stringtranslate.com

Эктомикоризный внематричный мицелий

Эктомикоризы и внематричный мицелий на короткие расстояния

Эктомикоризный экстраматрический мицелий (также известный как экстрарадикальный мицелий) представляет собой скопление нитчатых грибных гиф , исходящих из эктомикоризы . Он может состоять из тонких гидрофильных гиф, которые часто разветвляются, чтобы исследовать и использовать почвенный матрикс , или могут объединяться с образованием ризоморфов ; высокодифференцированные гидрофобные устойчивые транспортные структуры.

Характеристики

Эктомикориза на корнях Picea glauca , окруженных внематричным мицелием

Обзор

Помимо микоризы , первичным вегетативным тельцем эктомикоризных грибов является внематричный мицелий. Это место сбора минералов , [1] производства ферментов , [2] и ключевого средства колонизации новых кончиков корней. [3] Экстраматричный мицелий облегчает перемещение углерода в ризосферу , [4] перемещает углерод и питательные вещества между хозяевами [5] и является важным источником пищи для беспозвоночных . [6]

Тип исследования

Характер роста мицелия, степень накопления биомассы, а также наличие или отсутствие ризоморфов используются для классификации грибов по типу исследования. Агерер впервые предложил обозначение типов разведки в 2001 году [7] , и с тех пор эта концепция широко используется в исследованиях экологии эктомикоризы . Общепризнанными являются четыре типа разведки: контактная, ближняя, средняя и дальняя.

Контактно -разведочные типы обладают преимущественно гладкой мантией и лишены ризоморф с эктомикоризами, находящимися в тесном контакте с окружающим субстратом . У типов разведки на короткие расстояния также отсутствуют ризоморфы, но мантия окружена частыми выступами гиф, которые отходят на небольшое расстояние в окружающий субстрат. В эту группу входит большинство эктомикоризных аскомицетов .

Типы разведки на средние расстояния подразделяются на три подтипа, определяемые диапазоном роста и дифференциацией его ризоморфов. Fringe на среднем расстоянии образуют взаимосвязанные сети гиф с ризоморфами, которые неоднократно делятся и сливаются. Типы Mat на средней дистанции образуют плотные гифальные маты, которые собираются в однородную массу. Наконец, подтип Medium-distance Smooth имеет ризоморфы с гладкими мантиями и краями.

Клетки грибных гиф 1 – Стенка гифы 2 – Перегородка 3 – Митохондрия 4 – Вакуоль 5 – Кристалл эргостерина 6 – Рибосома 7 – Ядро 8 – Эндоплазматический ретикулум 9 – Липидное тело 10 – Плазматическая мембрана 11 – Шпитценкёрпер/кончик роста и везикулы 12 – Аппарат Гольджи

Типы дальней разведки сильно дифференцированы, образуя ризоморфы, содержащие полые сосудоподобные транспортные трубки. Типы с дальними расстояниями связаны с повышенным уровнем поглощения органического азота по сравнению с другими типами разведки и считаются менее конкурентоспособными в нарушенных системах в отличие от типов с короткими расстояниями, которые способны более эффективно восстанавливаться после нарушения . [8]

Тип исследования в первую очередь соответствует определенной линии . Однако некоторые роды грибов, содержащие большое количество видов , имеют большое разнообразие внематрической морфологии гиф и, как известно, содержат более одного исследовательского типа. [9] Из-за этого сложно экстраполировать тип исследования на виды, известные только по происхождению. [10] Часто грибы не вписываются в определенный тип исследования, вместо этого падая по градиенту. Тип исследования также не учитывает другие аспекты морфологии гиф, такие как степень проникновения гиф в более глубокие горизонты почвы . [11]

Полевые исследования показали, что внематричный мицелий с большей вероятностью размножается в минеральных почвах, чем в органическом материале , и может особенно отсутствовать в свежем листовом опаде . [12] Однако присутствие разных эктомикоризных групп в разных горизонтах почвы позволяет предположить, что разные группы развили специализированное разделение ниш , возможно, связанное с типом исследования. [13]

