stringtranslate.com

Пролил-изомераза

Пролилизомераза (также известная как пептидилпролилизомераза или PPIase ) — это фермент ( EC 5.2.1.8), обнаруженный как у прокариот , так и у эукариот, который взаимопревращает цис- и транс- изомеры пептидных связей с аминокислотой пролином . [1] Пролин имеет необычно конформационно ограниченную пептидную связь из-за своей циклической структуры с боковой цепью , связанной с азотом вторичного амина . Большинство аминокислот имеют сильное энергетическое предпочтение транс -конформации пептидной связи из-за стерических препятствий , но необычная структура пролина стабилизирует цис -форму, так что оба изомера заселяются в биологически значимых условиях. Белки с активностью пролилизомеразы включают циклофилин , FKBP и парвулин , хотя более крупные белки также могут содержать домены пролилизомеразы .

Сворачивание белка

Пролин уникален среди природных аминокислот тем, что имеет относительно небольшую разницу в свободной энергии между цис -конфигурацией его пептидной связи и более распространенной транс -формой. Энергия активации , необходимая для катализа изомеризации между цис и транс , относительно высока: ~20 ккал/моль ( ср. ~0 ккал/моль для обычных пептидных связей). В отличие от обычных пептидных связей, пептидная связь X-пролил не будет принимать предполагаемую конформацию спонтанно, таким образом, процесс цис-транс -изомеризации может быть этапом, ограничивающим скорость в процессе сворачивания белка . Поэтому пролилизомеразы функционируют как шапероны сворачивания белка . Цис- пептидные связи N-концевые к остаткам пролина часто располагаются на первом остатке определенных типов плотных поворотов в остове белка. Белки, содержащие структурные цис -пролины в нативном состоянии, включают рибонуклеазу А , рибонуклеазу Т1 , бета-лактамазу , циклофилин и некоторые интерлейкины .

Сворачивание пролилизомеразы может быть автокаталитическим , и поэтому скорость сворачивания зависит от концентрации реагента. Парвулин и человеческий цитозольный FKBP , как полагают, катализируют собственные процессы сворачивания.

Доказательства изомеризации пролина

Методы определения наличия лимитирующего скорость процесса изомеризации пролина в процессе сворачивания белка включают:

  1. Энергии активации соответствуют изомеризации пролина, которая обычно имеет активацию около 20 ккал/моль.
  2. Двухстадийная кинетика сворачивания указывает на наличие как быстросворачивающихся, так и медленносворачивающихся популяций в развернутом или денатурированном состоянии.
  3. Анализы «двойного прыжка», в которых пролин-содержащие белки разворачиваются и сворачиваются заново, а популяция ненативных конформаций пролина изучается в зависимости от степени сворачивания.
  4. Ускорение скорости сворачивания in vitro путем добавления пролилизомеразы.
  5. Ускорение скорости сворачивания in vitro в мутантных вариантах белка с одним или несколькими остатками пролина, замененными другой аминокислотой.

Важно отметить, что не каждая пролиновая пептидная связь имеет решающее значение для структуры или функции белка, и не каждая такая связь оказывает существенное влияние на кинетику фолдинга, особенно транс -связи. Кроме того, некоторые пролилизомеразы обладают определенной степенью специфичности последовательности и, следовательно, могут не катализировать изомеризацию пролинов в определенных контекстах последовательности.

Анализы активности пролилизомеразы

Активность пролилизомеразы была впервые обнаружена с помощью анализа на основе химотрипсина . Протеолитический фермент химотрипсин имеет очень высокую субстратную специфичность для четырехостаточного пептида Ala - Ala - Pro - Phe только тогда, когда связь пролинового пептида находится в транс -состоянии. Добавление химотрипсина к раствору, содержащему репортерный пептид с этой последовательностью, приводит к быстрому расщеплению около 90% пептидов, в то время как пептиды с цис- пролиновыми связями - около 10% в водном растворе - расщепляются со скоростью, ограниченной некатализируемой изомеризацией пролина. Добавление потенциальной пролилизомеразы ускорит эту последнюю фазу реакции, если она обладает истинной пролилизомеразной активностью.

Ссылки

  1. ^ Фишер Г., Шмид Ф. К. (1990). «Механизм сворачивания белка. Значение моделей рефолдинга in vitro для сворачивания белка de novo и транслокации в клетке». Биохимия . 29 (9): 2205–2212. doi :10.1021/bi00461a001. PMID  2186809.

Дальнейшее чтение