stringtranslate.com

Эукариотическая трансляция

Эукариотическая трансляция — это биологический процесс, посредством которого информационная РНК транслируется в белки у эукариот . Он состоит из четырех фаз: инициация, удлинение, терминация и повторная запись.

Инициация

Процесс инициации трансляции у эукариот.

Инициация трансляции — это процесс, посредством которого рибосома и связанные с ней факторы связываются с мРНК и собираются в стартовом кодоне. Этот процесс определяется как кэп-зависимый, при котором рибосома изначально связывается с 5'-кэпом, а затем перемещается к стоп-кодону, или как кэп-независимый, при котором рибосома изначально не связывается с 5'-кэпом.

Инициирование, зависящее от крышки

некоторые из белковых комплексов, участвующих в инициации

Инициация трансляции обычно включает взаимодействие определенных ключевых белков, факторов инициации , со специальным тегом, связанным с 5'-концом молекулы мРНК, 5' кэпом , а также с 5' UTR . Эти белки связывают малую (40S) рибосомальную субъединицу и удерживают мРНК на месте. [1]

eIF3 связан с 40S рибосомной субъединицей и играет роль в предотвращении преждевременного связывания большой (60S) рибосомной субъединицы. eIF3 также взаимодействует с комплексом eIF4F , который состоит из трех других факторов инициации: eIF4A , eIF4E и eIF4G . eIF4G — это белок-строительный каркас, который напрямую связывается как с eIF3, так и с двумя другими компонентами. eIF4E — это белок, связывающий кэп. Связывание кэпа eIF4E часто считается этапом, ограничивающим скорость кэп-зависимой инициации, а концентрация eIF4E является регуляторным звеном трансляционного контроля. Некоторые вирусы расщепляют часть eIF4G, которая связывает eIF4E, тем самым предотвращая кэп-зависимую трансляцию, чтобы захватить аппарат хозяина в пользу вирусных (кэп-независимых) сообщений. eIF4A — это АТФ-зависимая РНК-хеликаза, которая помогает рибосоме, разрешая определенные вторичные структуры, образованные вдоль транскрипта мРНК. [2] Поли (А)-связывающий белок (PABP) также ассоциируется с комплексом eIF4F через eIF4G и связывает поли-А-хвост большинства эукариотических молекул мРНК. Этот белок участвует в кольцевании мРНК во время трансляции. [3]

Этот комплекс преинициации 43S (43S PIC) в сопровождении белковых факторов движется по цепи мРНК к ее 3'-концу в процессе, известном как «сканирование», чтобы достичь стартового кодона (обычно AUG). У эукариот и архей аминокислота , кодируемая стартовым кодоном, — метионин . Заряженная метионином инициирующая тРНК (Met-тРНК i Met ) переносится в P-сайт малой рибосомальной субъединицы эукариотическим фактором инициации 2 (eIF2) . Он гидролизует ГТФ и подает сигнал для диссоциации нескольких факторов из малой рибосомальной субъединицы, что в конечном итоге приводит к ассоциации большой субъединицы (или субъединицы 60S ). Затем полная рибосома ( 80S ) начинает удлинение трансляции.

Регуляция синтеза белка частично зависит от фосфорилирования eIF2 (через α-субъединицу), которая является частью тройного комплекса eIF2-GTP-Met-tRNA i Met (eIF2-TC). Когда фосфорилируется большое количество eIF2, синтез белка подавляется. Это происходит при аминокислотном голодании или после вирусной инфекции. Однако небольшая часть этого фактора инициации естественным образом фосфорилируется. Другим регулятором является 4EBP , который связывается с фактором инициации eIF4E и ингибирует его взаимодействие с eIF4G , тем самым предотвращая зависимую от кэпа инициацию. Чтобы противостоять эффектам 4EBP, факторы роста фосфорилируют 4EBP, снижая его сродство к eIF4E и разрешая синтез белка. [ необходима цитата ]

В то время как синтез белка глобально регулируется путем модуляции экспрессии ключевых факторов инициации, а также количества рибосом, отдельные мРНК могут иметь разные скорости трансляции из-за наличия элементов регуляторной последовательности. Было показано, что это важно в различных условиях, включая мейоз дрожжей и реакцию этилена у растений. Кроме того, недавние исследования дрожжей и людей показывают, что эволюционное расхождение в цис-регуляторных последовательностях может влиять на регуляцию трансляции. [4] Кроме того, РНК- хеликазы , такие как DHX29 и Ded1/DDX3, могут участвовать в процессе инициации трансляции, особенно для мРНК со структурированными 5'UTR. [5]