Экологические последствия

Общественное собрание

Плодовые тела эктомикоризной лаккарии в лесном сообществе

Поскольку эктомикоризы небольшие и имеют ограниченную площадь контакта с окружающей почвой, наличие внематрических гиф значительно увеличивает площадь поверхности , контактирующей с окружающей средой. Увеличение площади поверхности означает больший доступ к необходимым источникам питательных веществ. Кроме того, присутствие ризоморфов или тяжей мицелия может действовать аналогично тканям ксилемы у растений, где полые трубки гиф сосудов переносят воду и растворенные питательные вещества на большие расстояния. [14] Обилие и пространственное распределение кончиков корней хозяина в ризосфере является важным фактором, опосредующим сборку эктомикоризного сообщества . Плотность корней позволяет выбирать типы исследования, наиболее подходящие для данного расстояния между корнями. В сосновых системах грибы, демонстрирующие типы исследования на коротких расстояниях, менее способны колонизировать новые корни, расположенные далеко от микоризы, а типы с дальними расстояниями доминируют в областях с низкой плотностью корней. И наоборот, виды разведки на короткие расстояния, как правило, доминируют в районах с высокой плотностью корней, где снижение расхода углерода делает их более конкурентоспособными, чем виды, занимающиеся разведкой на большие расстояния. [15] Рост экстраматрического мицелия оказывает прямое влияние на мутуалистическую торговлю питательными веществами между эктомикоризными грибами и их хозяевами. Повышенное заселение почвы гифами позволяет грибу лучше использовать воду и питательные вещества, которые в противном случае были бы недоступны корням растений, и более эффективно транспортировать эти ресурсы обратно к растению. И наоборот, повышенные затраты на распределение углерода, связанные с поддержкой грибкового партнера с обширной мицелиальной системой, ставят ряд вопросов, связанных с затратами и преимуществами эктомикоризного мутуализма. [16]

Углеродный велосипед

Хотя есть свидетельства того, что некоторые виды микоризных грибов могут получать по крайней мере часть своего углерода посредством сапротрофного питания , [17] большая часть приобретения микоризного углерода происходит путем обмена на продукты фотосинтеза, полученные от хозяина . Микоризные системы представляют собой основной поглотитель углерода . Лабораторные исследования предсказывают, что около 23% углерода растительного происхождения выделяется в экстраметрический мицелий [18] , хотя, по оценкам, 15-30% этого углерода теряется в результате дыхания грибов. [19] [20] Распределение углерода во внематрическом мицелии распределяется неравномерно в зависимости от таксонов грибов, наличия питательных веществ и возраста связанных с ними микориз. [21] [22] Большая часть углерода, выделенного во внематричный мицелий, накапливается в виде грибной биомассы , составляя примерно одну треть от общей микробной биомассы и половину общего растворенного органического углерода в некоторых лесных почвах. [4] Углерод также поддерживает производство спорокарпов и склероций , причем различные таксоны по-разному инвестируют в эти структуры, а не в пролиферацию внематрического мицелия. Приобретение углерода также идет на образование грибковых экссудатов. Внематричные гифы выделяют в почвенный матрикс ряд соединений, на которые приходится до 40% общего использования углерода. [23] Эти экссудаты выделяются в основном на фронте роста и используются в таких функциях, как минерализация и гомеостаз . [24]

Многие исследователи пытались спрогнозировать роль, которую экстраматрический мицелий может играть в секвестрации углерода . Хотя оценки продолжительности жизни отдельных эктомикориз очень значительны, оборот обычно учитывается в месяцах.

Cortinarius ектомикоризы и внематричный мицелий на корнях Pseudotsuga menziesii

После смерти наличие эктомикоризы на кончиках корней может увеличить скорость разложения корней для некоторых таксонов грибов . [25] Помимо гибели растения-хозяина и круговорота микоризы, на скорость секвестрации углерода могут также влиять нарушения в почве, которые приводят к отделению участков внематричного мицелия от растения-хозяина. Такие нарушения, например, вызванные уничтожением животных, беспозвоночными -микофагами или разрушением среды обитания , могут оказать заметное влияние на темпы текучести кадров. Эти переменные затрудняют оценку скорости оборота микоризной биомассы в лесных почвах и относительного вклада экстраматрического мицелия в секвестрацию углерода.

