stringtranslate.com

Эктомикоризный экстраматричный мицелий

Эктомикоризы и ближнераспространенный экстраматричный мицелий

Эктомикоризный внематричний мицелий (также известный как внекорневой мицелий) представляет собой совокупность нитевидных грибковых гиф, исходящих из эктомикориз . Он может состоять из тонких, гидрофильных гиф, которые часто разветвляются для исследования и использования почвенной матрицы или могут объединяться для формирования ризоморфов ; высокодифференцированных, гидрофобных , устойчивых транспортных структур.

Характеристики

Эктомикоризы на корнях Picea glauca , окруженные экстраматричным мицелием

Обзор

Помимо микоризы , внематричний мицелий является основным вегетативным телом эктомикоризных грибов. Это место получения минералов , [1] выработки ферментов , [2] и ключевое средство колонизации новых кончиков корней. [3] Внематричний мицелий облегчает перемещение углерода в ризосферу , [ 4] перемещает углерод и питательные вещества между хозяевами [5] и является важным источником пищи для беспозвоночных . [6]

Тип разведки

Характер роста мицелия, степень накопления биомассы и наличие или отсутствие ризоморф используются для классификации грибов по типу разведки. Агерер впервые предложил обозначение типов разведки в 2001 году [7], и с тех пор эта концепция широко применяется в исследованиях эктомикоризной экологии . Обычно признаются четыре типа разведки: контактный, ближнего, среднего и дальнего действия.

Типы контактной разведки обладают преимущественно гладкой мантией и не имеют ризоморф с эктомикоризами в тесном контакте с окружающим субстратом . Типы разведки на короткие расстояния также не имеют ризоморф, но мантия окружена частыми выступами гиф, которые выходят на небольшое расстояние в окружающий субстрат. Большинство эктомикоризных аскомицетов включены в эту группу.

Типы исследования на среднем расстоянии далее делятся на три подтипа, определяемые диапазоном роста и дифференциацией их ризоморф. Средне-дистанционные бахромчатые образуют взаимосвязанные сети гиф с ризоморфами, которые многократно делятся и сливаются. Типы матов на среднем расстоянии образуют плотные маты гиф, которые объединяются в однородную массу. Наконец, подтип гладких средних расстояний имеет ризоморфы с гладкими мантиями и краями.

Клетки гиф грибов 1- Стенка гифы 2- Септа 3- Митохондрия 4- Вакуоль 5- Кристалл эргостерола 6- Рибосома 7- Ядро 8- Эндоплазматический ретикулум 9- Липидное тельце 10- Плазматическая мембрана 11- Spitzenkörper/кончик роста и пузырьки 12- Аппарат Гольджи

Типы разведки на большие расстояния сильно дифференцированы, образуя ризоморфы, которые содержат полые сосудоподобные транспортные трубки. Типы разведки на большие расстояния связаны с повышенным уровнем поглощения органического азота по сравнению с другими типами разведки и считаются менее конкурентоспособными в нарушенных системах в отличие от типов разведки на короткие расстояния, которые способны более эффективно восстанавливаться после события нарушения . [8]

Тип исследования в первую очередь соответствует данной линии . Однако некоторые роды грибов, которые содержат большое количество видов, имеют большое разнообразие внематричной морфологии гиф и, как известно, содержат более одного типа исследования. [9] Из-за этого экстраполяция типа исследования на виды, известные только по линии, затруднена. [10] Часто грибы не вписываются в определенный тип исследования, вместо этого попадая вдоль градиента. Тип исследования также не учитывает другие аспекты морфологии гиф, такие как степень, в которой гифы проникают в более глубокие горизонты почвы . [11]

Полевые исследования показали, что внематричный мицелий с большей вероятностью размножается в минеральных почвах , чем в органических материалах , и может отсутствовать в свежей листовой подстилке . [12] Однако присутствие различных эктомикоризных групп в различных почвенных горизонтах позволяет предположить, что различные группы развили специализированное разделение ниш , возможно, связанное с типом разведки. [13]

