Катионные липосомы представляют собой сферические структуры, содержащие положительно заряженные липиды . Катионные липосомы могут иметь размер от 40 нм до 500 нм и могут иметь либо один липидный бислой (моноламеллярные), либо несколько липидных бислоев (мультиламеллярные). [1] Положительный заряд фосфолипидов позволяет катионным липосомам образовывать комплексы с отрицательно заряженными нуклеиновыми кислотами ( ДНК , мРНК и siRNA ) посредством ионных взаимодействий. При взаимодействии с нуклеиновыми кислотами катионные липосомы образуют кластеры агрегированных везикул. [2] Эти взаимодействия позволяют катионным липосомам конденсировать и инкапсулировать различные терапевтические и диагностические агенты в их водном отсеке или в их липидном бислое. [3] [4] Эти комплексы катионных липосом-нуклеиновых кислот также называются липоплексами . Из-за общего положительного заряда катионных липосом они взаимодействуют с отрицательно заряженными клеточными мембранами легче, чем классические липосомы. [3] Этот положительный заряд также может создавать некоторые проблемы in vivo , такие как связывание с белками плазмы в кровотоке, что приводит к опсонизации. [5] Эти проблемы можно уменьшить, оптимизировав физические и химические свойства катионных липосом через их липидный состав. [5] Катионные липосомы все чаще исследуются для использования в качестве векторов доставки в генной терапии из-за их способности эффективно трансфицировать клетки. [3] [4] Распространенным применением катионных липосом является доставка противораковых препаратов. [3]
В 1960-х годах Алек Д. Бэнгхэм открыл липосомы как концентрические липидные бислои, окружающие водный центр, на основе своих исследований в Институте Бабрахама при Кембриджском университете. [6] [7] Первые формулы были разработаны с использованием полностью натуральных липидов . [6] В 1987 году Филипп Фелгнер опубликовал первый подход к использованию катионных липидов для трансфекции ДНК в клетки, [8] основанный на его исследованиях катионных липидов в Syntex с 1982 по 1988 год. [9] Фелгнер представил первый катионный липид, используемый для доставки генов, N- [1-(2,3-диолеилокси)пропил] -N , N , N -триметиламмонийхлорид (DOTMA). [10]
Использование катионных липидов помогает повысить общую стабильность и эффективность липосом. Хотя катионные липиды сами по себе способны инкапсулировать нуклеиновые кислоты в липосомы, эффективность трансфекции низкая из-за процесса, известного как эндосомальный выход. Липиды, способные дестабилизировать эндосомальные мембраны и облегчать эндосомальный выход, известны как фузогенные липиды. Добавление вспомогательных липидов к катионным липидам демонстрирует гораздо более высокую эффективность трансфекции. [3]
Катионные липосомы с более высокой эффективностью трансфекции состоят из катионного фосфолипида и нескольких нейтральных вспомогательных липидов. Обычно используемый катионный фосфолипид — это DOTMA, а обычно используемый фузогенный вспомогательный липид — это диолеоил фосфатидилэтаноламин (DOPE). Парой обычно используемых нейтральных вспомогательных липидов являются холестерин и полиэтиленгликоль (PEG) -липид. [3] Все эти компоненты биосовместимы и биоразлагаемы в организме человека, что делает катионные липосомы полезным вектором доставки генов. [6]
Поскольку каждый из фосфолипидов имеет гидрофобный хвост и гидрофильную головную группу, они способны образовывать липидный бислой с гидрофильными головками, обращенными наружу, и гидрофобными хвостами, обращенными внутрь. Добавление ДОФЭ в дополнение к ДОТМА способствует эндосомальному выходу нуклеиновых кислот в цитозоль, когда катионный липид сливается с эндосомальной мембраной. [3] Добавление холестерина помогает стабилизировать липосому и более эффективно инкапсулировать нуклеиновые кислоты. Регулирование структуры и гибкости липидного бислоя с помощью холестерина позволяет более плотную сборку фосфолипидов. [5] ПЭГ-липид связывается с внешней поверхностью липосомы, действуя как защитный слой и уменьшая образование белковой короны. [3] Наличие ПЭГ на поверхности липосомы резко увеличивает время циркуляции крови катионных липосом. [5] [6]
