stringtranslate.com

Изотермическая амплификация, опосредованная петлей

Процесс петлевой изотермической амплификации (LAMP) [1]

Петлевая изотермическая амплификация ( LAMP ) — это однопробирочная технология амплификации ДНК [2] для диагностических целей и недорогая альтернатива для выявления некоторых заболеваний. [3] LAMP — это изотермическая технология амплификации нуклеиновых кислот . В отличие от технологии полимеразной цепной реакции (ПЦР), в которой реакция проводится с помощью серии чередующихся температурных шагов или циклов, изотермическая амплификация проводится при постоянной температуре и не требует термоциклера . LAMP была изобретена в 1998 году компанией Eiken Chemical Company в Токио. [1] Обратная транскрипционная петлевая изотермическая амплификация (RT-LAMP) объединяет LAMP с этапом обратной транскрипции, что позволяет обнаруживать РНК.

Усиление

Праймеры для петлевой изотермической амплификации (LAMP) [1]
Продукт петлевой изотермической амплификации (LAMP) [1]

В LAMP целевая последовательность амплифицируется при постоянной температуре 60–65 °C (140–149 °F) с использованием двух или трех наборов праймеров и полимеразы, такой как фрагмент Кленова Bst с высокой активностью смещения цепи в дополнение к активности репликации. Обычно для амплификации 6 отдельных областей целевого гена используются 4 различных праймера, что увеличивает специфичность. Дополнительная пара «петлевых праймеров» может еще больше ускорить реакцию. [4] Количество ДНК, продуцируемое в LAMP, значительно выше, чем при амплификации на основе ПЦР . [1] Разработка праймеров может быть выполнена с использованием нескольких программ, таких как PrimerExplorer, MorphoCatcher, [5] и NEB LAMP Primer Design Tool. Для скрининга консервативных и видоспецифичных нуклеотидных полиморфизмов в большинстве диагностических приложений очень полезно сочетание PrimerExplorer и MorphoCatcher, поскольку оно позволяет локализовать видоспецифичные нуклеотиды на 3'-концах праймеров для повышения специфичности реакций.

Схема LAMP биомаркеров нуклеиновых кислот из образцов сырых неочищенных сточных вод для быстрого количественного определения специфической для человека митохондриальной ДНК (мтДНК). [6]

Обнаружение

Продукт амплификации может быть обнаружен с помощью фотометрии , измеряющей мутность, вызванную осаждением пирофосфата магния в растворе как побочного продукта амплификации. [7] Это позволяет легко визуализировать невооруженным глазом или с помощью простых фотометрических подходов обнаружения для малых объемов. Реакцию можно отслеживать в реальном времени либо путем измерения мутности [8], либо с помощью флуоресценции с использованием интеркалирующих красителей, таких как SYTO 9. [9]

Красители, такие как SYBR зеленый , могут использоваться для создания видимого изменения цвета, которое можно увидеть невооруженным глазом без необходимости в дорогостоящем оборудовании, или для ответа, который можно точнее измерить с помощью приборов. Молекулы красителя интеркалируют или напрямую маркируют ДНК и, в свою очередь, могут быть соотнесены с числом изначально присутствующих копий. Следовательно, LAMP также может быть количественным. Внутрипробирочное обнаружение амплификации ДНК LAMP возможно с использованием марганцевого кальцеина , который начинает флуоресцировать при комплексообразовании марганца с пирофосфатом во время синтеза ДНК in vitro. [10] Другой метод визуального обнаружения ампликонов LAMP невооруженным глазом был основан на их способности гибридизоваться с комплементарной одноцепочечной ДНК (ssDNA), связанной с золотыми наночастицами (AuNP), и таким образом предотвращать нормальное изменение цвета с красного на пурпурно-синий, которое в противном случае произошло бы во время агрегации золотых частиц под действием соли. Таким образом, метод LAMP в сочетании с обнаружением ампликона с помощью AuNP может иметь преимущества перед другими методами с точки зрения сокращения времени анализа, подтверждения ампликона путем гибридизации и использования более простого оборудования (т. е. нет необходимости в термоциклере, оборудовании для электрофореза или УФ-трансиллюминаторе). [11] [12]