Мицелиальные сети

Наличие экстраматрических гиф на больших расстояниях может повлиять на здоровье леса за счет образования общих мицелиальных сетей, в которых между растениями-хозяевами образуются гифальные связи, расположенные между корневыми клетками хозяина, которые могут облегчить перенос углерода и питательных веществ между хозяевами. [26] В то время как общие мицелиальные сети (CMN) обеспечивают межрастительный обмен углерода, главным образом, между фотосинтезирующими растениями, ряд нефотосинтезирующих растений также адаптировались к участию в переносе углерода через CMN. Обширное распространение сети за пределами корней растения позволяет гифам гриба поставлять минеральные питательные вещества растению-хозяину в обмен на углерод. [26]

Помимо облегчения переноса питательных веществ, CMN выполняют несколько других функций, включая сложную передачу сигналов и связь между растениями. [27] CMN передают предупреждающие признаки атак патогенов между растениями и позволяют вновь развившимся корням быстро заселяться полностью функционирующим грибным мицелием. [28] CMN соединяют многие растения, и вызванные стрессом сигналы передаются от пораженного стрессом растения к другим, активируя защитные реакции. Эти предупреждающие сигналы исходят от самого растения и доходят до корней растения. От корней сигналы попадают в микоризные грибы и проходят через сеть, передавая предупреждения другим растениям, подключенным к сети. Мицелиальные сети также могут быть ответственны за облегчение транспортировки аллелопатических химических веществ от растения-поставщика непосредственно в ризосферу других растений. [29] Эктомикоризные грибы увеличивают первичную продукцию растений-хозяев, оказывая мультитрофическое воздействие. Таким образом, внематричный мицелий важен для поддержания почвенных пищевых сетей , [6] являясь важным источником питания для беспозвоночных и микроорганизмов , а также для общей конкуренции и разнообразия растений.

Хотя CMN обеспечивают взаимовыгодные связи между растениями посредством передачи питательных веществ и предупреждений об обороне, эти сети также могут привести к неравным отношениям между растениями, в которых одно получает выгоду за счет другого. В CMN, совместно используемом двумя растениями, возможно, что одно растение получает больше питательных веществ из сети или поставляет неодинаковое количество углерода взаимным грибковым гифам, в результате чего этот вид растений использует сеть и получает больше, чем другой. Следовательно, другому заводу будет хуже из-за того, что CMN подключит его к эксплуатирующему заводу. [26]

Существует два типа микоризных сетей. Большинство растений связано с арбускулярными микоризными грибами (АМФ). АМФ способны образовывать симбиозы с несколькими видами растений и соединяться с корнями разных хозяев, обеспечивая ЦМН. Сети мицелия функционируют посредством сигналов, которые сначала вырабатываются в растениях, затем перемещаются к корням, а затем мигрируют в АМФ. Затем сигналы проходят через поверхность растения, где их можно транспортировать к листьям или другим органам. Клетки реагируют на эти сигналы, образуя трубчатую структуру при подготовке к образованию грибных гиф. [30] Мицелий AMF может связывать множество растений на больших территориях.

Второй тип — эктомикоризные сети (ЭКМ). Грибы ЕСМ чрезвычайно разнообразны, что приводит к различному поведению по отношению к своим растениям-хозяевам. По сравнению с АМФ, ВКМ более разнообразны и формируются преимущественно на деревьях. ЕСМ обеспечивают питательные вещества для растений и деревьев, прерывая лесогенетический цикл во время созревания. Поскольку ECM различаются в зависимости от дерева, вырубка и заготовка деревьев показали сокращение грибкового сообщества ECM. Таким образом, создание имитаций ЭЦМ в искусственных экосистемах может стать решением для проектирования городских зеленых насаждений. [31]

Доступ к минералам

Производство ферментов

Ферментативная активность эктомикоризных грибов сильно различается у разных видов. Эти различия коррелируют с типом исследования (особенно с наличием или отсутствием ризоморфов), а не с линией происхождения или ассоциацией хозяина, что позволяет предположить, что сходная морфология экстрарадикального мицелия является примером конвергентной эволюции . [2] Различия в ферментативной активности и, следовательно, в способности разлагать органические соединения диктуют доступ грибов к питательным веществам, что имеет самые разнообразные экологические последствия.

