В химии , биохимии и фармакологии константа диссоциации ( KD ) — это особый тип константы равновесия , которая измеряет склонность более крупного объекта обратимо разделяться (диссоциировать) на более мелкие компоненты, например, когда комплекс распадается на составляющие его молекулы или когда соль распадается на составляющие ее ионы . Константа диссоциации является обратной величиной константы ассоциации . В частном случае солей константу диссоциации можно также назвать константой ионизации . [1] [2] Для общей реакции:
в котором комплекс распадается на x субъединиц A и y субъединиц B, константа диссоциации определяется как
где [A], [B] и [A x B y ] — равновесные концентрации A, B и комплекса A x B y соответственно.
Одной из причин популярности константы диссоциации в биохимии и фармакологии является то, что в часто встречающемся случае, когда x = y = 1, K D имеет простую физическую интерпретацию: когда [A] = K D , то [B] = [AB] или, что эквивалентно, . То есть, K D , имеющая размерность концентрации, равна концентрации свободного A, при которой половина всех молекул B связана с A. Эта простая интерпретация неприменима для более высоких значений x или y . Она также предполагает отсутствие конкурирующих реакций, хотя вывод может быть расширен, чтобы явно допустить и описать конкурентное связывание. [ необходима цитата ] Она полезна в качестве быстрого описания связывания вещества, так же как EC 50 и IC 50 описывают биологическую активность веществ.
Экспериментально концентрация молекулярного комплекса [AB] получается косвенно из измерения концентрации свободных молекул, либо [A], либо [B]. [3] В принципе, общие количества молекул [A] 0 и [B] 0, добавленных в реакцию, известны. Они разделяются на свободные и связанные компоненты в соответствии с принципом сохранения массы:
Чтобы отследить концентрацию комплекса [AB], подставляем концентрацию свободных молекул ([A] или [B]) в соответствующие уравнения сохранения по определению константы диссоциации:
Это дает концентрацию комплекса, связанную с концентрацией любой из свободных молекул
Многие биологические белки и ферменты могут обладать более чем одним сайтом связывания. [3] Обычно, когда лиганд L связывается с макромолекулой M , он может влиять на кинетику связывания других лигандов L, связывающихся с макромолекулой. Упрощенный механизм можно сформулировать, если сродство всех сайтов связывания можно считать независимым от числа лигандов, связанных с макромолекулой. Это справедливо для макромолекул, состоящих из более чем одной, в основном идентичных, субъединиц. Тогда можно предположить, что каждая из этих n субъединиц идентична, симметрична и что они обладают только одним сайтом связывания. Тогда концентрация связанных лигандов становится
В этом случае , но включает в себя все частично насыщенные формы макромолекулы:
где насыщение происходит ступенчато
Для вывода общего уравнения связывания функция насыщения определяется как частное от деления доли связанного лиганда на общее количество макромолекулы:
K′ n — это так называемые макроскопические или кажущиеся константы диссоциации, которые могут быть результатом нескольких индивидуальных реакций. Например, если макромолекула M имеет три сайта связывания, K′ 1 описывает лиганд, связанный с любым из трех сайтов связывания. В этом примере K′ 2 описывает две связанные молекулы, а K′ 3 — три молекулы, связанные с макромолекулой. Микроскопическая или индивидуальная константа диссоциации описывает равновесие лигандов, связывающихся с определенными сайтами связывания. Поскольку мы предполагаем идентичные сайты связывания без кооперативности, микроскопическая константа диссоциации должна быть одинаковой для каждого сайта связывания и может быть сокращена просто как K D . В нашем примере K′ 1 представляет собой объединение лиганда, связывающегося с любым из трех возможных сайтов связывания (I, II и III), отсюда три микроскопические константы диссоциации и три различных состояния комплекса лиганд–макромолекула. Для K′ 2 существует шесть различных микроскопических констант диссоциации (I–II, I–III, II–I, II–III, III–I, III–II), но только три различных состояния (неважно, связываете ли вы сначала карман I, а затем II или сначала II, а затем I). Для K′ 3 существует три различных константы диссоциации — существует только три возможности, какой карман заполняется последним (I, II или III) — и одно состояние (I–II–III).
