Фермент ацетолактатсинтаза ( ALS ) (также известный как ацетогидроксикислота или ацетогидроксикислотная синтаза , сокр. AHAS ) [2] — это белок, обнаруженный в растениях и микроорганизмах. ALS катализирует первый этап синтеза аминокислот с разветвленной цепью ( валин , лейцин и изолейцин ). [3]
Человеческий белок с пока неизвестной функцией, имеющий некоторое сходство последовательности с бактериальным БАС, кодируется геном ILVBL ( ilvB-подобным) . [4]
Ген ILVBL человека имеет 17 экзонов и находится на хромосоме 19 в q13.1. [5]
Каталитический пептид ALS в Arabidopsis thaliana (кресс-салат) представляет собой хлоропластный белок, состоящий из 670 остатков, последние 615 из которых образуют активную форму. Обнаружены три основных домена, с двумя тиаминпирофосфатами, зажатыми в DHS-подобном домене связывания NAD/FAD. [6] В назначении SCOP эти субъединицы называются d1yhya1, d1yhya2 и d1yhya3 от N-конца к C-концу. [7]
Структура ацетолактатсинтазы, которая была использована для рисунка на этой странице, была определена с помощью рентгеновской дифракции при 2,70 ангстрем. Рентгеновская дифракция использует рентгеновские лучи на определенных длинах волн для получения узоров, поскольку рентгеновские лучи рассеиваются определенным образом, что дает представление о структуре анализируемой молекулы.
Существует пять специфических лигандов, которые взаимодействуют с этим белком. Пять из них перечислены ниже.
Связанный ФАД не является каталитическим.
Ацетолактатсинтаза — это каталитический фермент , участвующий в биосинтезе различных аминокислот. Этот фермент имеет код Комиссии по ферментам 2.2.1.6, что означает, что фермент является транскетолазой или трансальдолазой, которая классифицируется как трансферазы, переносящие остатки альдегида или кетона. В этом случае ацетолактатсинтаза — это транскетолаза, которая движется вперед и назад, имея как катаболические, так и анаболические формы. Они действуют на кетон ( пируват ) и могут двигаться вперед и назад в метаболической цепи. Они встречаются у людей, животных, растений и бактерий. В растениях они находятся в хлоропластах, чтобы помогать в метаболических процессах. [6] В пекарских дрожжах они находятся в митохондриях. [8] В нескольких экспериментах было показано, что мутировавшие штаммы Escherichia coli K-12 без фермента не могли расти в присутствии только ацетата или олеата в качестве единственных источников углерода. [9]
Катаболическая версия, которая не связывает ФАД ( InterPro : IPR012782 ), обнаружена у некоторых бактерий.
Ацетолактатсинтаза, также известная как синтаза ацетогидроксикислот, представляет собой фермент, участвующий в превращении пирувата в ацетолактат:
Реакция использует тиаминпирофосфат для связывания двух молекул пирувата. Полученный продукт этой реакции, ацетолактат, в конечном итоге становится валином, лейцином и изолейцином. Все три эти аминокислоты являются незаменимыми аминокислотами и не могут быть синтезированы человеком. Это также приводит к системному названию пируват:пируватацетальдегидтрансфераза (декарбоксилирующая) . Этот фермент является первым из нескольких ферментов в цикле биосинтеза лейцина и валина, беря начальные молекулы пирувата и начиная преобразование пировиноградной кислоты в аминокислоты. Конкретный остаток, который отвечает за это, - глицин в позиции 511 в белке. Это тот, которому для его функции требуется кофактор TPP.
Четыре конкретных остатка отвечают за каталитическую активность этого фермента. Они перечислены здесь с необходимыми кофакторами, написанными после.
Первичная последовательность этого белка в Arabidopsis приведена ниже. Остатки, участвующие в каталитической активности, выделены жирным шрифтом. Мутагенез Asp428, который является критическим карбоксилатным лигандом для Mg(2+) в «мотиве ThDP», приводит к снижению сродства AHAS II к Mg(2+). В то время как мутант D428N показывает сродство к ThDP, близкое к таковому у дикого типа при насыщении Mg(2+), D428E имеет сниженное сродство к ThDP. Эти мутации также приводят к зависимости фермента от K(+). [10]
>sp|P1759|86-667TFISRFAPDQPRKGADILVEALERQGVETVFAYPGGASMEIHQALTRSSSIRNVLPRHEQGGVFAAEGYARSSGKPGICIATSGPGATNLVSGLADALLDSVPLVAITGQVPRRMIGTDAFQETPIVEVTRSITKHNYLVMDVEDIPRIIEEAFFLATSGRPGPVLVDVPKDIQQQLAIPNWEQAMRLPGYMSRMPKPPEDSHLEQIVRLISESSKKPVLYVGGGCLNSSDELGRFVELTGIPVASTLMGLGSYPXDDELSLHMLGMHGTVYANYAVEHSDLLLAFGVRFDDRVTGKLEAFASRAKIVHIDIDSAEIGKNKTPHVSVCGDVKLALQGMNKVLENRAEELKLDFGVWRNELNVQKQKFPLSFKTFGEAIPPQYAIKVLDELTDGKAIISTG V GQHQMWAAQFYNYKKPRQWLSSGGL G A M GFGLPAAIGASVANPDAIVVDIDGDGSFIMNVQELATIRVENLPVKVLLLNNQHLGMVMQWEDRFYKANRAHTFLGDPAQEDEIFPNMLLFAAACGIPAARVTKKADLREAIQTMLDTPGPYLLDVICP H QEHVLPMIPSGGTFNDVITEGDGR
Из-за торможения и ряда других факторов это медленная процедура.
