Ооцит ( UK : / ˈ oʊ ə s aɪ t / , US : / ˈ oʊ oʊ - / ), ооцит или овоцит - это женский гаметоцит или зародышевая клетка , участвующая в воспроизводстве . Другими словами, это незрелая яйцеклетка или яйцеклетка . Ооцит вырабатывается у женского плода в яичнике во время женского гаметогенеза . Женские зародышевые клетки производят первичную зародышевую клетку (ПЗК), которая затем претерпевает митоз , образуя оогонии . Во время оогенеза оогонии становятся первичными ооцитами. Ооцит - это форма генетического материала, который можно собрать для криоконсервации .
Формирование
Образование ооцита называется ооцитогенезом и является частью оогенеза. [1] Оогенез приводит к образованию как первичных ооцитов в плодный период, так и вторичных ооцитов после него в ходе овуляции .
Характеристики
Цитоплазма
Ооциты богаты цитоплазмой , которая содержит гранулы желтка, питающие клетку на ранних стадиях развития.
Ядро
На первичной стадии ооцита оогенеза ядро называется зародышевым пузырьком. [2]
Единственный нормальный человеческий тип вторичного ооцита имеет 23-ю (половую) хромосому 23,X (определяющую женский пол), тогда как сперматозоид может иметь 23,X (определяющую женский пол) или 23,Y (определяющую мужской пол).
Гнездо
Пространство внутри яйцеклетки или незрелой яйцеклетки называется клеткой-гнездом . [3]
Комплекс кумулюс-ооцит
Комплекс кумулюс-ооцит содержит слои плотно упакованных клеток кумулюса, окружающих ооцит в Граафовом фолликуле. Ооцит останавливается в мейозе II на стадии метафазы II и считается вторичным ооцитом. Перед овуляцией комплекс кумулюса проходит структурное изменение, известное как расширение кумулюса. Клетки гранулезы трансформируются из плотно сжатого в расширенный слизистый матрикс. Многие исследования показывают, что расширение кумулюса имеет решающее значение для созревания ооцита, поскольку комплекс кумулюса является прямой связью ооцита с развивающейся средой фолликула. Он также играет важную роль в оплодотворении, хотя механизмы этого не полностью известны и являются видоспецифичными. [4] [5] [6]
Материнский вклад
Для того чтобы ооцит оплодотворился и в конечном итоге вырос в полностью функционирующий организм, он должен быть в состоянии регулировать множество клеточных и развивающих процессов. Ооцит, большая и сложная клетка, должен быть в состоянии направлять рост эмбриона и контролировать клеточную активность. Поскольку ооцит является продуктом женского гаметогенеза , материнский вклад в ооцит и, следовательно, в недавно оплодотворенную яйцеклетку, огромен. Существует много типов молекул, которые поставляются матерью ооциту, которые будут направлять различные активности внутри растущей зиготы .
Предотвращение повреждения ДНК зародышевой линии
ДНК клетки уязвима для повреждающего воздействия окислительных свободных радикалов, образующихся в качестве побочных продуктов клеточного метаболизма. Повреждение ДНК, возникающее в ооцитах, если его не исправить, может быть летальным и привести к снижению плодовитости и потере потенциального потомства. Ооциты значительно крупнее средней соматической клетки, и поэтому для их обеспечения необходима значительная метаболическая активность. Если бы эта метаболическая активность осуществлялась метаболическим аппаратом ооцита, геном ооцита подвергался бы воздействию образующихся реактивных окислительных побочных продуктов. Таким образом, по-видимому, развился процесс, позволяющий избежать этой уязвимости ДНК зародышевой линии. Было высказано предположение, что для того, чтобы избежать повреждения генома ДНК ооцитов, метаболизм, способствующий синтезу большей части компонентов ооцита, был перемещен в другие материнские клетки, которые затем перенесли эти компоненты в ооциты. [7] [8] Таким образом, ооциты многих организмов защищены от окислительного повреждения ДНК, сохраняя при этом большую массу веществ для питания зиготы на начальном этапе ее эмбрионального роста.
