Сплайсосома — это большой рибонуклеопротеиновый (РНП) комплекс, находящийся в основном в ядре эукариотических клеток . Сплайсосома собирается из малых ядерных РНК ( мяРНК ) и многочисленных белков. Молекулы малых ядерных РНК (мяРНК) связываются со специфическими белками, образуя небольшой ядерный рибонуклеопротеиновый комплекс (мяРНП, произносится как «снёрпс»), который, в свою очередь, объединяется с другими мяРНП, образуя большой рибонуклеопротеиновый комплекс, называемый сплайсосомой. Сплайсосома удаляет интроны из транскрибированной пре-мРНК, типа первичного транскрипта . Этот процесс обычно называют сплайсингом . [1] Аналогией является монтажер фильма, который выборочно вырезает ненужный или неправильный материал (эквивалент интронов ) из исходного фильма и отправляет очищенную версию режиссеру для окончательного монтажа. [ необходима цитата ]
Однако иногда РНК внутри интрона действует как рибозим, осуществляя сплайсинг без использования сплайсосомы или белковых ферментов.
В 1977 году работа лабораторий Шарпа и Робертса показала, что гены высших организмов «расщеплены» или присутствуют в нескольких отдельных сегментах вдоль молекулы ДНК. [2] [3] Кодирующие области гена разделены некодирующей ДНК , которая не участвует в экспрессии белка. Структура расщепленного гена была обнаружена, когда аденовирусные мРНК были гибридизированы с фрагментами расщепления эндонуклеазой одноцепочечной вирусной ДНК. [2] Было замечено, что мРНК гибридов мРНК-ДНК содержали 5' и 3' хвосты не связанных водородом областей. Когда использовались более крупные фрагменты вирусной ДНК, при гибридизации с вирусными мРНК наблюдались раздвоенные структуры петлевой ДНК. Было обнаружено, что петлевые области, интроны , вырезаются из предшественников мРНК в процессе, который Шарп назвал «сплайсингом». Впоследствии было обнаружено, что структура расщепленного гена является общей для большинства эукариотических генов. Филлип Шарп и Ричард Дж. Робертс были удостоены Нобелевской премии по физиологии и медицине 1993 года за открытие интронов и процесса сплайсинга. [ необходима ссылка ]
Каждая сплайсосома состоит из пяти малых ядерных РНК (мяРНК) и ряда связанных с ними белковых факторов. Когда эти малые РНК объединяются с белковыми факторами, они создают комплексы РНК-белок, называемые мяРНП ( малые ядерные рибонуклеопротеины , произносится как « снёрпс » ) . МяРНК, составляющие основную сплайсосому, называются U1 , U2 , U4 , U5 и U6 , так называемые потому , что они богаты уридином и участвуют в нескольких взаимодействиях РНК-РНК и РНК-белок. [1]
Сборка сплайсосомы происходит на каждой пре-мРНК (также известной как гетерогенная ядерная РНК, hn-РНК) на каждом стыке экзон:интрон. Пре-мРНК интроны содержат специфические элементы последовательности, которые распознаются и используются во время сборки сплайсосомы. К ним относятся 5'-концевой сайт сплайсинга, последовательность точек ветвления, полипиримидиновый тракт и 3'-концевой сайт сплайсинга. Сплайсосома катализирует удаление интронов и лигирование фланкирующих экзонов. [ необходима цитата ]
Интроны обычно имеют последовательность нуклеотидов GU на 5'-концевом сайте сплайсинга и AG на 3'-концевом сайте сплайсинга. 3'-сайт сплайсинга может быть дополнительно определен переменной длиной полипиримидинов, называемых полипиримидиновым трактом (PPT), который выполняет двойную функцию привлечения факторов к 3'-сайту сплайсинга и, возможно, привлечения факторов к последовательности точек ветвления (BPS). BPS содержит консервативный аденозин, необходимый для первого этапа сплайсинга. [ необходима цитата ]
Во многих белках присутствует мотив связывания цинка, что подчеркивает важность цинка в механизме сплайсинга. [4] [5] [6] Первая реконструкция с молекулярной точностью комплекса тройного малого ядерного рибонуклеопротеина (tri-snRNP) U4/U6.U5 была опубликована в 2016 году. [7]
Крио-ЭМ широко применялась Ши и др. для выяснения почти атомной структуры сплайсосомы как у дрожжей [9], так и у людей. [10] Молекулярная структура сплайсосомы с почти атомным разрешением демонстрирует, что компонент Spp42 U5 snRNP образует центральный каркас и закрепляет каталитический центр в дрожжах. Атомная структура человеческой сплайсосомы иллюстрирует компонент II этапа Slu7, принимающий расширенную структуру, готовую к выбору 3'-сайта сплайсинга. Все пять металлов (обозначенные как Mg2+) в дрожжевом комплексе сохраняются в человеческом комплексе. [ необходима ссылка ]
Альтернативный сплайсинг (рекомбинация различных экзонов ) является основным источником генетического разнообразия у эукариот. Варианты сплайсинга использовались для объяснения относительно небольшого числа генов, кодирующих белок, в геноме человека , которое в настоящее время оценивается примерно в 20 000. Один конкретный ген Drosophila , Dscam , как предполагалось, альтернативно сплайсируется в 38 000 различных мРНК , предполагая, что все его экзоны могут сплайсироваться независимо друг от друга. [11]