В Arabidopsis две цепи каталитического ALS ( InterPro : IPR012846 ) образуют комплекс с двумя регуляторными малыми субъединицами ( InterPro : IPR004789 ), AHASS2 и AHASS1. [12] [13] [14] Такое расположение широко распространено как в бактериальном, так и в эукариотическом ALS. Гетеромерная структура была продемонстрирована в E. coli в 1984 году и в эукариотах ( S. cerevisiae и Porphyra purpurea ) в 1997 году. [15] Большинство регуляторных белков имеют домен ACT ( InterPro : IPR002912 ), а некоторые из них имеют NiKR -подобный C-конец ( InterPro : IPR027271 )
У бактерий ( E. coli ) ацетолактатсинтаза состоит из трех пар изоформ. Каждая пара включает большую субъединицу, которая, как полагают, отвечает за катализ , и малую субъединицу за ингибирование по принципу обратной связи . Каждая пара субъединиц, или ALS I, II и III соответственно, расположена на своем собственном опероне , ilvBN, ilvGM и ilvIH (где ilvN регулирует ilvB, и наоборот). Вместе эти опероны кодируют несколько ферментов, участвующих в биосинтезе аминокислот с разветвленной цепью. Регуляция различна для каждого оперона. [16]
Оперон ilvGMEDA кодирует пару ilvGM (ALS II), а также трансаминазу аминокислот с разветвленной цепью (ilvE), дегидратазу дигидроксикислот (ilvD) и аммиачно-лиазу треонина (ilvA). Он регулируется ингибированием по принципу обратной связи в форме транскрипционного ослабления . То есть транскрипция снижается в присутствии конечных продуктов пути, аминокислот с разветвленной цепью.
Оперон ilvBNC кодирует пару ilvBN (ALS I) и кетол-кислотную редуктоизомеразу (ilvC). Он регулируется аналогичным образом, но специфичен для изолейцина и лейцина; валин не влияет на него напрямую.
Оба оперона ilvGMEDA и ilvBNC дерепрессируются при дефиците аминокислот с разветвленной цепью тем же механизмом, который их репрессирует. Оба эти оперона, а также третий, ilvIH , регулируются лейцин-чувствительным белком (Lrp). [17] [18]
Ингибиторы ALS используются в качестве гербицидов , которые медленно лишают пораженные растения этих аминокислот , что в конечном итоге приводит к ингибированию синтеза ДНК. Они одинаково влияют на злаки и двудольные растения. Они не являются классом химических веществ, а скорее классом механизмов действия с разнообразной химией. Семейство ингибиторов ALS включает сульфонилмочевины (SU), имидазолиноны , триазолопиримидины (см. Категория:Триазолопиримидины ), пиримидинилоксибензоаты и сульфониламинокарбонилтриазолиноны. [19] По состоянию на март 2022 года [обновлять]ингибиторы ALS страдают от наихудшей (известной) проблемы устойчивости среди всех классов гербицидов, имея 169 известных устойчивых целевых видов. [20] Структуры гербицидов ALS радикально отличаются от обычного субстрата , поэтому ни один из них не связывается с каталитическим сайтом , а вместо этого с сайтом, специфичным для гербицидного действия. Поэтому ожидается, что мутации устойчивости будут иметь самые разные эффекты на нормальную активность катализа ALS, положительные, отрицательные и нейтральные. Неудивительно, что именно это показали эксперименты, включая Yu et al. , 2007, обнаружившие устойчивость в Hordeum murinum из-за замены пролина → серина в аминокислоте 197, что увеличило активность ALS в 2-3 раза. [2]
CADASIL , идентифицированное аутосомно-доминантное состояние, характеризующееся рецидивом подкорковых инфарктов, приводящих к деменции , ранее было сопоставлено с геном «ILVBL» в интервале 2 сМ, D19S226–D19S199. Этот ген кодирует белок, очень похожий на ацетолактатсинтазу других организмов. Не наблюдалось никаких событий рекомбинации с D19S841, высокополиморфным микросателлитным маркером, выделенным из космиды, сопоставленной с этой областью. Не было обнаружено никаких мутаций в этом гене у пациентов с CADASIL, что позволяет предположить, что он не участвует в этом расстройстве. [4]
В исследовании Escherichia coli было показано , что домен связывания FAD ilvB взаимодействует с ilvN и активирует фермент AHAS I. [21]
{{cite journal}}
: CS1 maint: несколько имен: список авторов ( ссылка )