stringtranslate.com

Жидкостно-силовая микроскопия

Жидкостно-силовая микроскопия ( FluidFM ) — это разновидность сканирующей зондовой микроскопии , которая обычно используется на стандартном инвертированном световом микроскопе .

Уникальной особенностью FluidFM является то, что он вводит микроскопические каналы в зонды АСМ . Эти каналы могут иметь апертуру менее 300 нм, или в 500 раз тоньше человеческого волоса . Эти нанометрические характеристики позволяют обрабатывать объемы жидкостей в масштабе фемтолитров (фл), а также осуществлять силовые манипуляции субмикронными объектами. С помощью нанофлюидных каналов вещества могут, например, вводиться в отдельные клетки или клетки могут быть изолированы от конфлюэнтного слоя.

Технологии

Специальные микропипетки и нанопипетки используются в качестве зондов FluidFM с отверстиями от 300 нм до 8 мкм. Больший диаметр полезен для экспериментов по адгезии отдельных клеток, тогда как меньший диаметр обеспечивает хорошие возможности для нанолитографии и обработки субмикронных объектов. По сравнению с традиционными стеклянными микропипетками зонды FluidFM гораздо более щадящие для мягких образцов, таких как клетки. Их можно контролировать с точностью pN и нм, и они обрабатывают объемы более точно и последовательно благодаря процессу изготовления на основе пластин. FluidFM имеет уникальные преимущества для приложений с отдельными клетками и за их пределами.

Для управления объемами в диапазоне фл FluidFM использует управление давлением. Используется либо избыточное давление, либо вакуум, в зависимости от применения. Типичные рабочие давления находятся в диапазоне нескольких гПа .

Технология FluidFM обычно используется поверх инвертированного микроскопа. В дополнение к стандартным экспериментам АСМ , FluidFM обеспечивает возможность выполнения бесчисленного множества других приложений, таких как инъекция отдельных клеток и адгезия, а также нанолитография и точечный анализ.

Приложения

Инъекция отдельных клеток является важным инструментом для естественных наук, биологии и медицины. Для проведения экспериментов по инъекции отдельных клеток зонд прокалывает клетку, и вещество может быть введено. С FluidFM вероятность успеха составляет почти 100%, в отличие от других методов, поскольку зонды маленькие, острые и чувствительные к силе. [1] [2]

Отдельная клетка может быть изолирована либо из адгезивной, даже конфлюэнтной клеточной культуры , либо из клеточной суспензии. Затем изолированная клетка может быть проанализирована с помощью известных методов для отдельных клеток или использована для выращивания новой колонии. FluidFM использовался для изоляции клеток млекопитающих , дрожжей и бактерий . [3] [4] [5]

Измеряя адгезию отдельных клеток, можно получить важную информацию для различных тем в биологии и материаловедении. С FluidFM можно увеличить скорость проведения этих экспериментов и даже оценить адгезию распластанных клеток. Интересующая клетка обратимо прикрепляется к зонду путем приложения пониженного давления. Поднимая зонд, можно измерить силу адгезии с разрешением в пиконах. [6] [7] [8]

Метод проведения эксперимента по адгезии отдельных бактерий такой же, как и для отдельных клеток. Он дает информацию о том, как бактериальные клетки взаимодействуют со своей поверхностью и друг с другом. [9]

Коллоидные эксперименты дают возможность измерять силы взаимодействия между коллоидными частицами и поверхностями, а также локальную эластичность сложных субстратов. Скорость, с которой могут быть выполнены эти эксперименты, довольно низкая, поскольку обычно коллоиды должны быть предварительно приклеены к зонду АСМ. Напротив, коллоидные зонды могут быть обратимо прикреплены к зонду FluidFM с помощью пониженного давления. Таким образом, один зонд может быть использован для многих экспериментов и многих коллоидов. [8] [10]

Нанолитография — это процесс травления, записи или печати структур в диапазоне нанометров. Небольшие количества жидкостей могут быть дозированы через кончик зонда. С FluidFM дозированные объемы составляют от субфл до многих пиколитров. FluidFM работает как в воздухе, так и в жидкости. [11] [12]

Spotting — это процесс печати пятен и массивов высокой плотности в диапазоне от нанометра до одного микрометра. Можно печатать практически любую жидкость. Напечатанные частицы могут быть, например, олигонуклеотидами, белками, ДНК, вирионами или бактериальными клонами. Пятна создаются, когда нанопипетка соприкасается с поверхностью, и вещество высвобождается из зонда с помощью короткого импульса давления. [12] [13]

