Повреждение ДНК свободными радикалами может произойти в результате воздействия ионизирующего излучения или радиомиметических [1] соединений. Повреждение ДНК в результате атаки свободных радикалов называется косвенным повреждением ДНК , поскольку образующиеся радикалы могут распространяться по всему телу и поражать другие органы. Злокачественная меланома может быть вызвана косвенным повреждением ДНК, поскольку она находится в частях тела, не подвергающихся воздействию солнечного света. ДНК уязвима для атаки радикалов из-за очень лабильных водородов , которые могут быть отщеплены, и преобладания двойных связей в основаниях ДНК , к которым свободные радикалы могут легко присоединяться . [2]
Радиолиз внутриклеточной воды ионизирующим излучением создает перекиси , которые являются относительно стабильными предшественниками гидроксильных радикалов . 60%–70% повреждений клеточной ДНК вызваны гидроксильными радикалами, [3] однако гидроксильные радикалы настолько реактивны, что они могут диффундировать только на один или два молекулярных диаметра, прежде чем вступить в реакцию с клеточными компонентами. Таким образом, гидроксильные радикалы должны образовываться непосредственно рядом с нуклеиновыми кислотами , чтобы вступить в реакцию. Радиолиз воды создает перекиси, которые могут действовать как диффундирующие, скрытые формы гидроксильных радикалов. Некоторые ионы металлов вблизи ДНК генерируют гидроксильные радикалы из перекиси. [4]
Считается, что повреждение ДНК свободными радикалами вызывает мутации, которые могут привести к некоторым видам рака.
Реакция Фентона приводит к образованию гидроксильных радикалов из перекиси водорода и катализатора железа (II). Железо (III) регенерируется посредством реакции Габера-Вейсса . Переходные металлы со свободным координационным центром способны восстанавливать пероксиды до гидроксильных радикалов. [1] Считается, что железо является металлом, ответственным за создание гидроксильных радикалов, поскольку оно существует в самой высокой концентрации среди всех переходных металлов в большинстве живых организмов. [5] Реакция Фентона возможна, поскольку переходные металлы могут существовать в более чем одной степени окисления, а их валентные электроны могут быть неспаренными, что позволяет им участвовать в одноэлектронных окислительно-восстановительных реакциях.
Создание гидроксильных радикалов катализом железа (II) важно, поскольку железо (II) может быть обнаружено в координации с ДНК и, следовательно, в непосредственной близости от нее. Эта реакция позволяет перекиси водорода, созданной радиолизом воды, диффундировать к ядру и реагировать с железом (II) с образованием гидроксильных радикалов, которые, в свою очередь, реагируют с ДНК. Расположение и связывание железа (II) с ДНК могут играть важную роль в определении субстрата и природы радикальной атаки на ДНК. Реакция Фентона генерирует два типа окислителей, тип I и тип II. Окислители типа I умеренно чувствительны к перекисям и этанолу. [5] Окислители типа I и типа II преимущественно расщепляют определенные последовательности. [5]
Гидроксильные радикалы могут атаковать дезоксирибозный остов ДНК и основания, потенциально вызывая множество повреждений , которые могут быть цитотоксическими или мутагенными . Клетки разработали сложные и эффективные механизмы восстановления для исправления повреждений. В случае атаки свободных радикалов на ДНК, репарация с удалением оснований является используемым механизмом восстановления. Реакции гидроксильных радикалов с дезоксирибозным сахарным остовом инициируются отщеплением водорода от углерода дезоксирибозы, и преобладающим последствием является возможный разрыв цепи и высвобождение основания. Гидроксильный радикал реагирует с различными атомами водорода дезоксирибозы в порядке 5′ H > 4′ H > 3′ H ≈ 2′ H ≈ 1′ H. Этот порядок реакционной способности параллелен воздействию растворителя на водороды дезоксирибозы. [6]
Гидроксильные радикалы реагируют с основаниями ДНК посредством присоединения к богатым электронами пи-связям. Эти пи-связи в основаниях расположены между C5-C6 пиримидинов и N7-C8 пуринов . [7] При присоединении гидроксильного радикала может быть образовано много стабильных продуктов. В целом, радикальные гидроксильные атаки на фрагменты оснований не вызывают изменения сахаров или разрывов цепей, за исключением случаев, когда модификации лабилизируют N-гликозильную связь, что позволяет образовывать участки без оснований, которые подвергаются бета-элиминированию.