Фосфор

Поскольку различные таксоны эктомикоризных грибов сильно различаются по своей метаболической активности [32], они также часто различаются по своей способности обменивать питательные вещества со своими хозяевами. [33] Приобретение фосфора микоризными грибами и последующая передача его растению-хозяину считается одной из основных функций эктомикоризного симбиоза. Экстраматрический мицелий является местом сбора фосфора в почвенной системе. Эта связь настолько сильна, что, как известно, голодающие по фосфору растения-хозяева в десять раз увеличивают рост внематричного мицелия. [34]

Азот

Недавно изотопные исследования были использованы для изучения относительного обмена между эктомикоризными грибами и растениями-хозяевами, а также для оценки относительной важности типа исследования для способности обмена питательными веществами. Значения 15 N повышены у эктомикоризных грибов и снижены у грибов-хозяев в результате обмена питательными веществами. [35] Известно, что виды грибов исследовательского типа, производящие большее количество экстрарадикального мицелия, накапливают большее количество 15 N [2] [36] как в кончиках корней, так и в плодовых телах, и этот феномен частично объясняется более высокими уровнями круговорота N внутри этих видов.

Методы оценки

Мицелий Amanita phalloides

Определить продолжительность жизни внематричного мицелия сложно: оценки варьируются от нескольких месяцев до нескольких лет. Скорость оборота оценивается различными способами, включая прямое наблюдение и датирование по 14 C. Такие оценки являются важной переменной при расчете вклада эктомикоризных грибов в секвестрацию углерода . [37] Чтобы отличить эктомикоризный мицелий от мицелия сапротрофных грибов , оценки биомассы часто выполняются с помощью анализа эргостерина или фосфолипидов жирных кислот или с использованием мешков с песком, которых сапротрофные грибы, вероятно, избегают, поскольку им не хватает органических веществ. иметь значение . [37] Подробная морфологическая характеристика разведочного типа определена для более чем 550 различных видов эктомикориз и собрана на сайте www. сомнительный. де. Из-за сложности классификации типов исследования промежуточных форм были предложены другие показатели для квалификации и количественной оценки роста внематочного мицелия, включая удельную фактическую/потенциальную занятость пространства мицелием и удельную экстраматрическую длину мицелия [38] , которые пытаются объяснить вклады плотности мицелия , площади поверхности и общей биомассы .