Экологические последствия

Общественное собрание

Эктомикоризные плодовые тела лаккарии в лесном сообществе

Поскольку эктомикоризы малы и обладают ограниченной площадью контакта с окружающей почвой, наличие экстраматричных гиф значительно увеличивает площадь поверхности , контактирующей с окружающей средой. Увеличенная площадь поверхности означает больший доступ к необходимым источникам питательных веществ. Кроме того, наличие ризоморфов или мицелиальных шнуров может действовать сопоставимо с ксилемной тканью в растениях, где полые трубки сосудистых гиф переносят воду и растворенные питательные вещества на большие расстояния. [14] Обилие и пространственное распределение кончиков корней хозяина в ризосфере является важным фактором, опосредующим сборку эктомикоризного сообщества . Плотность корней может выбирать типы разведки, наиболее подходящие для данного расстояния между корнями. В сосновых системах грибы, которые демонстрируют типы разведки на короткие расстояния, менее способны колонизировать новые корни, расположенные далеко от микоризы, а типы на большие расстояния доминируют в областях с низкой плотностью корней. Напротив, типы разведки на короткие расстояния, как правило, доминируют в областях с высокой плотностью корней, где снижение расхода углерода делает их более конкурентоспособными, чем виды, живущие на больших расстояниях. [15] Рост экстраматричного мицелия оказывает прямое влияние на мутуалистический обмен питательными веществами между эктомикоризными грибами и их хозяевами. Увеличение гифальной оккупации почвы позволяет грибу в большей степени использовать воду и питательные вещества, которые в противном случае были бы недоступны корням растений, и более эффективно транспортировать эти ресурсы обратно к растению. Напротив, увеличение затрат на распределение углерода, связанное с поддержкой грибкового партнера с обширной мицелиальной системой, ставит ряд вопросов, связанных с затратами и выгодами эктомикоризного мутуализма. [16]

Углеродный цикл

Хотя есть доказательства того, что некоторые виды микоризных грибов могут получать по крайней мере часть своего углерода через сапротрофное питание , [17] основная часть микоризного получения углерода происходит путем обмена на продукты фотосинтеза, полученные от хозяина . Микоризные системы представляют собой основной поглотитель углерода . Лабораторные исследования предсказывают, что около 23% углерода, полученного от растений, выделяется во внематричный мицелий, [18] хотя, по оценкам, 15-30% этого количества теряется при дыхании грибов. [19] [20] Распределение углерода неравномерно распределяется во внематричный мицелий в зависимости от таксонов грибов, доступности питательных веществ и возраста связанных микориз. [21] [22] Большая часть углерода, выделяемого во внематричный мицелий, накапливается в виде грибковой биомассы , составляя, по оценкам, одну треть от общей микробной биомассы и половину от общего количества растворенного органического углерода в некоторых лесных почвах. [4] Углерод также поддерживает производство спорокарпий и склероций , при этом различные таксоны инвестируют дифференцированно в эти структуры, а не в пролиферацию внематричного мицелия. Приобретение углерода также идет на производство грибковых экссудатов. Внематричные гифы выделяют ряд соединений в почвенную матрицу, на долю которых приходится до 40% от общего использования углерода. [23] Эти экссудаты выделяются в основном на фронте роста и используются в таких функциях, как минерализация и гомеостаз . [24]

Многие исследователи пытались спрогнозировать роль, которую может играть внематриксный мицелий в секвестрации углерода . Хотя оценки продолжительности жизни отдельных эктомикориз весьма значительны, оборот обычно рассматривается в масштабе месяцев.

Cortinarius ectomycorrhizas и внематричная мицелия на корнях Pseudotsuga menziesii

После смерти наличие эктомикориз на кончиках корней может увеличить скорость разложения корней для некоторых грибковых таксонов . [25] Помимо гибели растения-хозяина и оборота микоризы, на скорость секвестрации углерода могут также влиять нарушения в почве, которые приводят к отделению участков внематричного мицелия от растения-хозяина. Такие нарушения, например, вызванные нарушением животных, микофагическими беспозвоночными или разрушением среды обитания , могут оказывать заметное влияние на скорость круговорота. Эти переменные затрудняют оценку скорости круговорота микоризной биомассы в лесных почвах и относительного вклада внематричного мицелия в секвестрацию углерода.

