stringtranslate.com

экстракция ДНК

Первое выделение дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) было сделано в 1869 году Фридрихом Мишером . [1] Экстракция ДНК — это процесс выделения ДНК из клеток организма, выделенных из образца, обычно биологического образца, такого как кровь, слюна или ткань. Он включает в себя взлом клеток, удаление белков и других загрязнений, а также очистку ДНК от других клеточных компонентов. Очищенную ДНК затем можно использовать для дальнейших применений, таких как ПЦР , [2] секвенирование или клонирование . В настоящее время это рутинная процедура в молекулярной биологии или судебно-медицинской экспертизе.

Этот процесс можно осуществить несколькими способами, в зависимости от типа образца и последующего применения. [3] Наиболее распространенными методами являются: механический, химический и ферментативный лизис, осаждение, очистка и концентрирование. Конкретный метод, используемый для извлечения ДНК, такой как фенол-хлороформная экстракция, осаждение спиртом или очистка на основе диоксида кремния. [4]

При использовании химического метода для экстракции используется множество различных наборов, и выбор правильного из них сэкономит время на оптимизации набора и процедурах экстракции. Считается, что определение чувствительности ПЦР показывает различия между коммерческими наборами. [5]

Существует множество различных методов извлечения ДНК, но некоторые общие этапы включают в себя:

  1. Лизис: Этот шаг включает в себя раскрытие клеток для высвобождения ДНК. Например, в случае бактериальных клеток можно использовать раствор детергента и соли (например, SDS ) для разрушения клеточной мембраны и высвобождения ДНК. Для растительных и животных клеток часто используют механические или ферментативные методы.
  2. Осаждение: как только ДНК высвобождается, белки и другие загрязнения необходимо удалить. Обычно это делается путем добавления осаждающего агента, такого как спирт (например, этанол или изопропанол) или соль (например, ацетат аммония ). ДНК сформирует осадок на дне раствора, а загрязнения останутся в жидкости.
  3. Очистка: После осаждения ДНК ее обычно дополнительно очищают с помощью колоночных методов. Например, для связывания ДНК можно использовать спин-колонки на основе диоксида кремния, при этом загрязнения смываются. Альтернативно, для очистки ДНК можно использовать этап центрифугирования , направляя ее на дно пробирки.
  4. Концентрация. Наконец, количество присутствующей ДНК обычно увеличивается за счет удаления оставшейся жидкости. Обычно это делается с помощью вакуумного центрифугирования или этапа лиофилизации (сушки вымораживанием).

Стоит отметить, что некоторые варианты этих шагов могут использоваться в зависимости от конкретного протокола выделения ДНК. Кроме того, на рынке имеются некоторые наборы, включающие реагенты и протоколы, специально разработанные для конкретного типа проб. [6]

Что это дает?

Экстракция ДНК часто является предварительным этапом во многих диагностических процедурах, используемых для идентификации вирусов и бактерий из окружающей среды, а также диагностики заболеваний и наследственных заболеваний. Эти методы включают, помимо прочего:

Метод флуоресцентной гибридизации in situ (FISH) был разработан в 1980-х годах. Основная идея состоит в том, чтобы использовать зонд нуклеиновой кислоты для гибридизации ядерной ДНК либо из интерфазных клеток, либо из метафазных хромосом, прикрепленных к предметному стеклу. Это молекулярный метод, используемый, среди прочего, для распознавания и подсчета определенных групп бактерий. [1]

Чтобы распознать, определить и количественно оценить географические и временные закономерности в сообществах морского бактериопланктона, исследователи используют метод, называемый полиморфизмом длины терминального рестрикционного фрагмента (T-RFLP).

Секвенирование: полные или частичные геномы и другие хромосомные компоненты, завершенные для сравнения с ранее опубликованными последовательностями.

[7]

Основная процедура

Клеточные и гистоновые белки, связанные с ДНК, можно удалить либо добавлением протеазы , либо осаждением белков ацетатом натрия или аммония , либо экстрагированием их смесью фенола и хлороформа перед осаждением ДНК.

После выделения ДНК растворяют в слабощелочном буфере, обычно в ТЕ-буфере , или в сверхчистой воде .

Общие химикаты

Наиболее распространенные химические вещества, используемые для выделения ДНК, включают:

  1. Моющие средства, такие как SDS или Tween-20, которые используются для вскрытия клеток и высвобождения ДНК.
  2. Ферменты-протеазы, такие как протеиназа К, которые используются для переваривания белков, которые могут связываться с ДНК.
  3. Фенол и хлороформ, которые используются для отделения ДНК от других клеточных компонентов.
  4. Этанол или изопропанол, которые используются для осаждения ДНК.
  5. Соль, например NaCl, которую часто используют для растворения ДНК и поддержания ее стабильности.
  6. ЭДТА, которая используется для хелатирования ионов металлов, которые могут повредить ДНК.
  7. Трис-HCL, который используется для поддержания оптимального уровня pH для экстракции ДНК.

