Клетки яичника китайского хомячка ( CHO ) представляют собой семейство бессмертных клеточных линий [1], полученных из эпителиальных клеток яичника китайского хомячка , часто используемых в биологических и медицинских исследованиях , а также в коммерческих целях при производстве рекомбинантных терапевтических белков . [1] [2] Они нашли широкое применение в исследованиях генетики, скрининга токсичности, питания и экспрессии генов, и особенно с 1980-х годов для экспрессии рекомбинантных белков. Клетки CHO являются наиболее часто используемыми хозяевами млекопитающих для промышленного производства рекомбинантных терапевтических белков. [2]
Китайские хомяки использовались в исследованиях с 1919 года, где они использовались вместо мышей для типирования пневмококков . Впоследствии было обнаружено, что они являются отличными векторами для передачи кала-азара ( висцерального лейшманиоза ), что облегчает исследования лейшманий . [3] [4]
В 1948 году китайский хомяк был впервые использован в Соединенных Штатах для разведения в исследовательских лабораториях. В 1957 году Теодор Т. Пак получил самку китайского хомяка из лаборатории доктора Джорджа Ерганиана в Бостонском фонде исследований рака и использовал ее для получения оригинальной линии клеток яичника китайского хомяка (CHO). С тех пор клетки CHO стали предпочтительной линией клеток из-за их быстрого роста в суспензионной культуре и высокой выработки белка. [3] [5]
Тромболитическое средство против инфаркта миокарда альтеплаза (Активаза) было одобрено Управлением по контролю за продуктами и лекарствами США в 1987 году. Это был первый коммерчески доступный рекомбинантный белок, полученный из клеток CHO. [3] [6] Клетки CHO продолжают оставаться наиболее широко используемым подходом к производству рекомбинантных белковых терапевтических и профилактических средств. [7] [8] В 2019 году шесть из 10 самых продаваемых препаратов были произведены в клетках CHO. [9]
Все линии клеток CHO имеют дефицит синтеза пролина . [10] Кроме того, клетки CHO не экспрессируют рецептор эпидермального фактора роста (EGFR), что делает их идеальными для исследования различных мутаций EGFR. [11]
Более того, клетки яичников китайского хомячка способны производить белки со сложными гликозилированиями , посттрансляционными модификациями (PTMs), похожими на те, которые производятся у людей. Их легко выращивать в крупномасштабных культурах, и они обладают большой жизнеспособностью, поэтому они идеально подходят для производства белка GMP . Кроме того, клетки CHO устойчивы к изменениям параметров, будь то уровень кислорода, значение pH , температура или плотность клеток. [12]
Имея очень низкое число хромосом (2n=22) для млекопитающего , китайский хомяк также является хорошей моделью для радиационной цитогенетики и тканевой культуры. [13]
С тех пор как в 1956 году была описана первоначальная линия клеток CHO, было разработано множество вариантов этой линии для различных целей. [10] [ необходимы дополнительные ссылки ] В 1957 году из одного клона клеток CHO был создан CHO-K1. [14] Однако, согласно отраслевому источнику, ученый Теодор Пак впервые выделил CHO-K1 в 1968 году. [1] Пак и его коллеги сообщили о создании линии клеток яичников китайского хомячка в 1957 году. [15] [16] Варианты K1 включают депозиты в ATCC, ECACC и версию, адаптированную для роста в среде без белка. [14]
CHO-K1 был мутагенезирован в 1970-х годах с помощью этилметансульфоната для создания клеточной линии, лишенной активности дигидрофолатредуктазы (DHFR), называемой CHO-DXB11 (также называемой CHO-DUKX). [17] Однако эти клетки при мутагенезе могли вернуться к активности DHFR, что сделало их полезность для исследований несколько ограниченной. [17] Впоследствии в 1983 году клетки CHO были мутагенезированы с помощью гамма-излучения для получения клеточной линии, в которой оба аллеля локуса DHFR были полностью устранены, названной CHO-DG44. [18] Эти штаммы с дефицитом DHFR требуют для роста глицин , гипоксантин и тимидин . [18] Клеточные линии с мутировавшим DHFR полезны для генетических манипуляций, поскольку клетки, трансфицированные интересующим геном вместе с функциональной копией гена DHFR, можно легко скринировать в средах с недостатком тимидина. Благодаря этому клетки CHO с недостатком DHFR являются наиболее широко используемыми клетками CHO для промышленного производства белка.
В последнее время стали популярными другие системы отбора, и с векторными системами, которые могут более эффективно нацеливаться на активный хроматин в клетках CHO, можно также использовать отбор антибиотиков ( пуромицин ) для создания рекомбинантных клеток, экспрессирующих белки на высоком уровне. Такого рода система не требует специальной мутации, поэтому было обнаружено, что культура клеток-хозяев без дефицита DHFR производит отличные уровни белков.
Поскольку клетки CHO имеют очень высокую склонность к генетической нестабильности (как и все бессмертные клетки), не следует полагать, что применяемые названия указывают на их полезность для производственных целей. Например, три культуры потомства K1, доступные в 2013 году, имеют значительные накопленные мутации по сравнению друг с другом. [14] Большинство, если не все, промышленно используемые линии клеток CHO в настоящее время культивируются в средах без животных компонентов или в химически определенных средах и используются в крупномасштабных биореакторах в условиях суспензионной культуры. [10] [14] Сложная генетика клеток CHO и вопросы, касающиеся клонального происхождения клеточной популяции, широко обсуждались. [19] [20]
Большая часть генетических манипуляций, проводимых в клетках CHO, проводится в клетках, лишенных фермента DHFR . Эта схема генетического отбора остается одним из стандартных методов создания трансфицированных линий клеток CHO для производства рекомбинантных терапевтических белков. Процесс начинается с молекулярного клонирования интересующего гена и гена DHFR в единую систему экспрессии млекопитающих . Затем плазмидная ДНК, несущая два гена, трансфицируется в клетки, и клетки выращиваются в селективных условиях в среде с недостатком тимидина . Выжившие клетки будут иметь экзогенный ген DHFR вместе с интересующим геном, интегрированным в их геном . [21] [22] Скорость роста и уровень продукции рекомбинантного белка каждой клеточной линии сильно различаются. Чтобы получить несколько стабильно трансфицированных линий клеток с желаемыми фенотипическими характеристиками, может потребоваться оценка нескольких сотен линий клеток-кандидатов.
Линии клеток CHO и CHO-K1 можно получить из ряда биологических ресурсных центров, таких как Европейская коллекция клеточных культур , которая является частью Коллекций культур Агентства по охране здоровья. Эти организации также хранят данные, такие как кривые роста, покадровые видео роста, изображения и информацию о рутинной субкультуре. [23]
Клетки CHO являются наиболее распространенной клеточной линией млекопитающих, используемой для массового производства терапевтических белков, таких как моноклональные антитела, используемые в 70% терапевтических mAb. [2] Они могут производить рекомбинантный белок в масштабе 3–10 граммов на литр культуры. [10] Продукты клеток CHO подходят для применения у человека, поскольку эти клетки млекопитающих выполняют посттрансляционные модификации рекомбинантных белков, подобные человеческим, что является ключом к функционированию нескольких белков. [24]
Однако 70% биопрепаратов и почти все моноклональные антитела производятся в клетках яичников китайского хомячка (CHO), которые являются наиболее часто используемыми и предпочтительными хозяевами для производства биофармацевтических белков.
С 2016 года около 70% всех rBP и mAb были получены из линий клеток яичников китайского хомячка (CHO)
2019 году все шесть из десяти самых продаваемых препаратов были произведены в клетках CHO (Urquhart, 2020).