Мицелиальные сети

Присутствие дальних экстраматрических гиф может влиять на здоровье леса через образование общих мицелиальных сетей, в которых гифальные связи формируются между растениями-хозяевами, расположенными между корневыми клетками хозяина, могут способствовать переносу углерода и питательных веществ между хозяевами. [26] В то время как общие мицелиальные сети (CMN) позволяют осуществлять межрастительный обмен углеродом, в первую очередь между фотосинтезирующими растениями, ряд нефотосинтезирующих растений также приспособились участвовать в переносе углерода через CMN. Обширный охват сети за пределами корней растения позволяет грибковым гифам поставлять минеральные питательные вещества растению-хозяину в обмен на углерод. [26]

Помимо содействия переносу питательных веществ, CMN выполняют несколько других функций, включая передачу сигналов соединений и коммуникацию между растениями. [27] CMN передают предупреждающие знаки об атаках патогенов между растениями и позволяют вновь образовавшимся корням быстро заселяться полностью функционирующим грибковым мицелием. [28] CMN соединяют многие растения, и вызванные стрессом сигналы передаются от растения, подвергшегося стрессу, к другим, активируя защитные реакции. Эти предупреждающие сигналы исходят от самого растения и идут к корням растения. Из корней сигналы поступают в микоризные грибы и проходят через сеть, чтобы передавать предупреждения другим растениям, подключенным к сети. Мицелиальные сети также могут отвечать за содействие транспортировке аллелопатических химических веществ от растения-поставщика непосредственно в ризосферу других растений. [29] Эктомикоризные грибы увеличивают первичную продукцию в растениях-хозяевах с мультитрофическими эффектами. Таким образом, внематриксный мицелий важен для поддержания почвенных пищевых цепей [6], обеспечивая существенный источник питательных веществ для беспозвоночных и микроорганизмов , а также для общей конкуренции и разнообразия растений.

В то время как CMN обеспечивают взаимовыгодные связи между растениями посредством передачи питательных веществ и защитных предупреждений, эти сети также могут приводить к неравным отношениям между растениями, в которых одно извлекает выгоду за счет другого. В CMN, общей для двух растений, возможно, что одно растение получает больше питательных веществ из сети или поставляет неравное количество углерода общим грибковым гифам, в результате чего этот вид растений эксплуатирует сеть и получает больше, чем другой. Следовательно, другое растение будет в худшем положении из-за CMN, соединяющей его с эксплуатирующим растением. [26]

Существует два типа микоризных сетей. Большинство растений связаны с арбускулярными микоризными грибами (AMF). AMF способны образовывать симбиозы с несколькими видами растений и соединяться с корнями разных хозяев, что позволяет CMN. Мицелиальные сети функционируют посредством сигналов, которые сначала производятся в растениях, затем перемещаются к корням, а затем мигрируют в AMF. Затем сигналы проходят через поверхность растения, где они могут транспортироваться к листьям или другим органам. Клетки реагируют на эти сигналы, образуя трубчатую структуру в качестве подготовки к грибковым гифам. [30] Мицелий AMF может связывать множество растений на больших площадях.

Второй тип — эктомикоризные сети (ECM). Грибы ECM чрезвычайно разнообразны, что приводит к различному поведению по отношению к своим хозяевам-растениям. По сравнению с AMF, ECM более разнообразны и образуются в основном на деревьях. ECM опосредуют питательные вещества для растений и деревьев, прерывая сильвигенетический цикл во время созревания. Поскольку ECM различаются в зависимости от дерева, вырубка деревьев и лесозаготовки показали сокращение сообщества грибов ECM. Таким образом, создание имитаций ECM в искусственных экосистемах может быть решением для проектирования городских зеленых зон. [31]

Доступ к минеральным ресурсам

Производство ферментов

Ферментативная активность эктомикоризных грибов сильно варьируется между видами. Эти различия коррелируют с типом исследования (в частности, наличием или отсутствием ризоморфов), а не с родословной или ассоциацией с хозяином, что предполагает, что схожая морфология внекорневого мицелия является примером конвергентной эволюции . [2] Различия в ферментативной активности , а следовательно, и способность разлагать органические соединения, диктуют доступ грибков к питательным веществам, что имеет широкомасштабные экологические последствия.