Колориметрические обнаружения [13]

pH-зависимые красящие индикаторы, такие как феноловый красный, вызывают изменение цвета с розового на желтый, когда значение pH реакции уменьшается при амплификации ДНК. [13] Из-за выраженного изменения цвета это наиболее часто используемый способ считывания для анализов RT-LAMP. [13] Однако для считывания, зависящего от изменения pH, требуется слабобуферный реакционный раствор, что представляет собой большую проблему при использовании сырых образцов с переменным pH. [13] Во втором колориметрическом анализе используются индикаторы ионов металлов, такие как гидроксинафтоловый синий (HNB), который меняет цвет с фиолетового на синий при снижении свободных ионов Mg2 + , которые образуют осадок пирофосфата Mg- при амплификации ДНК. [13]

Использование и преимущества

LAMP — это относительно новый метод амплификации ДНК, который благодаря своей простоте, надежности и низкой стоимости может дать значительные преимущества. LAMP может использоваться врачами в качестве простого скринингового анализа в полевых условиях или на месте оказания медицинской помощи. [14] Поскольку LAMP является изотермическим, что исключает необходимость в дорогостоящих термоциклерах, используемых в обычной ПЦР, он может быть особенно полезным методом диагностики инфекционных заболеваний в странах с низким и средним уровнем дохода. [15] LAMP широко изучается для выявления инфекционных заболеваний, таких как филяриатоз, [16] вирус Зика, [17] туберкулез, [18] малярия, [19] [20] [21] сонная болезнь, [22] и SARS-CoV-2 . [23] [24] В развивающихся регионах он еще не прошел всестороннюю проверку для других распространенных патогенов. [14]

Было отмечено, что LAMP менее чувствителен (более устойчив), чем ПЦР, к ингибиторам в сложных образцах, таких как кровь, вероятно, из-за использования другой ДНК-полимеразы (обычно Bst – Bacillus stearothermophilus – ДНК-полимераза, а не Taq -полимераза, как в ПЦР). Несколько отчетов описывают успешное обнаружение патогенов из минимально обработанных образцов, таких как термически обработанная кровь, [25] [26] или в присутствии матриц клинических образцов. [27] Эта функция LAMP может быть полезна в условиях ограниченных ресурсов или в полевых условиях, где обычное извлечение ДНК или РНК перед диагностическим тестированием может быть непрактичным.

LAMP также использовался для помощи в идентификации жидкостей организма. Благодаря своей простоте исследователи могут тестировать один или несколько образцов с небольшими затратами времени, что помогает сократить время, необходимое для получения результатов. Исследователи также смогли добавить факторы, чтобы сделать идентификацию еще более простой, включая краситель-индикатор металла и феноловый красный, чтобы иметь возможность использовать смартфон и невооруженный глаз соответственно для анализа результатов. [28] [29] [30]

Ограничения

LAMP менее универсален, чем ПЦР, наиболее устоявшийся метод амплификации нуклеиновых кислот. LAMP полезен в первую очередь как метод диагностики или обнаружения, но бесполезен для клонирования или многих других приложений молекулярной биологии, доступных с помощью ПЦР. Поскольку LAMP использует 4 (или 6) праймеров, нацеленных на 6 (или 8) регионов в довольно небольшом сегменте генома, и поскольку дизайн праймера подвержен многочисленным ограничениям, сложно разрабатывать наборы праймеров для LAMP «на глаз». Бесплатные, с открытым исходным кодом [31] или коммерческие программные пакеты обычно используются для помощи в разработке праймера LAMP, хотя ограничения дизайна праймера означают, что свободы выбора целевого сайта меньше, чем при ПЦР.