Ооцит получает митохондрии от материнских клеток, которые в дальнейшем будут контролировать эмбриональный метаболизм и апоптотические события. [9] Разделение митохондрий осуществляется системой микротрубочек , которые локализуют митохондрии по всему ооциту. У некоторых организмов, таких как млекопитающие, отцовские митохондрии, принесенные в ооцит сперматозоидом, разрушаются посредством прикрепления убиквитинированных белков. Разрушение отцовских митохондрий обеспечивает строго материнское наследование митохондрий и митохондриальной ДНК (мтДНК). [9]
Ядрышко
У млекопитающих ядрышко ооцита происходит исключительно из материнских клеток. [22] Ядрышко, структура, обнаруженная внутри ядра, является местом, где рРНК транскрибируется и собирается в рибосомы. Хотя ядрышко плотное и неактивное в зрелом ооците, оно необходимо для правильного развития эмбриона. [22]
Рибосомы
Материнские клетки также синтезируют и вносят запас рибосом , которые требуются для трансляции белков до активации зиготического генома . В ооцитах млекопитающих материнские рибосомы и некоторые мРНК хранятся в структуре, называемой цитоплазматическими решетками. Было обнаружено, что эти цитоплазматические решетки, сеть фибрилл, белка и РНК, увеличивают плотность по мере уменьшения количества рибосом в растущем ооците [23] , а мутации в них связаны с бесплодием. [24] [25]
Профаза I арест
Самки млекопитающих и птиц рождаются со всеми ооцитами, необходимыми для будущих овуляций, и эти ооциты останавливаются на стадии профазы I мейоза . [26] У людей, например, ооциты формируются между тремя и четырьмя месяцами беременности внутри плода и, следовательно, присутствуют при рождении. Во время этой задержанной стадии профазы I ( диктиата ), которая может длиться много лет, в ооцитах присутствуют четыре копии генома . Остановка ооцитов на стадии четырех копий генома, по-видимому, обеспечивает информационную избыточность, необходимую для восстановления повреждений в ДНК зародышевой линии . [26] Используемый процесс восстановления, вероятно, включает гомологичную рекомбинационную репарацию. [26] [27] [28] Ооциты, задержанные на стадии профазы, обладают высокой способностью к эффективному восстановлению повреждений ДНК . [27] В частности, двухцепочечные разрывы ДНК могут быть восстановлены в период остановки профазы путем гомологичной рекомбинационной репарации и негомологичного соединения концов . [29] Способность к восстановлению ДНК, по-видимому, является ключевым механизмом контроля качества в женской зародышевой линии и критическим фактором, определяющим фертильность . [27]
Отцовский вклад
Сперматозоид, оплодотворяющий ооцит, внесет свой пронуклеус , другую половину зиготического генома . У некоторых видов сперматозоид также внесет центриоль , которая поможет составить зиготическую центросому, необходимую для первого деления. Однако у некоторых видов, например у мыши, вся центросома приобретается от матери. [30] В настоящее время изучается возможность других цитоплазматических вкладов, вносимых в эмбрион сперматозоидом.
Во время оплодотворения сперматозоид обеспечивает три основные части ооцита: (1) сигнальный или активирующий фактор, который активирует метаболически спящий ооцит; (2) гаплоидный отцовский геном; (3) центросому, которая отвечает за поддержание системы микротрубочек. См. анатомию сперматозоида
Аномалии
Нерасхождение — нарушение правильного разделения гомологов в мейозе I или разделения сестринских хроматид в мейозе II может привести к анеуплоидии , при которой ооцит имеет неправильное число хромосом, например 22,X или 24,X. Это является причиной таких состояний, как синдром Дауна и синдром Эдвардса у людей. Это более вероятно при преклонном возрасте матери .
Некоторые ооциты имеют несколько ядер , хотя считается, что они никогда не созревают.
^ "Зародышевый пузырек". Статьи по биологии, учебные пособия и словарь онлайн . 2019-10-07 . Получено 2022-04-09 .
^ Grier HJ, Uribe MC, Parenti LR (апрель 2007 г.). «Зародышевый эпителий, фолликулогенез и постовуляторные фолликулы в яичниках радужной форели, Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792) (Teleostei, protacanthopterygii, salmoniformes)». Журнал морфологии . 268 (4): 293–310. doi :10.1002/jmor.10518. PMID 17309079. S2CID 23482731.