Даже когда микроскопическая константа диссоциации одинакова для каждого отдельного события связывания, макроскопический результат ( K′ 1 , K′ 2 и K′ 3 ) не равен. Это можно понять интуитивно для нашего примера с тремя возможными сайтами связывания. K′ 1 описывает реакцию из одного состояния (лиганд не связан) в три состояния (один лиганд связан с любой из трех сторон связывания). Поэтому кажущаяся K′ 1 будет в три раза меньше индивидуальной K D . K′ 2 описывает реакцию из трех состояний (один лиганд связан) в три состояния (два лиганда связаны); следовательно, K′ 2 будет равна K D . K′ 3 описывает реакцию из трех состояний (два лиганда связаны) в одно состояние (три лиганда связаны); следовательно, кажущаяся константа диссоциации K′ 3 в три раза больше микроскопической константы диссоциации K D . Общее соотношение между обоими типами констант диссоциации для n участков связывания следующее:
Следовательно, отношение связанного лиганда к макромолекулам становится
где - биномиальный коэффициент . Тогда первое уравнение доказывается применением биномиального правила
Константа диссоциации обычно используется для описания сродства между лигандом (например, лекарством ) и белком ; то есть, насколько прочно лиганд связывается с определенным белком. Сродство лиганда и белка зависит от нековалентных межмолекулярных взаимодействий между двумя молекулами, таких как водородные связи , электростатические взаимодействия , гидрофобные и силы Ван-дер-Ваальса . Сродство также может зависеть от высоких концентраций других макромолекул, что вызывает макромолекулярное скопление . [4] [5]
Образование комплекса лиганд–белок можно описать двухстадийным процессом
соответствующая константа диссоциации определяется
где и представляют собой молярные концентрации белка, лиганда и комплекса белок-лиганд соответственно.
Константа диссоциации имеет молярные единицы (М) и соответствует концентрации лиганда , при которой половина белков занята в равновесии, [6] т. е. концентрации лиганда, при которой концентрация белка со связанным лигандом равна концентрации белка без связанного лиганда . Чем меньше константа диссоциации, тем прочнее связан лиганд или тем выше сродство между лигандом и белком. Например, лиганд с наномолярной (нМ) константой диссоциации связывается прочнее с определенным белком, чем лиганд с микромолярной (мкМ) константой диссоциации.
Суб-пикомолярные константы диссоциации в результате нековалентных связывающих взаимодействий между двумя молекулами редки. Тем не менее, есть некоторые важные исключения. Биотин и авидин связываются с константой диссоциации примерно 10−15 M = 1 фМ = 0,000001 нМ. [7] Белки -ингибиторы рибонуклеазы также могут связываться с рибонуклеазой с похожей аффинностью 10−15 M. [ 8]
Константа диссоциации для конкретного лиганд-белкового взаимодействия может меняться в зависимости от условий раствора (например, температуры , pH и концентрации соли). Влияние различных условий раствора заключается в эффективном изменении силы любых межмолекулярных взаимодействий, удерживающих вместе конкретный лиганд-белковый комплекс.
Лекарства могут вызывать вредные побочные эффекты посредством взаимодействия с белками, для взаимодействия с которыми они не предназначены или не разработаны. Поэтому многие фармацевтические исследования направлены на разработку лекарств, которые связываются только со своими целевыми белками (отрицательный дизайн) с высокой аффинностью (обычно 0,1–10 нМ) или на улучшение аффинности между конкретным лекарством и его целевым белком in vivo (положительный дизайн).
В конкретном случае связывания антител (Ab) с антигеном (Ag) термин « константа сродства» обычно относится к константе ассоциации.
Это химическое равновесие также является отношением констант скорости связывания ( k forward или k a ) и скорости связывания ( k back или k d ). Два антитела могут иметь одинаковое сродство, но одно может иметь как высокую константу скорости связывания, так и высокую константу скорости связывания, в то время как другое может иметь как низкую константу скорости связывания, так и низкую константу скорости связывания.
Для депротонирования кислот K известен как K a , константа диссоциации кислоты . Сильные кислоты, такие как серная или фосфорная кислота , имеют большие константы диссоциации; слабые кислоты, такие как уксусная кислота , имеют малые константы диссоциации.
Символ K a , используемый для константы диссоциации кислоты, может привести к путанице с константой ассоциации , и может потребоваться увидеть реакцию или выражение равновесия, чтобы понять, что имеется в виду.
Константы диссоциации кислот иногда выражаются через p K a , которая определяется как
Это обозначение встречается и в других контекстах; оно в основном используется для ковалентных диссоциаций (т. е. реакций, в которых образуются или разрываются химические связи), поскольку константы такой диссоциации могут сильно различаться.
Молекула может иметь несколько констант диссоциации кислоты. В связи с этим, то есть в зависимости от числа протонов, которые они могут отдать, мы определяем одноосновные , двухосновные и трехосновные кислоты . Первые (например, уксусная кислота или аммоний ) имеют только одну диссоциируемую группу, вторые (например, угольная кислота , бикарбонат , глицин ) имеют две диссоциируемые группы, а третьи (например, фосфорная кислота) имеют три диссоциируемые группы. В случае нескольких значений p K они обозначаются индексами: p K 1 , p K 2 , p K 3 и так далее. Для аминокислот константа p K 1 относится к ее карбоксильной (–COOH) группе, p K 2 относится к ее амино (–NH 2 ) группе, а p K 3 является значением p K ее боковой цепи .
Константа диссоциации воды обозначается K w :
Концентрация воды [H 2 O] по соглашению опущена, что означает, что значение K w отличается от значения K eq , которое было бы вычислено с использованием этой концентрации.
Значение K w меняется в зависимости от температуры, как показано в таблице ниже. Это изменение необходимо учитывать при выполнении точных измерений таких величин, как pH.