В диагностическом приложении это должно быть сбалансировано с необходимостью выбора подходящей цели (например, консервативного сайта в высоковариабельном вирусном геноме или цели, которая специфична для конкретного штамма патогена). Для покрытия различных вариантных штаммов одного и того же вида может потребоваться несколько вырожденных последовательностей. Следствием наличия такого коктейля праймеров может быть неспецифическая амплификация в поздней амплификации. [ необходима цитата ]

Мультиплексные подходы для LAMP менее развиты, чем для ПЦР. Большее количество праймеров на цель в LAMP увеличивает вероятность взаимодействия праймер-праймер для мультиплексных наборов целей. Продукт LAMP представляет собой ряд конкатемеров целевой области, что приводит к образованию характерного рисунка «лестницы» или полос на геле, а не одной полосы, как в ПЦР. Хотя это не является проблемой при обнаружении отдельных целей с помощью LAMP, «традиционные» (конечные) приложения мультиплексной ПЦР, в которых идентичность цели подтверждается размером полосы на геле, невозможны с LAMP. Мультиплексирование в LAMP было достигнуто путем выбора целевой области с сайтом рестрикции и переваривания перед запуском в геле, так что каждый продукт приводит к образованию фрагмента определенного размера, [32], хотя этот подход усложняет экспериментальный дизайн и протокол.

Использование ДНК-полимеразы, вытесняющей нить, в LAMP также исключает использование зондов гидролиза, например, зондов TaqMan , которые полагаются на 5'-3' экзонуклеазную активность полимеразы Taq . Сообщалось об альтернативном подходе мультиплексирования в реальном времени, основанном на гасителях флуоресценции. [33]

Зеленый краситель SYBR можно добавить для просмотра LAMP в реальном времени. Однако в поздней амплификации амплификация праймер-димера может способствовать ложному положительному сигналу. Использование неорганической пирофосфатазы в реакционной смеси SYBR позволяет использовать анализ расплава для различения правильной амплификации [34]

Хотя были предложены различные стратегии смягчения ложноположительных результатов в анализах, основанных на этом методе, неспецифическая амплификация из-за различных факторов, включая отсутствие механизмов температурного гейтирования, является одним из основных ограничений петлевой изотермической амплификации. [35] [36]

Наконец, поскольку LAMP требует поддержания высоких температур инкубации (60–65 °C), требуется какой-то нагревательный механизм, термостат и/или изолятор (хотя не обязательно термоциклер). Это требование делает LAMP менее подходящим для диагностики в полевых условиях, в месте оказания помощи, которая в идеале функционировала бы при температуре окружающей среды. [ необходима цитата ]

Исследовать

Амплификация с помощью гибридизации РНКазы (RHAM) объединяет LAMP с флуоресцентной отчетностью, опосредованной РНКазой HII . Этот метод использует обычный праймер LAMP, установленный для экспоненциальной амплификации целевой последовательности, с последующей гибридизацией флуоресцентного зонда, содержащего рибонуклеотид, с продуктом амплификации. Затем РНКаза HII расщепляет зонд, высвобождая флуоресцентный сигнал, который можно обнаружить. [37] [38]