^ Yokoo M, Sato E (2004). «Взаимодействие комплекса кумулюс-ооцит во время созревания ооцита». International Review of Cytology . 235 : 251–91. doi :10.1016/S0074-7696(04)35006-0. ISBN978-0-12-364639-2. PMID 15219785.
^ Tanghe S, Van Soom A, Nauwynck H, Coryn M, de Kruif A (март 2002 г.). «Мини-обзор: функции яйценосного бугорка во время созревания ооцитов, овуляции и оплодотворения». Molecular Reproduction and Development . 61 (3): 414–24. doi :10.1002/mrd.10102. PMID 11835587. S2CID 5728551.
^ Хуан З., Уэллс Д. (октябрь 2010 г.). «Взаимосвязь человеческих ооцитов и кумулюсных клеток: новые идеи из транскриптома кумулюсных клеток». Молекулярная репродукция человека . 16 (10): 715–25. doi : 10.1093/molehr/gaq031 . PMID 20435609.
^ Бернстайн С (1993). «Секс как ответ на окислительное повреждение ДНК. Глава 10». В Halliwell B, Aruoma OI (ред.). ДНК и свободные радикалы . Великобритания: Ellis Horwood Limited. стр. 204–205. ISBN978-0-13-222035-4.
^ Бернстайн С (1998). «Секс как ответ на окислительное повреждение ДНК. Глава 4». В Aruoma OI, Halliwell B (ред.). ДНК и свободные радикалы: методы, механизмы и применение . Сент-Люсия и Лондон: OICA International. стр. 112–113. ISBN976-8056169.
^ abcd Mtango NR, Potireddy S, Latham KE (2008). «Качество ооцитов и материнский контроль развития». International Review of Cell and Molecular Biology . 268 : 223–90. doi :10.1016/S1937-6448(08)00807-1. PMID 18703408.
^ Zhang J, King ML (декабрь 1996 г.). «Xenopus VegT РНК локализуется в вегетативной коре во время оогенеза и кодирует новый фактор транскрипции T-box, участвующий в мезодермальном паттернировании». Development . 122 (12): 4119–29. doi :10.1242/dev.122.12.4119. PMID 9012531. S2CID 28462527.
^ Zhao H, Cao Y, Grunz H (май 2003 г.). «Xenopus X-box binding protein 1, a leucine zipper transcription factor, are in in the BMP signaling path». Developmental Biology . 257 (2): 278–91. doi : 10.1016/s0012-1606(03)00069-1 . PMID 12729558.
^ Sundaram N, Tao Q, Wylie C, Heasman J (сентябрь 2003 г.). «Роль материнского CREB в раннем эмбриогенезе Xenopus laevis». Developmental Biology . 261 (2): 337–52. doi : 10.1016/s0012-1606(03)00303-8 . PMID 14499645.
^ Кофрон М., Пак Х., Стэндли Х., Уайли К., Олд Р., Уитман М., Хеасман Дж. (октябрь 2004 г.). «Новые роли FoxH1 в формировании паттерна раннего эмбриона». Development . 131 (20): 5065–78. doi : 10.1242/dev.01396 . PMID 15459100.
^ Takebayashi-Suzuki K, Funami J, Tokumori D, Saito A, Watabe T, Miyazono K и др. (сентябрь 2003 г.). «Взаимодействие между опухолевым супрессором p53 и сигнальной системой TGF beta формирует оси эмбрионального тела у Xenopus». Development . 130 (17): 3929–39. doi : 10.1242/dev.00615 . PMID 12874116.
^ abc Heasman J (февраль 2006 г.). «Материнские детерминанты судьбы эмбриональных клеток». Семинары по клеточной и эволюционной биологии . 17 (1): 93–8. doi :10.1016/j.semcdb.2005.11.005. PMID 16426874.
^ Song J, Slack JM (декабрь 1994 г.). «Пространственная и временная экспрессия мРНК и белка основного фактора роста фибробластов (FGF-2) в раннем развитии Xenopus». Механизмы развития . 48 (3): 141–51. doi :10.1016/0925-4773(94)90055-8. PMID 7893598. S2CID 20281053.
^ Дюпон С., Заккинья Л., Корденонси М., Солиго С., Адорно М., Ругге М., Пикколо С. (апрель 2005 г.). «Спецификация зародышевого слоя и контроль роста клеток с помощью эктодермина, убиквитинлигазы Smad4». Клетка . 121 (1): 87–99. дои : 10.1016/j.cell.2005.01.033 . hdl : 11577/2439217 . PMID 15820681. S2CID 16628152.