Выбор метода

Некоторые из наиболее распространенных методов экстракции ДНК включают органическую экстракцию , экстракцию Chelex и твердофазную экстракцию . [8] Эти методы последовательно дают изолированную ДНК, но они различаются как по качеству, так и по количеству полученной ДНК. При выборе метода выделения ДНК необходимо учитывать множество факторов, включая стоимость, время, безопасность и риск загрязнения.

Органическая экстракция включает добавление инкубации в нескольких различных химических растворах; [8] включая стадию лизиса , фенол-хлороформную экстракцию, осаждение этанолом и стадии промывки. Органическую экстракцию часто используют в лабораториях, поскольку она дешева и дает большое количество чистой ДНК. Хотя это легко, требуется много шагов, и это занимает больше времени, чем другие методы. Это также предполагает неблагоприятное использование токсичных химикатов фенола и хлороформа , а также существует повышенный риск заражения из-за переноса ДНК между несколькими пробирками. [9] Несколько протоколов, основанных на органической экстракции ДНК, были эффективно разработаны десятилетия назад, [10] хотя в последние годы также были разработаны и опубликованы улучшенные и более практичные версии этих протоколов. [11]

Метод экстракции хелекса включает добавление смолы Chelex к образцу, кипячение раствора, затем его встряхивание и центрифугирование. Клеточные материалы связываются с гранулами Chelex, а ДНК доступна в супернатанте . [9] Метод Chelex намного быстрее и проще, чем органическая экстракция, и для него требуется только одна пробирка, что снижает риск загрязнения ДНК. К сожалению, экстракция Chelex не дает такого большого количества, и полученная ДНК является одноцепочечной, что означает, что ее можно использовать только для анализа на основе ПЦР , а не для ПДРФ . [9]

Твердофазная экстракция , например, с использованием метода экстракции на спин-колонке, использует тот факт, что ДНК связывается с кремнеземом . Образец, содержащий ДНК, добавляют в колонку, содержащую силикагель или шарики силикагеля и хаотропные соли. Хаотропные соли разрушают водородные связи между цепями и облегчают связывание ДНК с кремнеземом, заставляя нуклеиновые кислоты становиться гидрофобными. Это обнажает остатки фосфатов и делает их доступными для адсорбции. [12] ДНК связывается с диоксидом кремния, а остальная часть раствора вымывается этанолом для удаления хаотропных солей и других ненужных компонентов. [8] Затем ДНК можно регидратировать водными растворами с низким содержанием соли, что позволяет элюировать ДНК из шариков.

Этот метод позволяет получить высококачественную, в основном двухцепочечную ДНК, которую можно использовать как для ПЦР , так и для ПДРФ- анализа. Эта процедура может быть автоматизирована [9] и имеет высокую производительность, хотя и меньшую, чем фенол-хлороформный метод . Это одноэтапный метод, т.е. вся процедура выполняется в одной пробирке. Это снижает риск заражения, что делает его очень полезным для судебно-медицинской экспертизы ДНК. Различные коммерческие наборы для твердофазной экстракции производятся и продаются различными компаниями; единственная проблема в том, что они дороже, чем органическая экстракция или экстракция Chelex.

Специальные типы

Для выделения ДНК из некоторых образцов необходимо выбрать конкретные методы. Типичными образцами со сложным выделением ДНК являются:

Внехромосомную ДНК, как правило, легко выделить, особенно плазмиды можно легко выделить путем лизиса клеток с последующим осаждением белков, которое улавливает хромосомную ДНК в нерастворимой фракции, а после центрифугирования плазмидную ДНК можно очистить от растворимой фракции.

Экстракция ДНК Hirt — это выделение всей внехромосомной ДНК в клетке млекопитающего. Процесс экстракции Hirt избавляет от высокомолекулярной ядерной ДНК , оставляя только низкомолекулярную митохондриальную ДНК и любые вирусные эписомы, присутствующие в клетке.

Обнаружение ДНК

Индикатор дифениламин (ДФА) подтвердит наличие ДНК. Эта процедура включает химический гидролиз ДНК: при нагревании (например, ≥95 °C) в кислоте реакция требует сахара дезоксирибозы и, следовательно, специфична для ДНК. В этих условиях 2-дезоксирибоза превращается в w-гидроксилевулиниловый альдегид, который реагирует с соединением дифениламином с образованием соединения синего цвета. Концентрацию ДНК можно определить путем измерения интенсивности поглощения раствора при длине волны 600 нм с помощью спектрофотометра и сравнения со стандартной кривой известных концентраций ДНК.