Ссылки

  1. ^ abcde M. Soroka, B. Wasowicz, A. Rymaszewska: Петлевая изотермическая амплификация (LAMP): лучший брат ПЦР? В: Cells. Том 10, выпуск 8, июль 2021 г., стр. , doi : 10.3390/cells10081931, PMID 34440699, PMC  8393631.
  2. ^ Патент США 6410278, Notomi T, Hase T, "Процесс синтеза нуклеиновой кислоты", опубликован 2002-06-25, передан Eiken Kagaku Kabushiki Kaisha 
  3. ^ Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, Yonekawa T, Watanabe K, Amino N, Hase T (2000). «Изотермическая амплификация ДНК, опосредованная петлей». Nucleic Acids Res . 28 (12): 63e–63. doi :10.1093/nar/28.12.e63. PMC 102748. PMID 10871386  . 
  4. ^ Nagamine K, Hase T, Notomi T (2002). «Ускоренная реакция с помощью петлевой изотермической амплификации с использованием петлевых праймеров». Mol. Cell. Probes . 16 (3): 223–9. doi :10.1006/mcpr.2002.0415. PMID  12144774.
  5. ^ Ширшиков, Федор В.; Пеков, Юрий А.; Мирошников, Константин А. (2019-04-26). "MorphoCatcher: веб-инструмент на основе множественного выравнивания для выбора мишеней и проектирования таксон-специфичных праймеров в методе петлевой изотермической амплификации". PeerJ . 7 : e6801. doi : 10.7717/peerj.6801 . ISSN  2167-8359. PMC 6487805 . PMID  31086739. 
  6. ^ Ян, Чжугэнь; Сюй, Гаолиан; Ребоуд, Жюльен; Каспржик-Хордерн, Барбара; Купер, Джонатан М. (19 сентября 2017 г.). «Мониторинг генетических популяционных биомаркеров для эпидемиологии на основе сточных вод». Аналитическая химия . 89 (18): 9941–9945. doi : 10.1021/acs.analchem.7b02257 . PMID  28814081.
  7. ^ Mori Y, Nagamine K, Tomita N, Notomi T (2001). «Обнаружение петлевой изотермической реакции амплификации по мутности, полученной из образования пирофосфата магния». Biochem. Biophys. Res. Commun . 289 (1): 150–4. doi :10.1006/bbrc.2001.5921. PMID  11708792.
  8. ^ Mori Y, Kitao M, Tomita N, Notomi T (2004). «Турбидиметрия в реальном времени реакции LAMP для количественной оценки шаблонной ДНК». J. Biochem. Biophys. Methods . 59 (2): 145–57. doi :10.1016/j.jbbm.2003.12.005. PMID  15163526.
  9. ^ Njiru ZK, Mikosza AS, Armstrong T, Enyaru JC, Ndung'u JM, Thompson AR (2008). "Метод изотермической амплификации с петлей (LAMP) для быстрого обнаружения Trypanosoma brucei rhodesiense". PLOS Negl Trop Dis . 2 (1): e147. doi : 10.1371/journal.pntd.0000147 . PMC 2238707. PMID  18253475 . 
  10. ^ Томита Н., Мори Й., Канда Х., Нотоми Т. (2008). «Изотермическая амплификация последовательностей генов, опосредованная петлей (LAMP), и простое визуальное обнаружение продуктов». Nat Protoc . 3 (5): 877–82. doi :10.1038/nprot.2008.57. PMID  18451795. S2CID  19416838.
  11. ^ Arunrut, Narong; Jitrakorn, Sarocha; Saksmerprome, Vanvimon; Kiatpathomchai, Wansika (август 2019 г.). «Изотермическая амплификация с двойной петлей (D-LAMP) с использованием колориметрического золотого наночастичного зонда для быстрого обнаружения инфекционного денсовируса Penaeus stylirostris (PstDNV) с уменьшенным количеством ложноположительных результатов от эндогенных вирусных элементов». Aquaculture . 510 : 131–137. Bibcode :2019Aquac.510..131A. doi :10.1016/j.aquaculture.2019.05.049. S2CID  229449403.