Инициирование, не зависящее от крышки

Наиболее изученный пример инициации кэп-независимой трансляции у эукариот использует внутренний сайт входа рибосомы (IRES). В отличие от кэп-зависимой трансляции, кэп-независимая трансляция не требует 5'-кэпа для инициации сканирования от 5'-конца мРНК до стартового кодона. Рибосома может локализоваться в стартовом сайте путем прямого связывания, факторов инициации и/или ITAF (транс-действующих факторов IRES), минуя необходимость сканирования всего 5'-UTR . Этот метод трансляции важен в условиях, требующих трансляции определенных мРНК во время клеточного стресса, когда общая трансляция снижена. Примерами являются факторы, реагирующие на апоптоз и стресс-индуцированные ответы. [6]

Удлинение

Этапы удлинения и нацеливания на мембрану эукариотической трансляции. Рибосома зеленая и желтая, тРНК темно-синие, а другие задействованные белки светло-голубые

Удлинение зависит от эукариотических факторов удлинения . В конце этапа инициации мРНК располагается таким образом, что следующий кодон может быть транслирован во время этапа удлинения синтеза белка. Инициирующая тРНК занимает сайт P в рибосоме , а сайт A готов принять аминоацил-тРНК. Во время удлинения цепи каждая дополнительная аминокислота добавляется к зарождающейся полипептидной цепи в трехшаговом микроцикле. Шаги в этом микроцикле: (1) позиционирование правильной аминоацил-тРНК в сайте A рибосомы, которая переносится в этот сайт с помощью eEF1, (2) формирование пептидной связи и (3) сдвиг мРНК на один кодон относительно рибосомы с помощью eEF2. В отличие от бактерий, у которых инициация трансляции происходит сразу после синтеза 5'-конца мРНК, у эукариот такая тесная связь между транскрипцией и трансляцией невозможна, поскольку транскрипция и трансляция осуществляются в отдельных отсеках клетки (ядре и цитоплазме ) . Эукариотические предшественники мРНК должны быть обработаны в ядре (например, кэпирование, полиаденилирование , сплайсинг) в рибосомах, прежде чем они будут экспортированы в цитоплазму для трансляции. На трансляцию также может влиять рибосомная пауза , которая может вызвать эндонуклеолитическую атаку тРНК, процесс, называемый распадом мРНК без перехода. Рибосомная пауза также способствует котрансляционному сворачиванию зарождающегося полипептида на рибосоме и задерживает трансляцию белка, пока он кодирует тРНК. Это может вызвать сдвиг рамки считывания рибосом. [7]

Прекращение

Прекращение удлинения зависит от эукариотических факторов высвобождения . Процесс похож на бактериальное прекращение , но в отличие от бактериального прекращения, существует универсальный фактор высвобождения , eRF1, который распознает все три стоп-кодона. После прекращения рибосома разбирается и высвобождается готовый полипептид. eRF3 — это рибосомозависимая ГТФаза, которая помогает eRF1 высвобождать готовый полипептид. Человеческий геном кодирует несколько генов, стоп-кодон мРНК которых на удивление текуч: в этих генах прекращение трансляции неэффективно из-за особых оснований РНК в непосредственной близости от стоп-кодона. Текучая терминация в этих генах приводит к трансляционному прочтению до 10% стоп-кодонов этих генов. Некоторые из этих генов кодируют функциональные домены белка в своем расширении считывания, так что могут возникать новые изоформы белка . Этот процесс был назван «функциональным трансляционным прочтением». [8]

Регулирование и изменение перевода

Трансляция является одним из основных потребителей энергии в клетках, поэтому она строго регулируется. Развились многочисленные механизмы, которые контролируют и регулируют трансляцию как у эукариот, так и у прокариот . Регулирование трансляции может влиять на глобальную скорость синтеза белка, которая тесно связана с метаболическим и пролиферативным состоянием клетки. Чтобы глубже изучить этот сложный процесс, ученые обычно используют метод, известный как профилирование рибосом. [9] Этот метод позволяет исследователям сделать снимок транслатома, показывающий, какие части мРНК транслируются в белки рибосомами в данный момент времени. Профилирование рибосом дает ценную информацию о динамике трансляции, раскрывая сложное взаимодействие между последовательностью генов, структурой мРНК и регуляцией трансляции. Расширяя эту концепцию, более недавней разработкой является профилирование рибосом отдельных клеток, метод, который позволяет нам изучать процесс трансляции с разрешением отдельных клеток. [10] Профилирование рибосом отдельных клеток может пролить свет на гетерогенную природу клеток, что приведет к более тонкому пониманию того, как регуляция трансляции может влиять на поведение клеток, метаболическое состояние и реакцию на различные стимулы или условия.