Рекомендации

  1. ^ Ландеверт Р., Хоффланд Э., Финли Р.Д., Кайпер Т.В., ван Бримен Н. (2001). «Связывание растений с камнями: эктомикоризные грибы мобилизуют питательные вещества из минералов». Тенденции в экологии и эволюции . 16 (5): 248–254. дои : 10.1016/S0169-5347(01)02122-X. ПМИД  11301154.
  2. ^ abc Тедерсоо, Лехо; Наадель, Триин; Бахрам, Мохаммед; Притч, Карин; Бюггер, Франц; Леаль, Мигель; Кылялг, Урмас; Пылдмаа, Кадри (2012). «Ферментативная активность и структура стабильных изотопов эктомикоризных грибов в связи с филогенией и типами исследований в тропических тропических лесах». Новый фитолог . 195 (4): 832–843. дои : 10.1111/j.1469-8137.2012.04217.x . ISSN  0028-646X. ПМИД  22758212.
  3. ^ Андерсон, IC; Кэрни, JWG (2007). «Эктомикоризные грибы: исследование границ мицелия». Обзоры микробиологии FEMS . 31 (4): 388–406. дои : 10.1111/j.1574-6976.2007.00073.x . ПМИД  17466031.
  4. ^ Аб Хёгберг, Миннесота; Хёгберг, П. (2002). «Внематричный эктомикоризный мицелий составляет одну треть микробной биомассы и вместе со связанными корнями производит половину растворенного органического углерода в лесной почве». Новый фитолог . 154 (3): 791–795. дои : 10.1046/j.1469-8137.2002.00417.x . ПМИД  33873454.
  5. ^ Селоссе, Массачусетс; Ричард, Ф.; Он, Х.; Симард, SW (2006). «Микоризные сети: опасные связи?». Экология и эволюция . 21 (11): 621–8. дои : 10.1016/j.tree.2006.07.003. ПМИД  16843567.
  6. ^ аб Поллиерер, ММ; Лангель, Р.; Кернер, К.; Мараун, М.; Шой, С. (2007). «Недооцененная важность поступления подземного углерода в пищевые сети лесных почвенных животных». Экологические письма . 10 (8): 729–36. Бибкод : 2007EcolL..10..729P. дои : 10.1111/j.1461-0248.2007.01064.x. ПМИД  17594428.
  7. ^ Агерер, Р. (2001). «Исследование типов эктомикориз. Предложение классифицировать эктомикоризные мицелиальные системы в соответствии с их характером дифференциации и предполагаемой экологической значимостью». Микориза . 11 (2): 107–114. дои : 10.1007/s005720100108. S2CID  32170919.
  8. ^ Лиллесков, Е.А.; Хобби, Э.А.; Хортон, TR (2011). «Сохранение эктомикоризных грибов: изучение связей между функциональными и таксономическими реакциями на антропогенное осаждение азота». Грибная экология . 4 (2): 174–183. doi : 10.1016/j.funeco.2010.09.008.
  9. ^ Агерер, Р. (2006). «Грибные взаимоотношения и структурная идентичность их эктомикориз». Микологический прогресс . 5 (2): 67–107. Бибкод : 2006MycPr...5...67A. дои : 10.1007/s11557-006-0505-x. S2CID  8708255.
  10. ^ Тедерсоо, Л.; Смит, МЭ (2013). «Возвращение к линиям эктомикоризных грибов: стратегии добывания пищи и новые линии, выявленные с помощью последовательностей из-под земли». Обзоры грибковой биологии . 27 (3–4): 83–99. дои : 10.1016/j.fbr.2013.09.001 .
  11. ^ Дженни, ДР; Андерсон, IC; Александр, IJ (2006). «Мелкомасштабное распространение сосновых эктомикориз и их внематрического мицелия». Новый фитолог . 170 (2): 381–90. дои : 10.1111/j.1469-8137.2006.01669.x. ПМИД  16608462.
  12. ^ Линдал, Б.Д.; Ихмарк, К.; Боберг, Дж.; Трамбор, SE ; Хёгберг, П.; Стенлид, Дж.; Финли, Р.Д. (2007). «Пространственное разделение разложения подстилки и поглощения азота микоризой в бореальном лесу» (PDF) . Новый фитолог . 173 (3): 611–20. дои : 10.1111/j.1469-8137.2006.01936.x . ПМИД  17244056.
  13. ^ Ландеверт, Р.; Лифланг, П.; Кайпер, ТВ; Хоффланд, Э.; Рослинг, А.; Вернарс, К.; Смит, Э. (2003). «Молекулярная идентификация эктомикоризного мицелия в почвенных горизонтах». Прикладная и экологическая микробиология . 69 (1): 327–33. Бибкод : 2003ApEnM..69..327L. дои : 10.1128/aem.69.1.327-333.2003. ПМЦ 152382 . ПМИД  12514012. 