  12. ^ Arunrut, Narong; Tondee, Benyatip; Khumwan, Pakapreud; Kampeera, Jantana; Kiatpathomchai, Wansika (февраль 2021 г.). «Быстрое и чувствительное колориметрическое обнаружение микроспоридий Enterocytozoon hepatopenaei (EHP) на основе гена белка стенки споры (SWP) с использованием петлевой изотермической амплификации в сочетании с функционализированными ДНК золотыми наночастицами в качестве зондов». Aquaculture . 533 : 736206. Bibcode :2021Aquac.53336206A. doi :10.1016/j.aquaculture.2020.736206. S2CID  229449403.
  13. ^ abcde Келлнер, Макс Дж.; Росс, Джеймс Дж.; Шнабл, Якоб; Декенс, Маркус П.С.; Матл, Мартин; и др. (2022). «Быстрый, высокочувствительный и открытый для доступа анализ на SARS-CoV-2 для лабораторного и домашнего тестирования». Frontiers in Molecular Biosciences . 9 : 801309. doi : 10.3389 /fmolb.2022.801309 . hdl : 10261/269628 . ISSN  2296-889X. PMC 9011764. PMID  35433827.  В данной статье использован текст из этого источника, доступный по лицензии CC BY 4.0.
  14. ^ ab Sen K, Ashbolt NJ (2011). Микробиология окружающей среды: современные технологии и применение воды . Норфолк, Великобритания: Caister Academic Press . ISBN 978-1-904455-70-7.[ нужна страница ]
  15. ^ Macarthur G (2009). Глобальная диагностика здоровья: исследования, разработки и регулирование. Отчет о семинаре Академии медицинских наук (PDF) . Академия медицинских наук (Великобритания). ISBN 978-1-903401-20-0. Архивировано из оригинала (PDF) 2018-05-16 . Получено 2014-05-05 .
  16. ^ Пул, Кэтрин Б.; Ли, Жиру; Альхассан, Энди; Гелиг, Дилан; Дайсбург, Стивен; Таннер, Натан А.; Чжан, Иньхуа; Эванс, Томас К.; Лабарр, Пол; Ваньцзи, Сэмюэл; Бертон, Роберт А. (2017). «Колориметрические тесты для диагностики филяриозной инфекции и наблюдения за векторами с использованием неинструментальной изотермической амплификации с петлей нуклеиновой кислоты (NINA-LAMP)». PLOS ONE . 12 (2): e0169011. Bibcode : 2017PLoSO..1269011P. doi : 10.1371/journal.pone.0169011 . ISSN  1932-6203. PMC 5310896. PMID 28199317  . 
  17. ^ Calvert, Amanda E.; Biggerstaff, Brad J.; Tanner, Nathan A.; Lauterbach, Molly; Lanciotti, Robert S. (2017). "Быстрое колориметрическое обнаружение вируса Зика в образцах сыворотки и мочи с помощью изотермической амплификации с обратной транскрипцией (RT-LAMP)". PLOS ONE . 12 (9): e0185340. Bibcode : 2017PLoSO..1285340C. doi : 10.1371/journal.pone.0185340 . ISSN  1932-6203. PMC 5612724. PMID 28945787  . 
  18. ^ Geojith G, Dhanasekaran S, Chandran SP, Kenneth J (2011). "Эффективность анализа петлевой изотермической амплификации (LAMP) для лабораторной идентификации изолятов Mycobacterium tuberculosis в условиях ограниченных ресурсов". J. Microbiol. Methods . 84 (1): 71–3. doi :10.1016/j.mimet.2010.10.015. PMID  21047534.
  19. ^ Poon LL, Wong BW, Ma EH, Chan KH, Chow LM, Abeyewickreme W, Tangpukdee N, Yuen KY, Guan Y, Looareesuwan S, Peiris JS (2006). «Чувствительный и недорогой молекулярный тест на тропическую малярию: обнаружение ДНК Plasmodium falciparum непосредственно из обработанной нагреванием крови с помощью петлевой изотермической амплификации». Clin. Chem . 52 (2): 303–6. doi : 10.1373/clinchem.2005.057901 . PMID  16339303.