Фосфор

Поскольку различные таксоны эктомикоризных грибов сильно различаются по своей метаболической активности [32], они также часто различаются по своей способности обмениваться питательными веществами со своими хозяевами. [33] Считается, что получение фосфора микоризными грибами и последующая передача его растениям-хозяевам является одной из основных функций эктомикоризного симбиоза. Экстраматричный мицелий является местом сбора фосфора в почвенной системе. Эта связь настолько сильна, что, как известно, голодание растений-хозяев по фосфору увеличивает рост экстраматричного мицелия в десять раз. [34]

Азот

Недавно изотопные исследования использовались для изучения относительного обмена между эктомикоризными грибами и растениями-хозяевами и для оценки относительной важности типа разведки для способности обмена питательными веществами. Значения 15 N повышены у эктомикоризных грибов и понижены у грибов-хозяев в результате обмена питательными веществами. [35] Известно, что виды грибов с типами разведки, производящие большее количество внекорневого мицелия, накапливают большее количество 15 N [2] [36] как в кончиках корней, так и в плодовых телах, явление, частично приписываемое более высоким уровням круговорота азота внутри этих видов.

Методы оценки

мицелий Amanita phalloides

Определение продолжительности жизни внематричного мицелия является сложной задачей, и оценки варьируются от нескольких месяцев до нескольких лет. Скорость оборота оценивается различными способами, включая прямое наблюдение и датирование 14 C. Такие оценки являются важной переменной при расчете вклада, который эктомикоризные грибы вносят в секвестрацию углерода . [37] Для того чтобы отличить эктомикоризный мицелий от мицелия сапротрофных грибов , оценки биомассы часто проводятся с помощью анализа эргостерола или фосфолипидных жирных кислот или с помощью мешков, заполненных песком, которые, вероятно, будут избегаться сапротрофными грибами, поскольку в них отсутствует органическое вещество . [37] Подробная морфологическая характеристика типа разведки была определена для более чем 550 различных видов эктомикоризных и собрана на www. deemy. de. Из-за сложности классификации типов разведки промежуточных форм были предложены другие показатели для оценки и количественной оценки роста внематричного мицелия, включая удельное фактическое/потенциальное занимаемое мицелием пространство и удельную внематричную длину мицелия [38] , которые пытаются учесть вклад плотности мицелия , площади поверхности и общей биомассы .