  14. ^ Кэрни, JWG (1992). «Транслокация растворенных веществ у эктомикоризных и сапротрофных ризоморфов». Микологические исследования . 96 (2): 135–141. дои : 10.1016/S0953-7562(09)80928-3.
  15. ^ Пей, КГ; Кеннеди, PG; Брунс, ТД (2011). «Переосмысление эктомикоризной последовательности: являются ли плотность корней и типы исследования гиф движущими силами пространственной и временной зональности?». Грибная экология . 4 (3): 233–240. дои : 10.1016/j.funeco.2010.09.010.
  16. ^ Вейгт, РБ; Райдл, С.; Верма, Р.; Агерер, Р. (2011). «Изучение стандартных значений экстраматрического мицелия для конкретного типа - шаг на пути к количественной оценке эктомикоризного пространства и биомассы в естественной почве». Микологический прогресс . 11 (1): 287–297. дои : 10.1007/s11557-011-0750-5. S2CID  14235478.
  17. ^ Талбот, Дж. М.; Эллисон, SD; Треседер, К.К. (2008). «Скрытые разрушители: микоризные грибы как регуляторы динамики почвенного углерода в экосистемах в условиях глобальных изменений». Функциональная экология . 22 (6): 955–963. Бибкод : 2008FuEco..22..955T. дои : 10.1111/j.1365-2435.2008.01402.x .
  18. ^ Рыгеевич, PT; Андерсен, КП (1994). «Микоризы изменяют качество и количество углерода, выделяемого под землей». Природа . 369 (6475): 58–60. Бибкод : 1994Natur.369...58R. дои : 10.1038/369058a0. S2CID  4251533.
  19. ^ Хассельквист, Нью-Джерси; Варгас, Р.; Аллен, МФ (2009). «Использование технологии зондирования почвы для изучения взаимодействия и контроля между эктомикоризным ростом и факторами окружающей среды, влияющими на динамику CO2 в почве». Растение и почва . 331 (1–2): 17–29. дои : 10.1007/s11104-009-0183-y .
  20. ^ Хайнемейер, Андреас; Хартли, Иэн П.; Эванс, Сэм П.; Каррейра Де Ла Фуэнте, Хосе А.; Инесон, Фил (2007). «Поток CO2 в лесной почве: выявление вклада и реакции эктомикоризы на окружающую среду». Биология глобальных изменений . 13 (8): 1786–1797. Бибкод : 2007GCBio..13.1786H. дои : 10.1111/j.1365-2486.2007.01383.x. ISSN  1354-1013. S2CID  85738888.
  21. ^ Рослинг, А.; Линдал, Б.Д.; Финли, Р.Д. (2004). «Распределение углерода в эктомикоризных корнях и мицелии, колонизирующем различные минеральные субстраты». Новый фитолог . 162 (3): 795–802. дои : 10.1111/j.1469-8137.2004.01080.x . ПМИД  33873765.
  22. ^ Ву, Б.; Нара, К.; Хогецу, Т. (2002). «Пространственно-временной перенос фотосинтата, меченного углеродом-14, из эктомикоризных сеянцев Pinus densiflora в экстрарадикальный мицелий». Микориза . 12 (2): 83–88. Бибкод : 2002Mycor..12...83W. дои : 10.1007/s00572-001-0157-2. PMID  12035731. S2CID  23784199.
  23. ^ Франссон, PMA; Андерсон, IC; Александр, IJ (2007). «Эктомикоризные грибы в культуре по-разному реагируют на повышенную доступность углерода». Микробиология Экология . 61 (1): 246–57. Бибкод : 2007FEMME..61..246F. дои : 10.1111/j.1574-6941.2007.00343.x. PMID  17578526. S2CID  41149539.
  24. ^ Солнце, Ю.П.; Унестам, Т.; Лукас, SD; Йохансон, К.Дж.; Кенне, Л.; Финли, Р. (1999). «Экссудация-реабсорбция у микоризного гриба, динамический интерфейс взаимодействия с почвой и почвенными микроорганизмами». Микориза . 9 (3): 137–144. Бибкод : 1999Mycor...9..137S. дои : 10.1007/s005720050298. S2CID  20770499.
  25. ^ Койде, RT; Фернандес, CW; Народы, М.С. (2011). «Может ли эктомикоризная колонизация корней Pinus reminosa повлиять на их разложение?». Новый фитолог . 191 (2): 508–14. дои : 10.1111/j.1469-8137.2011.03694.x. ПМИД  21418224.
