID  4957259. S2CID  4285338.
  7. ^ Норрис, Рэйчел П.; Ратзан, Уильям Дж.; Фрейдзон, Марина; Мельманн, Лиза М.; Кралл, Джудит; Мовсесян, Мэтью А.; Ван, Хуанчен; Кэ, Хенгминг; Николаев, Вячеслав О.; Джаффе, Лауринда А. (июнь 2009 г.). «Циклик ГМФ из окружающих соматических клеток регулирует циклический АМФ и мейоз в ооците мыши». Development . 136 (11): 1869–1878. doi :10.1242/dev.035238. PMC 2680110 . PMID  19429786. 
  8. ^ Чжан, Мэйцзя; Су, Ю-Цян; Сугиура, Кодзи; Ся, Голян; Эппиг, Джон Дж. (15 октября 2010 г.). «Лиганд гранулезных клеток NPPC и его рецептор NPR2 поддерживают остановку мейоза в мышиных ооцитах». Наука . 330 (6002): 366–369. Бибкод : 2010Sci...330..366Z. дои : 10.1126/science.1193573. ПМК 3056542 . ПМИД  20947764. 
  9. ^ Шухайбар, Лея С.; Эгберт, Джереми Р.; Норрис, Рэйчел П.; Лампе, Пол Д.; Николаев Вячеслав О.; Тунеманн, Мартин; Вэнь, Лай; Фейл, Роберт; Яффе, Лауринда А. (16 марта 2015 г.). «Межклеточная передача сигналов посредством циклической диффузии GMP через щелевые соединения возобновляет мейоз в фолликулах яичников мыши». Труды Национальной академии наук . 112 (17): 5527–5532. Бибкод : 2015PNAS..112.5527S. дои : 10.1073/pnas.1423598112 . ПМЦ 4418852 . ПМИД  25775542. 
  10. ^ Ричардс, Джоанн С.; Асколи, Марио (май 2018 г.). «Эндокринные, паракринные и аутокринные сигнальные пути, которые регулируют овуляцию». Тенденции в эндокринологии и метаболизме . 29 (5): 313–325. doi :10.1016/j.tem.2018.02.012. PMID  29602523. S2CID  4491304.
  11. ^ NCBI - Сага о зародышевой линии
  12. ^ Lobo RA (сентябрь 2003 г.). «Раннее старение яичников: гипотеза. Что такое раннее старение яичников?». Hum. Reprod . 18 (9): 1762–4. CiteSeerX 10.1.1.611.1482 . doi : 10.1093/humrep/deg377 . PMID  12923124. 
  13. ^ Johnson J, Bagley J, Skaznik-Wikiel M, Lee HJ, Adams GB, Niikura Y, Tschudy KS, Tilly JC, Cortes ML, Forkert R, Spitzer T, Iacomini J, Scadden DT, Tilly JL (июль 2005 г.). «Генерация ооцитов в яичниках взрослых млекопитающих предполагаемыми зародышевыми клетками в костном мозге и периферической крови». Cell . 122 (2): 303–15. doi : 10.1016/j.cell.2005.06.031 . PMID  16051153.
  14. ^ Джонсон Дж., Каннинг Дж., Канеко Т., Пру Дж., Тилли Дж. (2004). «Стволовые клетки зародышевой линии и обновление фолликулов в постнатальном яичнике млекопитающих». Nature . 428 (6979): 145–50. Bibcode :2004Natur.428..145J. doi :10.1038/nature02316. PMID  15014492. S2CID  1124530.
  15. ^ Forster P, Hohoff C, Dunkelmann B, Schürenkamp M, Pfeiffer H, Neuhuber F, Brinkmann B (2015). "Повышенная частота мутаций зародышевой линии у отцов-подростков". Proc R Soc B . 282 (1803): 20142898. doi :10.1098/rspb.2014.2898. PMC 4345458 . PMID  25694621. 
  16. ^ "Biochem". Архивировано из оригинала 2010-06-15 . Получено 2007-07-18 .