Первоначально было обнаружено, что факторы сплайсинга пре-мРНК концентрируются в ядерных тельцах, известных как ядерные спеклы. [12] Первоначально постулировалось, что ядерные спеклы являются либо сайтами сплайсинга мРНК, либо сайтами хранения факторов сплайсинга мРНК. Теперь понятно, что ядерные спеклы помогают концентрировать факторы сплайсинга вблизи генов, которые физически расположены близко к ним. Гены, расположенные дальше от спеклов, все еще могут транскрибироваться и сплайсироваться, но их сплайсинг менее эффективен по сравнению с генами, расположенными ближе к спеклам. [13] Сплайсинг РНК является биохимической реакцией, и, как и все биохимические реакции, его скорость зависит от концентрации ферментов и субстратов. В этом случае ферментами являются сплайсосомы, а субстратами являются пре-мРНК. Изменяя концентрацию сплайсосом и пре-мРНК в зависимости от их близости к ядерным спеклам, клетки потенциально могут регулировать эффективность сплайсинга. [13]
Модель формирования активного сайта сплайсосомы включает упорядоченную, пошаговую сборку дискретных частиц snRNP на субстрате пре-мРНК. Первое распознавание пре-мРНК включает связывание U1 snRNP с 5'-концевым сайтом сплайсинга пре-мРНК и другими факторами, не связанными с snRNP, для формирования комплекса коммита или раннего (E) комплекса у млекопитающих. [14] [15] Комплекс коммита представляет собой АТФ-независимый комплекс, который коммитает пре-мРНК на путь сплайсинга. [16] U2 snRNP привлекается в область ветвления посредством взаимодействий с компонентом комплекса E U2AF (вспомогательный фактор U2 snRNP) и, возможно, U1 snRNP. В АТФ-зависимой реакции U2 snRNP тесно связывается с последовательностью точек ветвления (BPS), образуя комплекс A. Дуплекс, образованный между U2 snRNP и областью ветви пре-мРНК, выпячивает аденозин ветви, определяя его как нуклеофил для первой переэтерификации. [17]
Присутствие псевдоуридинового остатка в U2 snRNA, почти напротив места разветвления, приводит к измененной конформации дуплекса РНК-РНК при связывании U2 snRNP. В частности, измененная структура дуплекса, вызванная псевдоуридином, помещает 2' OH выпуклого аденозина в благоприятное положение для первого шага сплайсинга. [18] U4/U5/U6 tri-snRNP (см. Рисунок 1) привлекается к собирающейся сплайсосоме для формирования комплекса B, и после нескольких перестроек комплекс C активируется для катализа. [19] [20] Неясно, как tri-snRNP привлекается к комплексу A, но этот процесс может быть опосредован белок-белковыми взаимодействиями и/или взаимодействиями пар оснований между U2 snRNA и U6 snRNA. [ необходима цитата ]
U5 snRNP взаимодействует с последовательностями в 5'- и 3'-сайтах сплайсинга через инвариантную петлю U5 snRNA [21] , а компоненты белка U5 взаимодействуют с областью 3'-сайта сплайсинга. [22]
При рекрутировании три-мяРНП несколько перестроек РНК-РНК предшествуют первому каталитическому шагу, а дальнейшие перестройки происходят в каталитически активной сплайсосоме. Несколько взаимодействий РНК-РНК являются взаимоисключающими; однако неизвестно, что запускает эти взаимодействия, и каков порядок этих перестроек. Первая перестройка, вероятно, представляет собой смещение U1 мяРНП из 5'-сайта сплайсинга и образование взаимодействия U6 мяРНП. Известно, что U1 мяРНП слабо связан с полностью сформированными сплайсосомами [23] , а U1 мяРНП ингибирует образование взаимодействия сайта сплайсинга U6-5' на модели субстратного олигонуклеотида, содержащего короткий 5'-экзон и 5'-сайт сплайсинга. [24] Связывание U2 мяРНП с последовательностью точек ветвления (BPS) является одним из примеров взаимодействия РНК-РНК, вытесняющего взаимодействие белок-РНК. При привлечении U2 snRNP белок связывания ветви SF1 в комплексе присоединения смещается, поскольку сайт связывания U2 snRNA и SF1 являются взаимоисключающими событиями. [ необходима цитата ]
В пределах U2 snRNA существуют другие взаимоисключающие перестройки, которые происходят между конкурирующими конформациями. Например, в активной форме предпочтительна петля IIa; в неактивной форме преобладает взаимоисключающее взаимодействие между петлей и последовательностью ниже по течению. [20] Неясно, как U4 вытесняется из мяРНК U6, хотя РНК была вовлечена в сборку сплайсосомы и может функционировать для раскручивания U4/U6 и содействия образованию взаимодействия мяРНК U2/U6. Взаимодействия петель I и II стебля U4/U6 диссоциируют, и освобожденная область петли II стебля U6 складывается сама на себя, образуя внутримолекулярную петлю стебля, и U4 больше не требуется для дальнейшей сборки сплайсосомы. Освобожденная область петли I стебля U6 спаривается с мяРНК U2, образуя спираль I U2/U6. Однако структура спирали I является взаимоисключающей с 3'-половиной внутренней 5'-области петли стебля U2 snRNA. [ необходима ссылка ]
У некоторых эукариот есть вторая сплайсосома, так называемая малая сплайсосома . [25] Группа менее распространенных snRNAs, U11 , U12 , U4atac и U6atac , вместе с U5, являются субъединицами малой сплайсосомы, которая сплайсирует редкий класс пре-мРНК интронов, обозначенных как U12-тип. Малая сплайсосома расположена в ядре, как и ее основная копия, [26] хотя есть исключения в некоторых специализированных клетках, включая безъядерные тромбоциты [27] и дендроплазму ( дендритную цитоплазму) нейрональных клеток. [28]