  20. ^ Понака, Редди В. и др. | ASTMH 2015 | Молекулярное обнаружение плазмодия с помощью петлевой изотермической амплификации (LAMP) и сравнение чувствительности с анализом ПЭТ-ПЦР | http://www.ilmar.org.il/diasorin/MBI_MalariaPoster2015-ASTMH_JT_rev3.pdf Архивировано 20.11.2016 в Wayback Machine
  21. ^ Понака, Редди В. и др. | AMP 2015 | http://www.ilmar.org.il/diasorin/MBI_AMP2015_MalariaPoster102715.pdf Архивировано 20 ноября 2016 г. на Wayback Machine
  22. ^ Нджиру З.К., Микоша А.С., Матову Э, Эньяру Дж.К., Оума Д.О., Кибона С.Н., Томпсон Р.К., Ндунгу Дж.М. (2008). «Африканский трипаносомоз: чувствительное и быстрое обнаружение подрода Trypanozoon с помощью петлевой изотермической амплификации (LAMP) ДНК паразита». Межд. Дж. Паразитол . 38 (5): 589–99. doi :10.1016/j.ijpara.2007.09.006. ПМК 7094514 . ПМИД  17991469. 
  23. ^ Уокер, Питер (21 мая 2020 г.). «В Великобритании тест на коронавирус с 20-минутным ожиданием проходит испытания». The Guardian .
  24. ^ Пак, Гун-Су; Ку, Кынбон; Бэк, Сын-Хва; Ким, Сон-Джун; Ким, Сын Иль; Ким, Бом-Тэ; Мэн, Джин-Су (2020). «Разработка изотермических амплификационных анализов с обратной транскрипционной петлей для выявления тяжелого острого респираторного синдрома коронавируса 2 (SARS-CoV-2)». Журнал молекулярной диагностики . 22 (6): 729–735. doi : 10.1016/j.jmoldx.2020.03.006. PMC 7144851. PMID  32276051 . 
  25. ^ Curtis KA, Rudolph DL, Owen SM (2008). "Быстрое обнаружение ВИЧ-1 с помощью обратной транскрипции, петлевой изотермической амплификации (RT-LAMP)". J. Virol. Methods . 151 (2): 264–70. doi :10.1016/j.jviromet.2008.04.011. PMID  18524393.
  26. ^ Sattabongkot J, Tsuboi T, Han ET, Bantuchai S, Buates S (2014). «Петлевой изотермический амплификационный анализ для быстрой диагностики инфекций малярии в эндемичных районах Таиланда». J. Clin. Microbiol . 52 (5): 1471–7. doi :10.1128/JCM.03313-13. PMC 3993686. PMID  24574279 . 
  27. ^ Francois P, Tangomo M, Hibbs J, Bonetti EJ, Boehme CC , Notomi T, Perkins MD, Schrenzel J (2011). «Надежность реакции изотермической амплификации с петлевой опосредованностью для диагностических приложений». FEMS Immunol. Med. Microbiol . 62 (1): 41–8. doi : 10.1111/j.1574-695X.2011.00785.x . PMID  21276085.
  28. ^ Джексон, Кимберли Р.; Лейн, Тиффани; Дент, Дэвид А.; Цуэй, Анчи; Ли, Джингий; Хаверстик, Дорис М.; Ландерс, Джеймс П. (март 2020 г.). «Новый метод изотермической амплификации с петлевой опосредованностью для идентификации четырех жидкостей организма с помощью смартфона». Forensic Science International: Genetics . 45 : 102195. doi : 10.1016/j.fsigen.2019.102195 . ISSN  1872-4973. PMID  31835180. S2CID  209356926.
  29. ^ Лейн, Тиффани; Джексон, Кимберли; Скотт, Анчи; Таннер, Натан А.; Пиланд, Энни; Хаверстик, Дорис М.; Ландерс, Джеймс П. (2021). «Оптимизация новой петлевой изотермической амплификации с колориметрическим анализом изображений для судебно-медицинской идентификации жидкостей организма». Журнал судебной медицины . 66 (3): 1033–1041. doi : 10.1111/1556-4029.14682. ISSN  1556-4029. PMID  33559876. S2CID  231869975.