Отрыв водорода от углерода 1'-дезоксирибозы гидроксильным радикалом создает 1'-дезоксирибозилрадикал. Затем радикал может реагировать с молекулярным кислородом, создавая пероксильный радикал, который может быть восстановлен и дегидратирован с получением 2'-дезоксирибонолактона и свободного основания. Дезоксирибонолактон является мутагенным и устойчивым к ферментам репарации. Таким образом, создается абазический сайт. [8]
Радикальное повреждение ДНК может также произойти в результате взаимодействия ДНК с определенными природными продуктами, известными как радиомиметические соединения, молекулярные соединения, которые влияют на ДНК аналогично воздействию радиации. [9] Радиомиметические соединения вызывают двухцепочечные разрывы в ДНК посредством высокоспецифичных, согласованных свободнорадикальных атак на дезоксирибозные фрагменты в обеих цепях ДНК. [10]
Многие радиомиметические соединения являются ендиинами , которые подвергаются реакции циклизации Бергмана с образованием бирадикала 1,4-дидегидробензола . Бирадикал 1,4-дидегидробензола очень реактивен и будет отрывать водороды от любого возможного донора водорода.
В присутствии ДНК бирадикал 1,4-дидегидробензола отрывает водороды от сахарного остова дезоксирибозы, преимущественно в положениях C-1', C-4' и C-5'. Отрыв водорода приводит к образованию радикала на прореагировавшем углероде. Углеродный радикал реагирует с молекулярным кислородом, что приводит к разрыву цепи ДНК посредством различных механизмов. [11] 1,4-дидегидробензол способен позиционировать себя таким образом, что он может отрывать проксимальные водороды от обеих цепей ДНК. [12] Это приводит к двухцепочечному разрыву ДНК, который может привести к клеточному апоптозу, если его не исправить.
Энедиины обычно подвергаются циклизации Бергмана при температурах, превышающих 200 °C. Однако включение ендиина в 10-членный циклический углеводород делает реакцию более термодинамически выгодной за счет высвобождения кольцевого напряжения реагентов. Это позволяет циклизации Бергмана происходить при 37 °C, биологической температуре человека. Было обнаружено, что молекулы, которые включают ендиины в эти более крупные кольцевые структуры, чрезвычайно цитотоксичны . [13]
Энедиины присутствуют во многих сложных природных продуктах. Они были первоначально обнаружены в начале 1980-х годов во время поиска новых противораковых продуктов, производимых микроорганизмами. [12] Калихеамицин был одним из первых таких продуктов, идентифицированных и первоначально был обнаружен в образце почвы, взятом из Керрвилля, Техас. Эти соединения синтезируются бактериями в качестве защитных механизмов из-за их способности расщеплять ДНК посредством образования 1,4-дидегидробензола из ендиинового компонента молекулы.
Калихеамицин и другие родственные соединения имеют несколько общих характеристик. Расширенные структуры, присоединенные к энедиину, позволяют соединению специфически связывать ДНК, [14] в большинстве случаев с малой бороздкой двойной спирали. Кроме того, часть молекулы известна как «триггер», который при определенных физиологических условиях активирует энедиин, известный как «боеголовка», и образуется 1,4-дидегидробензол.
С тех пор были идентифицированы три класса энедиинов: калихеамицин, динемицин и продукты на основе хромопротеина .
Типы калихеамицина определяются метилтрисульфидной группой, которая участвует в активации молекулы по следующему механизму. [12]
Калихеамицин и близкородственный ему эсперамицин использовались в качестве противораковых препаратов из-за их высокой токсичности и специфичности. [12]
Динемицин и его родственники характеризуются наличием антрахинонового и энедиинового ядра. Антрахиноновый компонент обеспечивает специфическое связывание ДНК на 3' стороне пуриновых оснований посредством интеркаляции , сайта, который отличается от калихеамицина. Его способность расщеплять ДНК значительно увеличивается в присутствии НАДФН и тиоловых соединений. [15] Это соединение также обрело известность как противоопухолевое средство. [15]
Хромопротеиновые ендиины характеризуются нестабильным хромофором ендиином, связанным с апопротеином .
Хромофор не реагирует, когда связан с апопротеином. После высвобождения он реагирует с образованием 1,4-дидегидробензола и затем расщепляет ДНК.
Большинство энедиинов, включая перечисленные выше, использовались в качестве мощных противоопухолевых антибиотиков из-за их способности эффективно расщеплять ДНК. Калихеамицин и эсперамицин являются двумя наиболее часто используемыми типами из-за их высокой специфичности при связывании с ДНК, что сводит к минимуму нежелательные побочные реакции. [14] Было показано, что они особенно полезны для лечения острого миелоидного лейкоза . [16]
Кроме того, калихеамицин способен расщеплять ДНК при низких концентрациях, что доказывает его эффективность в 1000 раз выше, чем у адриамицина в борьбе с некоторыми типами опухолей. [17]
Механизм свободных радикалов для лечения некоторых видов рака выходит за рамки энедиинов. Тирапазамин генерирует свободный радикал в бескислородных условиях вместо триггерного механизма энедиина. Затем свободный радикал продолжает расщеплять ДНК аналогично 1,4-дидегидробензолу для лечения раковых клеток. В настоящее время он находится на III фазе испытаний.
Мейоз является центральной особенностью полового размножения у эукариот . Необходимость восстановления окислительных повреждений ДНК, вызванных окислительными свободными радикалами, была выдвинута в качестве основной движущей силы в эволюции мейоза [18] [19]