Катионные липосомы производятся аналогично липосомам . Существует множество процессов, которые можно использовать для формирования катионных липосом, таких как обработка ультразвуком , экструзия и вортексирование . Однако сдвигающие силы, связанные с этими методами, способны повредить нуклеиновые кислоты до инкапсуляции. Микрофлюидика — это область, которая в настоящее время изучается с целью формирования катионных липосом без сдвигающих сил и повреждений, связанных с текущими методами. [11]
Катионные липосомы могут доставлять нуклеиновые кислоты в клетку через эндоцитозный путь или через слияние клеточных мембран. [3] [12] Фузогенные катионные липосомы почти исключительно доставляют нуклеиновые кислоты через слияние клеточных мембран. [3] Слияние между положительно заряженными катионными липосомами и отрицательно заряженными клеточными поверхностями эффективно доставляет ДНК непосредственно через плазматическую мембрану . Этот процесс обходит эндосомально - лизосомальный путь, что приводит к деградации анионных липосомальных формул. [13] Катионные липосомы в ламеллярной фазе доставляют нуклеиновые кислоты через эндоцитоз , в частности, клатрин-опосредованный эндоцитоз (CME), кавеол-опосредованный эндоцитоз (CavME) и макропиноцитоз. [3]
После введения in vivo катионные липосомы биоразлагаемы из-за наличия эндогенных ферментов, которые могут переваривать липиды. [14]
Паклитаксел (PTX) — это химиотерапевтический препарат, используемый для лечения многих видов рака, таких как рак яичников, рак молочной железы и рак поджелудочной железы. [7] PTX действует путем ингибирования роста эндотелиальных клеток опухоли, однако у него есть проблемы с доставкой in vivo, вызванные его неблагоприятными фармакокинетическими и физическими свойствами. Исследования показали, что у некоторых пациентов, принимающих PTX, возникают побочные реакции, такие как нефротоксичность и нейротоксичность. [7] [15]
EndoTAG-1 от SynCore Bio — это катионная липосомальная формула со встроенным PTX. Катионный липид, используемый в этой формуле, — это диолеоилоксипропилтриметиламмоний (DOTAP). [16] Катионная липосома со встроенным PTX взаимодействует с отрицательно заряженными эндотелиальными клетками опухоли, необходимыми для ангиогенеза опухоли , чтобы уменьшить их кровоснабжение. [7] [16] Благодаря этому механизму EndoTAG-1 способен предотвращать ангиогенез в опухоли, что, в свою очередь, подавляет рост опухоли. [16] EndoTAG-1 в настоящее время проходит фазу III клинических испытаний и специально нацелен на аденокарциному поджелудочной железы при использовании в сочетании с гемцитабином . [17]
Было показано, что положительный заряд катионных липидов оказывает цитотоксическое действие, поскольку эти липиды могут активировать несколько проапоптотических и провоспалительных сигнальных путей клеток . [10] Катионная природа этих липидов связана со структурой головной группы. [10] В частности, было обнаружено, что головные группы четвертичного аммония некоторых катионных липидов (например, DOTMA) более цитотоксичны, чем головные группы пептидов других катионных липидов. [10] Этот цитотоксический эффект можно уменьшить путем добавления ПЭГ на поверхность катионной липосомы. [3] [5] [6]
При внутривенном введении катионные липосомы могут вызывать опсонизацию, которая является иммунным ответом, возникающим, когда опсонины помечают чужеродные патогены, которые должны быть устранены посредством фагоцитоза. [3] [18] Благодаря своему положительному заряду катионные липосомы связываются с различными белками плазмы , образуя белковую корону на своей поверхности и полностью изменяя их биологическую идентичность. [3] Эта новая биологическая идентичность затем заставляет опсонины помечать их как патогены и способствует очистке посредством фагоцитарного клиренса. [3]
{{cite journal}}
: Цитировать журнал требует |journal=
( помощь )