Ссылки

  1. ^ 2013. О. Гийом - Жантиль, Э. Поттхофф, Д. Оссола, П. Дёриг, Т. Замбелли и Дж. А. Ворхольт. Управляемая силой инъекция жидкости в ядра отдельных клеток. Малый, 9 (11), 1904 – 1907. doi :10.1002/ smll.201202276
  2. ^ 2009. A. Meister, M. Gabi, P. Behr, P. Studer, J. Vörös, P. Niedermann, J. Bitterli, J. Polesel - Maris, M. Liley, H. Heinzelmann & T. Zambelli. FluidFM: Объединение атомно-силовой микроскопии и нанофлюидики в универсальной системе доставки жидкости для приложений с отдельными клетками и не только. Nano Letters, 9 (6), 2501 – 2507. doi :10.1021/ nl901384x
  3. ^ 2014 O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli & JA Vorholt. Изоляция отдельных клеток млекопитающих из адгезивных культур с помощью жидкостной силовой микроскопии. Лаборатория на чипе, 14(2), 402–14. doi :10.1039/c3lc51174j
  4. ^ 2010. P. Dörig, P. Stiefel, P. Behr, E. Sarajlic, D. Bijl, M. Gabi, J. Vörös, JA Vorholt & T. Zambelli. Силовое пространственное манипулирование жизнеспособными клетками млекопитающих и микроорганизмами с помощью технологии FluidFM. Applied Physics Letters, 97(2), 023701 1–3. doi :10.1063/1.3462979
  5. ^ 2013. P. Stiefel, T. Zambelli & JA Vorholt. Изоляция оптически нацеленных одиночных бактерий путем применения жидкостной силовой микроскопии к аэробным аноксигенным фототрофам из филлосферы. Прикладная и экологическая микробиология, 79(16), 4895–4905. doi :10.1128/AEM.01087-13
  6. ^ 2014. Э. Поттофф, Д. Франко, В. Д'Алессандро, К. Старк, В. Фальк, Т. Замбелли, Дж. А. Ворхольт, Д. Пуликакос и А. Феррари. На пути к рациональному дизайну текстур поверхности, способствующему эндотелизации. Nano Letters, 14 (2), 1069–1079. doi : 10.1021/nl4047398.
  7. ^ 2012. E. Potthoff, O. Guillaume - Gentil, D. Ossola, J. Polesel - Maris, S. LeibundGut - Landmann, T. Zambelli & JA Vorholt. Быстрая и серийная количественная оценка сил адгезии дрожжевых и млекопитающих клеток. PLoS ONE, 7 (12), e52712. doi :10.1371/journal.pone.0052712
  8. ^ ab 2013. P. Dörig, D. Ossola, AM Truong, M. Graf, F. Stauffer, J. Vörös & T. Zambelli. Сменные коллоидные зонды АСМ для количественной оценки необратимых и долгосрочных взаимодействий. Biophysical Journal, 105 (2), 463 – 472. doi :10.1016/j.bpj.2013.06.002
  9. ^ 2015. E. Potthoff, D. Ossola, T. Zambelli и JA Vorholt. Количественная оценка силы адгезии бактерий с помощью микроскопии силы жидкости. (2015) Nanoscale, 7 (9), 4070 – 4079. doi :10.1039/c4nr06495j
  10. ^ 2015. BR Simona, L. Hirt, L. Demkó, T. Zambelli, J. Vörös, M. Ehrbar & V. Milleret. Градиенты плотности на интерфейсах гидрогеля для улучшения проникновения в клетки. Biomater. Sci. doi :10.1039/C4BM00416G
  11. ^ 2013. RR Grüter, J. Vörös & T. Zambelli. FluidFM как инструмент литографии в жидкости: пространственно контролируемое осаждение флуоресцентных наночастиц. Nanoscale, 5 (3), 1097 – 104. doi :10.1039/c2nr33214k
  12. ^ ab 2014. H. Dermutz, RR Grüter, AM Truong, L. Demkó, J. Vörös & T. Zambelli. Локальная замена полимеров для нейронного паттернирования и наведения нейритов in situ. Langmuir: the ACS journal of surfaces and colloids, 30 (23), 7037 – 46. doi :10.1021/la5012692
  13. ^ 2009. A. Meister, J. Polesel - Maris, P. Niedermann, J. Przybylska, P. Studer, M. Gabi, P. Behr, T. Zambelli, M. Liley, J. Vörös & H. Heinzelmann. Наномасштабное дозирование в жидкой среде стрептавидина на биотин-функционализированной поверхности с использованием полых атомно-силовых микроскопических зондов. Microelectronic Engineering, 86( 4-6), 1481 – 1484. doi :10.1016/j.mee.2008.10.025