Ссылки

  1. ^ Ландеверт Р., Хоффланд Э., Финлей Р.Д., Кайпер Т.В., ван Бреемен Н. (2001). «Связывание растений с горными породами: эктомикоризные грибы мобилизуют питательные вещества из минералов». Тенденции в экологии и эволюции . 16 (5): 248–254. doi :10.1016/S0169-5347(01)02122-X. PMID  11301154.
  2. ^ abc Тедерсоо, Лехо; Наадель, Триин; Бахрам, Мохаммед; Притч, Карин; Бюггер, Франц; Леаль, Мигель; Кылялг, Урмас; Пылдмаа, Кадри (2012). «Ферментативная активность и структура стабильных изотопов эктомикоризных грибов в связи с филогенией и типами исследований в тропических тропических лесах». Новый фитолог . 195 (4): 832–843. дои : 10.1111/j.1469-8137.2012.04217.x . ISSN  0028-646X. ПМИД  22758212.
  3. ^ Андерсон, IC; Кэрни, JWG (2007). «Эктомикоризные грибы: исследование мицелиального рубежа». FEMS Microbiology Reviews . 31 (4): 388–406. doi : 10.1111/j.1574-6976.2007.00073.x . PMID  17466031.
  4. ^ ab Högberg, MN; Högberg, P. (2002). «Экстраматричный эктомикоризный мицелий обеспечивает треть микробной биомассы и производит вместе с ассоциированными корнями половину растворенного органического углерода в лесной почве». New Phytologist . 154 (3): 791–795. doi : 10.1046/j.1469-8137.2002.00417.x . PMID  33873454.
  5. ^ Селоссе, Массачусетс; Ричард, Ф.; Он, Х.; Симард, SW (2006). «Микоризные сети: опасные связи?». Экология и эволюция . 21 (11): 621–8. дои : 10.1016/j.tree.2006.07.003. ПМИД  16843567.
  6. ^ ab Поллиерер, ММ; Лангель, Р.; Кёрнер, К.; Мараун, М.; Шой, С. (2007). «Недооцененная важность подземного поступления углерода для пищевых цепей животных в лесной почве». Ecology Letters . 10 (8): 729–36. Bibcode : 2007EcolL..10..729P. doi : 10.1111/j.1461-0248.2007.01064.x. PMID  17594428.
  7. ^ Агерер, Р. (2001). «Исследовательские типы эктомикоризы. Предложение классифицировать эктомикоризные мицелиальные системы в соответствии с их моделями дифференциации и предполагаемой экологической значимостью». Микориза . 11 (2): 107–114. doi :10.1007/s005720100108. S2CID  32170919.
  8. ^ Lilleskov, E. A; Hobbie, EA; Horton, TR (2011). «Сохранение эктомикоризных грибов: изучение связей между функциональными и таксономическими реакциями на антропогенное осаждение азота». Fungal Ecology . 4 (2): 174–183. doi :10.1016/j.funeco.2010.09.008.
  9. ^ Агерер, Р. (2006). «Грибные отношения и структурная идентичность их эктомикориз». Mycological Progress . 5 (2): 67–107. Bibcode :2006MycPr...5...67A. doi :10.1007/s11557-006-0505-x. S2CID  8708255.
  10. ^ Тедерсоо, Л.; Смит, М. Э. (2013). «Пересмотр линий эктомикоризных грибов: стратегии добычи пропитания и новые линии, выявленные с помощью последовательностей из-под земли». Fungal Biology Reviews . 27 (3–4): 83–99. doi : 10.1016/j.fbr.2013.09.001 .
  11. ^ Genney, DR; Anderson, IC; Alexander, IJ (2006). «Мелкомасштабное распределение эктомикориз сосны и их экстраматричного мицелия». The New Phytologist . 170 (2): 381–90. doi :10.1111/j.1469-8137.2006.01669.x. PMID  16608462.
  12. ^ Линдаль, Б. Д.; Ирмарк, К.; Боберг, Дж.; Трумбор, С. Э .; Хегберг, П.; Стенлид, Дж.; Финлей, РД (2007). «Пространственное разделение разложения подстилки и поглощения микоризного азота в бореальном лесу» (PDF) . New Phytologist . 173 (3): 611–20. doi : 10.1111/j.1469-8137.2006.01936.x . PMID  17244056.
  13. ^ Ландеверт, Р.; Лифланг, П.; Кайпер, Т.В.; Хоффланд, Э.; Рослинг, А.; Вернарс, К.; Смит, Э. (2003). «Молекулярная идентификация эктомикоризного мицелия в почвенных горизонтах». Прикладная и экологическая микробиология . 69 (1): 327–333. Bibcode :2003ApEnM..69..327L. doi :10.1128/aem.69.1.327-333.2003. PMC 152382 . PMID  12514012. 