^ Birsoy B, Berg L, Williams PH, Smith JC, Wylie CC, Christian JL, Heasman J (февраль 2005 г.). "XPACE4 — это локализованная пропротеиновая конвертаза, необходимая для индукции мезодермы и расщепления специфических белков TGFbeta при развитии Xenopus". Development . 132 (3): 591–602. doi : 10.1242/dev.01599 . PMID 15634697.
^ Bell E, Muñoz-Sanjuán I, Altmann CR, Vonica A, Brivanlou AH (апрель 2003 г.). «Спецификация судьбы клетки и компетентность Coco, материнского ингибитора BMP, TGFbeta и Wnt». Development . 130 (7): 1381–9. doi : 10.1242/dev.00344 . PMID 12588853.
^ Chan AP, Kloc M, Larabell CA, LeGros M, Etkin LD (май 2007). «Локализованная на материнской основе РНК fatvg необходима для кортикального вращения и формирования зародышевых клеток». Механизмы развития . 124 (5): 350–63. doi :10.1016/j.mod.2007.02.001. PMC 2435194. PMID 17376659 .
^ ab Ogushi S, Palmieri C, Fulka H, Saitou M, Miyano T, Fulka J (февраль 2008 г.). «Материнское ядрышко необходимо для раннего эмбрионального развития млекопитающих». Science . 319 (5863): 613–6. doi :10.1126/science.1151276. PMID 18239124. S2CID 7799743.
^ Yurttas P, Vitale AM, Fitzhenry RJ, Cohen-Gould L, Wu W, Gossen JA, Coonrod SA (август 2008 г.). «Роль PADI6 и цитоплазматических решеток в рибосомальном хранении в ооцитах и трансляционном контроле у ранних эмбрионов мыши». Development . 135 (15): 2627–36. doi :10.1242/dev.016329. PMC 2708103 . PMID 18599511.
^ abc Mira A (сентябрь 1998). «Почему мейоз арестован?». Журнал теоретической биологии . 194 (2): 275–87. Bibcode : 1998JThBi.194..275M. doi : 10.1006/jtbi.1998.0761. PMID 9778439.
^ abc Stringer JM, Winship A, Zerafa N, Wakefield M, Hutt K (май 2020 г.). «Ооциты могут эффективно восстанавливать двухцепочечные разрывы ДНК для восстановления генетической целостности и защиты здоровья потомства». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 117 (21): 11513–11522. Bibcode : 2020PNAS..11711513S. doi : 10.1073/pnas.2001124117 . PMC 7260990. PMID 32381741 .
^ Хэ, Да-Цзянь; Ван, Линь; Чжан, Чжи-Би; Го, Кунь; Ли, Цзин-Чжэн; Хэ, Се-Чао; Цуй, Цин-Хуа; Чжэн, Пин (2018-11-18). «Материнский ген Ooep может участвовать в гомологичной рекомбинации-опосредованной репарации двухцепочечных разрывов ДНК в ооцитах мышей». Zoological Research . 39 (6): 387–395. doi :10.24272/j.issn.2095-8137.2018.067. PMC 6085769 . PMID 29955025.
^ Leem J, Lee C, Choi DY, Oh JS. Отличительные характеристики реакции на повреждение ДНК в ооцитах млекопитающих. Exp Mol Med. 2024 14 февраля. doi :10.1038/s12276-024-01178-2. Электронная публикация перед печатью. PMID 38355825
^ Sutovsky P, Schatten G (2000). «Отцовский вклад в зиготу млекопитающих: оплодотворение после слияния сперматозоида и яйцеклетки». International Review of Cytology . 195 : 1–65. doi :10.1016/s0074-7696(08)62703-5. ISBN978-0-12-364599-9. PMID 10603574.
Источники
Purves WK, Orians GH, Sadava D, Heller HC (2004). Жизнь: Наука биологии (7-е изд.). Freeman, WH & Company. стр. 823–824. ISBN 978-0-7167-9856-9.
Внешние ссылки
Микрофотография первичного ооцита и фолликула обезьяны.