  17. ^ Guli CL, Smyth DR (1988). «УФ-индуцированная репарация ДНК не обнаруживается в предиктивных ооцитах мыши». Mutat Res . 208 (2): 115–119. doi :10.1016/s0165-7992(98)90010-0. PMID  3380109.
  18. ^ Римон-Дахари, Ницан; Йерушалми-Хейнеманн, Лия; Альягор, Лиат; Декель, Нава (2016). «Овариальный фолликулогенез». Результаты и проблемы дифференцировки клеток . 58 : 167–190. дои : 10.1007/978-3-319-31973-5_7. ISBN 978-3-319-31971-1. ISSN  0080-1844. PMID  27300179.
  19. ^ Бетц, Даниэль; Фейн, Кэтлин (2024), «Хорионический гонадотропин человека», StatPearls , Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, PMID  30422545 , получено 06.04.2024
  20. ^ Тиягараджан, Дханалакшми К.; Басит, Хаджира; Жанмонод, Ребекка (2024 г.), «Физиология, менструальный цикл», StatPearls , Остров сокровищ (Флорида): StatPearls Publishing, PMID  29763196 , получено 6 апреля 2024 г.
  21. ^ "Vejledning om kunstig befrugtning 2006 (датский)" (PDF) . Архивировано из оригинала (PDF) 9 марта 2012 г. Проверено 29 января 2011 г.
  22. ^ аб
    • Маклафлин, М.; Альбертини, Д.Ф.; Уоллес, У.Х.Б.; Андерсон, Р.А.; Телфер, Э.Е. (2018). «Ооциты метафазы II из человеческих однослойных фолликулов, выращенных в многоступенчатой ​​системе культивирования». MHR: Basic Science of Reproductive Medicine . 24 (3): 135–142. doi : 10.1093/molehr/gay002 . hdl : 20.500.11820/55cbb793-3401-4172-80a9-44412ecdf216 . ISSN  1360-9947. PMID  29390119.
    • Дополнительные комментарии в статье BBC News : Джеймс Галлахер (2018-02-09). «Первые человеческие яйцеклетки, выращенные в лаборатории». BBC News .
  23. ^ Ван, Цзюнь-Цзе; Ге, Вэй; Лю, Цзин-Цай; Клингер, Франческа Джоя; Дайс, Пол В.; Де Феличи, Массимо; Шен, Вэй (2017). «Полный in vitro оогенез: ретроспективы и перспективы». Cell Death Differ . 24 (11): 1845–1852. doi :10.1038/cdd.2017.134. PMC 5635224 . PMID  28841213. 
  24. ^ Фаббри, Рафаэлла; Замбони, Кьяра; Виченти, Росселла; МакЧокка, Мария; Парадизи, Роберто; Сераккиоли, Ренато (2018). «Обновленная информация об оогенезе in vitro». Минерва Гинеколь . 70 (5): 588–608. дои : 10.23736/S0026-4784.18.04273-9. PMID  29999288. S2CID  51622568.
  25. ^ ab Turan, Volkan; Oktay, Kutluk (2020). «BRCA-связанная ATM-опосредованная репарация двухцепочечных разрывов ДНК и старение яичников». Human Reproduction Update . 26 (1): 43–57. doi :10.1093/humupd/dmz043. PMC 6935693. PMID  31822904 . 
  26. ^ Бернстайн, К. (1979). «Почему дети маленькие? Мейоз может предотвратить старение зародышевой линии». Перспективы в биологии и медицине . 22 (4): 539–544. doi :10.1353/pbm.1979.0041. PMID  573881. S2CID  38550472.
  27. ^ ab Mehrotra, S.; McKim, KS (2006-11-24). "Временной анализ образования и восстановления двухцепочечных разрывов мейотической ДНК у самок Drosophila". PLOS Genetics . 2 (11): e200. doi : 10.1371/journal.pgen.0020200 . PMC 1657055. PMID  17166055 . 
Библиография

Внешние ссылки