Измерение интенсивности поглощения раствора ДНК на длинах волн 260 и 280 нм используется в качестве меры чистоты ДНК. ДНК можно определить количественно, разрезая ДНК ферментом рестрикции , прогоняя ее на агарозном геле , окрашивая бромидом этидия (EtBr) или другим красителем и сравнивая интенсивность ДНК с ДНК-маркером известной концентрации.

Используя метод Саузерн-блоттинга , эту количественную ДНК можно выделить и дополнительно изучить с помощью ПЦР и ПДРФ- анализа. Эти процедуры позволяют дифференцировать повторяющиеся последовательности внутри генома. Именно эти методы судебно-медицинские эксперты используют для сравнения, идентификации и анализа.

Метод выделения высокомолекулярной ДНК

В этом методе ядра растений изолируются путем физического измельчения тканей и восстановления неповрежденных ядер в уникальном буфере для ядерной изоляции (NIB). Пластидные ДНК высвобождаются из органелл и удаляются осмотическим буфером путем промывания и центрифугирования. Очищенные ядра затем лизируют и дополнительно очищают органической экстракцией, а геномную ДНК осаждают высокой концентрацией ЦТАБ. Высокочистая, высокомолекулярная гДНК извлекается из ядер и растворяется в буфере с высоким pH, что обеспечивает стабильное длительное хранение. [14]

Хранение ДНК

Хранение ДНК является важным аспектом проектов по выделению ДНК, поскольку оно обеспечивает целостность и стабильность извлеченной ДНК для последующих применений. [15]

Одним из распространенных методов хранения ДНК является осаждение этанолом, которое включает добавление этанола и соли, такой как хлорид натрия или ацетат калия, к экстрагированной ДНК для осаждения ее из раствора. Затем ДНК осаждают центрифугированием и промывают 70% этанолом для удаления оставшихся примесей. Затем осадок ДНК сушат на воздухе и ресуспендируют в буфере, таком как буфер Трис-ЭДТА (ТЕ), для хранения.

Другой метод — замораживание ДНК в буфере, таком как буфер TE, или в криопротекторе, таком как глицерин или ДМСО, при -20 или -80 градусах Цельсия. Этот метод сохраняет целостность ДНК и замедляет активность любых ферментов, которые могут ее разрушить.

Важно отметить, что выбор буфера и условий хранения будет зависеть от последующего применения, для которого предназначена ДНК. Например, если ДНК будет использоваться для ПЦР, ее можно хранить в буфере ТЕ при температуре 4 градуса Цельсия, а если ее планируется использовать для длительного хранения или транспортировки, ее можно хранить в этаноле при -20 градусах Цельсия. Цельсия. Извлеченную ДНК следует регулярно проверять на ее качество и целостность, например, с помощью гель-электрофореза или спектрофотометрии. Следует также учитывать и контролировать условия хранения, такие как температура и влажность.

Также важно учитывать долгосрочную стабильность ДНК и возможность ее деградации с течением времени. Экстрагированную ДНК следует хранить как можно более короткое время, а условия хранения следует выбирать так, чтобы свести к минимуму риск деградации.

Как правило, экстрагированную ДНК следует хранить в наилучших возможных условиях, чтобы обеспечить ее стабильность и целостность для последующих применений.

Контроль качества

Для обеспечения качества выделенной ДНК используется несколько методов контроля качества, в том числе: [16]