  14. ^ Cairney, JWG (1992). «Транслокация растворенных веществ в эктомикоризных и сапротрофных ризоморфах». Mycological Research . 96 (2): 135–141. doi :10.1016/S0953-7562(09)80928-3.
  15. ^ Пей, К. Г.; Кеннеди, ПГ; Брунс, ТД (2011). «Переосмысление эктомикоризной сукцессии: являются ли плотность корней и типы исследования гиф движущими силами пространственной и временной зональности?». Fungal Ecology . 4 (3): 233–240. doi :10.1016/j.funeco.2010.09.010.
  16. ^ Weigt, RB; Raidl, S.; Verma, R.; Agerer, R. (2011). «Исследование стандартных значений экстраматричного мицелия, специфичных для определенного типа – шаг к количественной оценке эктомикоризного пространства и биомассы в естественной почве». Mycological Progress . 11 (1): 287–297. doi :10.1007/s11557-011-0750-5. S2CID  14235478.
  17. ^ Talbot, JM; Allison, SD; Treseder, KK (2008). «Деструкторы под прикрытием: микоризные грибы как регуляторы динамики почвенного углерода в экосистемах при глобальных изменениях». Functional Ecology . 22 (6): 955–963. Bibcode : 2008FuEco..22..955T. doi : 10.1111/j.1365-2435.2008.01402.x .
  18. ^ Рыгевич, ПТ; Андерсен, К.П. (1994). «Микоризы изменяют качество и количество углерода, выделяемого под землей». Nature . 369 (6475): 58–60. Bibcode :1994Natur.369...58R. doi :10.1038/369058a0. S2CID  4251533.
  19. ^ Хасселквист, Нью-Джерси; Варгас, Р.; Аллен, МФ (2009). «Использование технологии зондирования почвы для изучения взаимодействий и контроля между ростом эктомикоризы и факторами окружающей среды в динамике CO2 в почве». Растения и почва . 331 (1–2): 17–29. doi : 10.1007/s11104-009-0183-y .
  20. ^ Хайнемейер, Андреас; Хартли, Иэн П.; Эванс, Сэм П.; Каррейра Де Ла Фуэнте, Хосе А.; Инесон, Фил (2007). «Поток CO2 в лесной почве: раскрытие вклада и экологических реакций эктомикориз». Global Change Biology . 13 (8): 1786–1797. Bibcode : 2007GCBio..13.1786H. doi : 10.1111/j.1365-2486.2007.01383.x. ISSN  1354-1013. S2CID  85738888.
  21. ^ Рослинг, А.; Линдаль, Б. Д.; Финлей, Р. Д. (2004). «Распределение углерода в эктомикоризных корнях и мицелии, колонизирующих различные минеральные субстраты». New Phytologist . 162 (3): 795–802. doi : 10.1111/j.1469-8137.2004.01080.x . PMID  33873765.
  22. ^ Wu, B.; Nara, K.; Hogetsu, T. (2002). «Пространственно-временной перенос фотосинтата, меченного углеродом-14, из эктомикоризных проростков Pinus densiflora в экстракорневой мицелий». Mycorrhiza . 12 (2): 83–88. Bibcode :2002Mycor..12...83W. doi :10.1007/s00572-001-0157-2. PMID  12035731. S2CID  23784199.
  23. ^ Франссон, PMA; Андерсон, IC; Александр, IJ (2007). «Эктомикоризные грибы в культуре по-разному реагируют на повышенную доступность углерода». Microbiology Ecology . 61 (1): 246–57. Bibcode :2007FEMME..61..246F. doi :10.1111/j.1574-6941.2007.00343.x. PMID  17578526. S2CID  41149539.
  24. ^ Сан, YP; Унестам, T.; Лукас, SD; Йохансон, KJ; Кенне, L.; Финлей, R. (1999). «Экссудация-реабсорбция в микоризном грибе, динамический интерфейс для взаимодействия с почвой и почвенными микроорганизмами». Mycorrhiza . 9 (3): 137–144. Bibcode :1999Mycor...9..137S. doi :10.1007/s005720050298. S2CID  20770499.
  25. ^ Койде, РТ; Фернандес, КВ; Пиплз, М.С. (2011). «Может ли эктомикоризная колонизация корней Pinus resinosa повлиять на их разложение?». New Phytologist . 191 (2): 508–14. doi :10.1111/j.1469-8137.2011.03694.x. PMID  21418224.