  26. ^ abc Селоссе, Массачусетс; Ричард, Ф.; Он, Х.; Симард, SW (2006). «Микоризные сети: опасные связи?». Тенденции в экологии и эволюции . 21 (11): 621–8. дои : 10.1016/j.tree.2006.07.003. ПМИД  16843567.
  27. ^ Шен, Гоцзин; Чжан, Цзинсюн; Лей, Юньтин; Сюй, Юйсин; У, Цзяньцян (22 мая 2023 г.). «Межстанционная сигнализация». Ежегодный обзор биологии растений . 74 : 367–386. doi : 10.1146/annurev-arplant-070122-015430 . ISSN  1545-2123. ПМИД  36626804.
  28. ^ Бабикова, Зденка; Джонсон, Дэвид; Брюс, Тоби; Пикетт, Джон; Гилберт, Люси (январь 2014 г.). «Подземные союзники: как и почему мицелиальные сети помогают растениям защищаться?: Каковы пригодность, нормативное и практическое значение защитной передачи сигналов между растениями через общие мицелиальные сети?». BioEssays: Новости и обзоры молекулярной, клеточной биологии и биологии развития . 36 (1): 21–26. doi :10.1002/bies.201300092. ISSN  1521-1878. ПМИД  24129903.
  29. ^ Барто, ЕК; Хилкер, М.; Мюллер, Ф.; Мони, Британская Колумбия; Вайденхамер, доктор медицинских наук; Риллиг, MC (2011). «Грибная дорога: обычные микоризные сети расширяют биоактивные зоны аллелохимикатов в почвах». ПЛОС ОДИН . 6 (11): e27195. Бибкод : 2011PLoSO...627195B. дои : 10.1371/journal.pone.0027195 . ПМК 3215695 . ПМИД  22110615. 
  30. ^ Парниске, Мартин (октябрь 2008 г.). «Арбускулярная микориза: мать эндосимбиозов корней растений». Обзоры природы Микробиология . 6 (10): 763–775. doi : 10.1038/nrmicro1987. ISSN  1740-1534. ПМИД  18794914.
  31. ^ Отье, Луиза; Виолле, Сирилл; Ричард, Франк (2022). «Эктомикоризные сети в антропоцене: от природных экосистем к городскому планированию». Границы в науке о растениях . 13 . дои : 10.3389/fpls.2022.900231 . ISSN  1664-462X. ПМЦ 9280895 . 
  32. ^ Троча, ЛК, ЛК; Муха, Дж.; Эйсенштат, DM; Райх, ПБ; Олексин, Ю. (2010). «Принадлежность эктомикоризы определяет дыхание и концентрацию азота и неструктурных углеводов в кончиках корней: тест с использованием саженцев Pinus sylvestris и Quercus robur». Физиология дерева . 30 (5): 648–54. doi : 10.1093/treephys/tpq014 . ПМИД  20304781.
  33. ^ Берджесс, Техас; Малайчук, Н.; Гроув, Т.С. (1993). «Способность 16 эктомикоризных грибов увеличивать рост и поглощение фосфора Eucalyptus globulus Labill. и E. diversicolor F. Muell». Растение и почва . 153 (2): 155–164. Бибкод : 1993PlSoi.153..155B. дои : 10.1007/BF00012988. S2CID  23440665.
  34. ^ Валландер, Х.; Нюлунд, Дж. Э. (1992). «Влияние избыточного азотного и фосфорного голодания на внематричный мицелий эктомикоризы Pinus sylvestris L». Новый фитолог . 120 (4): 495–503. дои : 10.1111/j.1469-8137.1992.tb01798.x .
  35. ^ Хогберг, П.; Хогберг, Миннесота; Квист, Мэн; Экблад, А.; Нашолм, Т. (1999). «Фракционирование изотопов азота при поглощении азота эктомикоризными и немикоризными Pinus sylvestris». Новый фитолог . 142 (3): 569–576. дои : 10.1046/j.1469-8137.1999.00404.x.
  36. ^ Хобби, Э.А.; Агерер, Р. (2009). «Изотопы азота в эктомикоризных спорокарпиях соответствуют типам подземных исследований». Растение и почва . 327 (1–2): 71–83. doi : 10.1007/s11104-009-0032-z. S2CID  6205464.
  37. ^ аб Кэрни, JW G (2012). «Экстраматрический мицелий эктомикоризных грибов как модераторы динамики углерода в лесной почве». Биология и биохимия почвы . 47 : 198–208. doi :10.1016/j.soilbio.2011.12.029.
  38. ^ Вейгт, РБ; Райдл, С.; Верма, Р.; Агерер, Р. (2011). «Изучение стандартных значений экстраматрического мицелия для конкретного типа - шаг на пути к количественной оценке эктомикоризного пространства и биомассы в естественной почве». Микологический прогресс . 11 (1): 287–297. дои : 10.1007/s11557-011-0750-5. S2CID  14235478.