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ ab «Флуоресцентная гибридизация in situ (FISH)». Genome.gov . Проверено 23 октября 2022 г.
  2. ^ Гупта, Налини (2019). «Экстракция ДНК и полимеразная цепная реакция». Журнал цитологии . 36 (2): 116–117. дои : 10.4103/JOC.JOC_110_18 . ISSN  0970-9371. ПМК 6425773 . ПМИД  30992648. 
  3. ^ Шривастава, Ахилешвар Кумар; Каннауджия, Винод Кумар; Сингх, Раджеш Кумар; Сингх, Дивья (5 октября 2020 г.). Экстракция ДНК - обзор | Темы ScienceDirect. Эльзевир Наука. ISBN 978-0-12-821710-8. Проверено 27 января 2023 г.
  4. ^ Деаск, Марианна; Печнерова, Патрисия; Кемпе Лагерхольм, Вендела; Эрсмарк, Эрик; Данилов, Глеб К.; Мортенсен, Питер; Вартанян, Сергей; Дален, Лав (13 апреля 2022 г.). «Разработка и оптимизация протокола экстракции древней ДНК на колонке с кремнеземом». Гены . 13 (4): 687. doi : 10.3390/genes13040687 . ISSN  2073-4425. ПМЦ 9032354 . ПМИД  35456493. 
  5. ^ Ёсикава Х, Догруман-Ал Ф, Догруман-Ай Ф, Тюрк С, Кустимур С, Балабан Н, Султан Н (октябрь 2011 г.). «Оценка наборов для экстракции ДНК для молекулярной диагностики подтипов Blastocystis человека из образцов фекалий». Паразитологические исследования . 109 (4): 1045–50. дои : 10.1007/s00436-011-2342-3. PMID  21499752. S2CID  37191780.
  6. ^ Фале, Гэри А.; Фишер, Стивен Х. (октябрь 2000 г.). «Сравнение шести коммерческих наборов для экстракции ДНК для извлечения ДНК цитомегаловируса из образцов человека с добавлением шипов». Журнал клинической микробиологии . 38 (10): 3860–3863. дои : 10.1128/JCM.38.10.3860-3863.2000. ISSN  0095-1137. ПМЦ 87494 . ПМИД  11015421. 
  7. ^ «Извлечение ДНК». Геномика . Проверено 9 октября 2022 г.
  8. ^ abc Элкинс К.М. (2013). «Извлечение ДНК». Судебная ДНК-биология . стр. 39–52. дои : 10.1016/B978-0-12-394585-3.00004-3. ISBN 9780123945853.
  9. ^ abcd Батлер Дж. М. (2005). Судебно-медицинское типирование ДНК: биология, технология и генетика маркеров STR (2-е изд.). Амстердам: Elsevier Academic Press. ISBN 9780080470610. OCLC  123448124.
  10. ^ Мармур, Дж. (1961). «Методика выделения дезоксирибонуклеиновой кислоты из микроорганизмов». Журнал молекулярной биологии . 3 (2): 208–ИН1. дои : 10.1016/S0022-2836(61)80047-8.
  11. ^ Сальва-Серра Ф, Свенссон-Стадлер Л, Бускетс А, Хаэн-Лучоро Д, Карлссон Р, Мур ЭР, Гомила М (2018). «Протокол экстракции и очистки высококачественной и количественной бактериальной ДНК, применимый для секвенирования генома: модифицированная версия процедуры Мармура». Протокол обмена . дои : 10.1038/protex.2018.084 .
  12. Ли, Ричард (11 марта 2015 г.). Судебная биология (2-е изд.). Бока-Ратон. ISBN 978-1439889725. ОКЛК  907517669.{{cite book}}: CS1 maint: отсутствует местоположение издателя ( ссылка )
  13. ^ Паабо С (март 1989 г.). «Древняя ДНК: экстракция, характеристика, молекулярное клонирование и ферментативная амплификация». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 86 (6): 1939–43. Бибкод : 1989PNAS...86.1939P. дои : 10.1073/pnas.86.6.1939 . ПМК 286820 . ПМИД  2928314. 
  14. ^ Ли, Чжиган; Пэррис, Стивен; Саски, Кристофер А. (2020). «Простой метод экстракции высокомолекулярной ДНК из растений, подходящий для технологий одиночных молекул». Растительные методы . 16:38 . дои : 10.1186/s13007-020-00579-4 . ISSN  1746-4811. ПМЦ 7071634 . ПМИД  32190102.  Текст был скопирован из этого источника, который доступен по международной лицензии Creative Commons Attribution 4.0.
  15. ^ Коди, Дельфина; Колотт, Марта; Луис, Орели; Таффет, Софи; Бонне, Жак (11 ноября 2021 г.). Сюй, Цзянь (ред.). «Долгосрочное сохранение ДНК при температуре окружающей среды. Значение для хранения данных ДНК». ПЛОС ОДИН . 16 (11): e0259868. Бибкод : 2021PLoSO..1659868C. дои : 10.1371/journal.pone.0259868 . ISSN  1932-6203. ПМЦ 8585539 . ПМИД  34763344. 
  16. ^ ab «Приложение S2: Метод выделения ДНК и качество ДНК». дои : 10.7717/peerj.3582/supp-2 . {{cite journal}}: Требуется цитировать журнал |journal=( помощь )
  17. ^ Фукс, Флоренция (1 ноября 2002 г.). «Контроль качества вакцин, полученных биотехнологическим путем: технические и нормативные аспекты». Биохимия . 84 (11): 1173–1179. дои : 10.1016/S0300-9084(02)00028-7. ISSN  0300-9084. ПМИД  12595146.
  18. ^ Пашкевич, Конрад Х.; Фарбос, Одри; О'Нил, Пол; Мур, Карен (2014). «Контроль качества на переднем крае». Границы генетики . 5 : 157. дои : 10.3389/fgene.2014.00157 . ISSN  1664-8021. ПМК 4033843 . ПМИД  24904650. 

дальнейшее чтение

Внешние ссылки