Замена аминокислот

В некоторых клетках некоторые аминокислоты могут быть истощены и, таким образом, повлиять на эффективность трансляции. Например, активированные Т-клетки секретируют интерферон-γ , который вызывает внутриклеточный дефицит триптофана путем повышения регуляции фермента индоламин 2,3-диоксигеназы 1 (IDO1). Удивительно, но, несмотря на истощение триптофана , внутрирамочный синтез белка продолжается через кодоны триптофана . Это достигается путем включения фенилаланина вместо триптофана. Полученные пептиды называются «заместителями» W>F. Такие заместители W>F широко распространены при определенных типах рака и связаны с повышенной экспрессией IDO1. Функционально заместители W>F могут нарушать активность белка . [11]

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ Malys N, McCarthy JE (март 2011 г.). «Инициация трансляции: можно ожидать изменений в механизме». Cellular and Molecular Life Sciences . 68 (6): 991–1003. doi :10.1007/s00018-010-0588-z. PMC  11115079 . PMID  21076851. S2CID  31720000.
  2. ^ Hellen CU, Sarnow P (июль 2001 г.). «Внутренние сайты входа рибосомы в эукариотические молекулы мРНК». Genes & Development . 15 (13): 1593–612. doi : 10.1101/gad.891101 . PMID  11445534.
  3. ^ Wells SE, Hillner PE, Vale RD, Sachs AB (июль 1998 г.). «Циркуляризация мРНК эукариотическими факторами инициации трансляции». Molecular Cell . 2 (1): 135–40. doi : 10.1016/S1097-2765(00)80122-7 . PMID  9702200.
  4. ^ Cenik C, Cenik ES, Byeon GW, Grubert F, Candille SI, Spacek D, Alsallakh B, Tilgner H, Araya CL, Tang H, Ricci E, Snyder MP (ноябрь 2015 г.). «Интегральный анализ уровней РНК, трансляции и белка выявляет различные регуляторные вариации у людей». Genome Research . 25 (11): 1610–21. doi :10.1101/gr.193342.115. PMC 4617958 . PMID  26297486. 
  5. ^ Писарева В.П., Писарев А.В., Комар А.А., Хеллен С.У., Пестова Т.В. (декабрь 2008 г.). «Инициация трансляции мРНК млекопитающих со структурированными 5'UTR требует белка DExH-бокса DHX29». Клетка . 135 (7): 1237–50. дои : 10.1016/j.cell.2008.10.037. ПМЦ 2948571 . ПМИД  19109895. 
  6. ^ Лопес-Ластра М., Ривас А., Баррия М.И. (2005). «Синтез белка у эукариот: растущая биологическая значимость кэп-независимой инициации трансляции». Biological Research . 38 (2–3): 121–46. doi : 10.4067/s0716-97602005000200003 . PMID  16238092.
  7. ^ Buchan JR, Stansfield I (сентябрь 2007 г.). «Остановка клеточной производственной линии: ответы на рибосомальную паузу во время трансляции». Biology of the Cell . 99 (9): 475–87. doi : 10.1042/BC20070037 . PMID  17696878.
  8. ^ Schueren F, Thoms S (август 2016 г.). «Функциональное трансляционное прочтение: перспектива системной биологии». PLOS Genetics . 12 (8): e1006196. doi : 10.1371/JOURNAL.PGEN.1006196 . PMC 4973966. PMID  27490485 . 
  9. ^ Ingolia NT, Ghaemmaghami S, Newman JR, Weissman JS (апрель 2009 г.). «Геномный анализ in vivo трансляции с разрешением нуклеотидов с использованием профилирования рибосом». Science . 324 (5924): 218–23. Bibcode :2009Sci...324..218I. doi :10.1126/science.1168978. PMC 2746483 . PMID  19213877. 
  10. ^ Ozadam H, Tonn T, Han CM, Segura A, Hoskins I, Rao S; et al. (2023). «Количественная оценка занятости рибосом в отдельных клетках на ранних стадиях развития мыши». Nature . 618 (7967): 1057–1064. Bibcode :2023Natur.618.1057O. doi :10.1038/s41586-023-06228-9. PMC 10307641 . PMID  37344592. {{cite journal}}: CS1 maint: несколько имен: список авторов ( ссылка )
  11. ^ Патаскар, Абиджит; Шампань, Жюльен; Нагель, Ремко; Кенски, Джулиана; Лаос, Маарья; Мишо, Жюстин; Пак, Хуэй Сонг; Блейервельд, Онно Б.; Морденте, Келли; Наварро, Жасмин Монтенегро; Бломмарт, Наоми (24.03.2022). «Истощение триптофана приводит к замене триптофана на фенилаланин». Nature . 603 (7902): 721–727. Bibcode :2022Natur.603..721P. doi :10.1038/s41586-022-04499-2. ISSN  0028-0836. PMC 8942854 . PMID  35264796. 

Внешние ссылки