  26. ^ abc Selosse, MA; Richard, F.; He, X.; Simard, SW (2006). «Микоризные сети: опасные связи?». Trends in Ecology & Evolution . 21 (11): 621–8. doi :10.1016/j.tree.2006.07.003. PMID  16843567.
  27. ^ Шен, Гоцзин; Чжан, Цзинсюн; Лей, Юньтин; Сюй, Юйсин; У, Цзяньцян (22 мая 2023 г.). «Межстанционная сигнализация». Ежегодный обзор биологии растений . 74 : 367–386. doi : 10.1146/annurev-arplant-070122-015430 . ISSN  1545-2123. ПМИД  36626804.
  28. ^ Бабикова, Зденка; Джонсон, Дэвид; Брюс, Тоби; Пикетт, Джон; Гилберт, Люси (январь 2014 г.). «Подземные союзники: как и почему мицелиальные сети помогают растениям защищать себя? Каковы приспособленность, регуляторные и практические последствия защитной сигнализации между растениями через общие мицелиальные сети?». BioEssays: Новости и обзоры в области молекулярной, клеточной и эволюционной биологии . 36 (1): 21–26. doi :10.1002/bies.201300092. ISSN  1521-1878. PMID  24129903.
  29. ^ Barto, EK; Hilker, M.; Müller, F.; Mohney, BK; Weidenhamer, JD; Rillig, MC (2011). «Грибковая скоростная полоса: общие микоризные сети расширяют биоактивные зоны аллелохимикатов в почвах». PLOS ONE . 6 (11): e27195. Bibcode : 2011PLoSO...627195B. doi : 10.1371/journal.pone.0027195 . PMC 3215695. PMID  22110615 . 
  30. ^ Парниске, Мартин (октябрь 2008 г.). «Арбускулярная микориза: мать эндосимбиозов корней растений». Nature Reviews Microbiology . 6 (10): 763–775. doi :10.1038/nrmicro1987. ISSN  1740-1534. PMID  18794914.
  31. ^ Authier, Louise; Violle, Cyrille; Richard, Franck (2022). «Эктомикоризные сети в антропоцене: от природных экосистем до городского планирования». Frontiers in Plant Science . 13. doi : 10.3389/fpls.2022.900231 . ISSN  1664-462X. PMC 9280895 . 
  32. ^ Trocha, LK, LK; Mucha, J.; Eissenstat, DM; Reich, PB; Oleksyn, J. (2010). «Эктомикоризная идентичность определяет дыхание и концентрацию азота и неструктурных углеводов в кончиках корней: тест с использованием саженцев Pinus sylvestris и Quercus robur». Физиология деревьев . 30 (5): 648–54. doi : 10.1093/treephys/tpq014 . PMID  20304781.
  33. ^ Берджесс, Техас; Малайчук, Н.; Гроув, Т.С. (1993). «Способность 16 эктомикоризных грибов увеличивать рост и поглощение фосфора Eucalyptus globulus Labill. и E. diversicolor F. Muell». Растение и почва . 153 (2): 155–164. Бибкод : 1993PlSoi.153..155B. дои : 10.1007/BF00012988. S2CID  23440665.
  34. ^ Wallander, H.; Nylund, JE (1992). «Влияние избыточного азотного и фосфорного голодания на внематриксный мицелий эктомикоризы Pinus sylvestris L.» New Phytologist . 120 (4): 495–503. doi : 10.1111/j.1469-8137.1992.tb01798.x .
  35. ^ Hogberg, P.; Hogberg, MN; Quist, ME; Ekblad, A.; Nasholm, T. (1999). «Фракционирование изотопов азота во время поглощения азота эктомикоризной и немикоризной Pinus sylvestris». New Phytologist . 142 (3): 569–576. doi :10.1046/j.1469-8137.1999.00404.x.
  36. ^ Хобби, EA; Агерер, Р. (2009). «Изотопы азота в эктомикоризных спорокарпах соответствуют подземным типам разведки». Растения и почва . 327 (1–2): 71–83. doi :10.1007/s11104-009-0032-z. S2CID  6205464.
  37. ^ ab Cairney, JW G (2012). «Экстраматричные мицелии эктомикоризных грибов как модераторы динамики углерода в лесной почве». Soil Biology and Biochemistry . 47 : 198–208. doi : 10.1016/j.soilbio.2011.12.029.
  38. ^ Weigt, RB; Raidl, S.; Verma, R.; Agerer, R. (2011). «Исследование стандартных значений экстраматричного мицелия, специфичных для определенного типа – шаг к количественной оценке эктомикоризного пространства и биомассы в естественной почве». Mycological Progress . 11 (1): 287–297. doi :10.1007/s11557-011-0750-5. S2CID  14235478.