  30. ^ Китамура, Масаси; Кубо, Сейджи; Танака, Джин; Адачи, Тацуси (2018-07-01). «Метод быстрого скрининга мужской ДНК с использованием петлевого изотермического амплификатора». Международный журнал юридической медицины . 132 (4): 975–981. doi :10.1007/s00414-017-1661-z. ISSN  1437-1596. PMID  28803416. S2CID  4035223.
  31. ^ Torres C, Vitalis EA, Baker BR, Gardner SN, Torres MW, Dzenitis JM (2011). "LAVA: подход с открытым исходным кодом к проектированию LAMP (петлевая изотермическая амплификация) ДНК-сигнатур". BMC Bioinformatics . 12 : 240. doi : 10.1186/1471-2105-12-240 . PMC 3213686. PMID  21679460 . 
  32. ^ Исеки, Хироши; Альхассан, Энди; Охта, Наоми; Текисо, Ориэль ММ; Ёкояма, Наоаки; Иноуэ, Нобору; Намбота, Эндрю; Ясуда, Джун; Игараси, Икуо (декабрь 2007 г.). «Разработка метода мультиплексной петлевой изотермической амплификации (mLAMP) для одновременного обнаружения паразитов бабезий крупного рогатого скота». Журнал микробиологических методов . 71 (3): 281–7. дои : 10.1016/j.mimet.2007.09.019. ПМИД  18029039.
  33. ^ Tanner NA, Zhang Y, Evans TC (август 2012 г.). «Одновременное обнаружение множественных целей в изотермической амплификации с петлей в реальном времени». BioTechniques . 53 (2): 81–9. doi : 10.2144/0000113902 . PMID  23030060.
  34. ^ Tone K, Fujisaki R, Yamazaki T, Makimura K (январь 2017 г.). «Улучшение анализа кривой плавления для различения продуктов изотермической амплификации с петлевой опосредованностью из четырех патогенных плесеней: использование неорганической пирофосфатазы и ее влияние на снижение дисперсии значений температуры плавления». J Microbial Methods . 132 : 41–45. doi :10.1016/j.mimet.2016.10.020. PMID  27984058.
  35. ^ Хабибзаде, Пархам; Мофаттех, Мохаммад; Силави, Мохаммад; Фагихи, Мохаммад Али; Гавами, Саид (2021). «Молекулярные диагностические анализы на COVID-19: обзор». Критические обзоры в клинических лабораторных науках . 58 (6): 385–398. doi : 10.1080/10408363.2021.1884640 . PMC 7898297. PMID  33595397 . 
  36. ^ H Moehling, Taylor J; Choi, Gihoon; Dugan, Lawrence; Salit, Marc; Meagher, Robert (2021). «Диагностика LAMP в местах оказания медицинской помощи: новые тенденции и перспективы для сообщества разработчиков». Экспертный обзор молекулярной диагностики . 21 (1): 43–61. doi : 10.1080/14737159.2021.1873769 . PMID  33474990.
  37. ^ Xiao Z, Liu X, Kang X, Feng Y, Zheng L, Chen C (декабрь 2023 г.). «Быстрое и точное обнаружение SARS-CoV-2 с использованием технологии RHAM». Scientific Reports . 13 (1): 22798. Bibcode :2023NatSR..1322798X. doi :10.1038/s41598-023-49733-7. PMC 10739982 . PMID  38129524. 
  38. ^ Charfi R, Guyonnet C, Untrau M, Giacometti G, Paper T, Poyart C, Plainvert C, Tazi A (апрель 2024 г.). «Характеристики двух быстрых методов на основе LAMP для интрапартального обнаружения вагинальной колонизации стрептококками группы B». Annals of Clinical Microbiology and Antimicrobials . 23 (1): 37. doi : 10.1186/s12941-024-00695-2 . PMC 11046945. PMID  38664821 .