Клетки яичника китайского хомячка ( СНО ) представляют собой семейство иммортализованных клеточных линий [1] , полученных из эпителиальных клеток яичника китайского хомячка , часто используемых в биологических и медицинских исследованиях , а также в коммерческих целях при производстве рекомбинантных терапевтических белков . [1] [2] Они нашли широкое применение в исследованиях генетики, скрининга токсичности, питания и экспрессии генов, и особенно с 1980-х годов для экспрессии рекомбинантных белков. Клетки CHO являются наиболее часто используемыми хозяевами-млекопитающими для промышленного производства терапевтических рекомбинантных белков. [2]
Китайских хомяков использовали в исследованиях с 1919 года, где их использовали вместо мышей для типирования пневмококков . Впоследствии было обнаружено, что они являются отличными переносчиками передачи кала-азара ( висцерального лейшманиоза ), что облегчило исследования лейшмании . [3] [4]
В 1948 году китайского хомячка впервые использовали в США для разведения в исследовательских лабораториях. В 1957 году Теодор Т. Пак получил самку китайского хомячка из лаборатории доктора Джорджа Ерганиана Бостонского фонда исследования рака и использовал ее для получения оригинальной линии клеток яичника китайского хомячка (CHO). С тех пор клетки CHO стали предпочтительной клеточной линией из-за их быстрого роста в суспензионной культуре и высокой продукции белка. [3] [5]
Тромболитический препарат против инфаркта миокарда альтеплаза (активаза) был одобрен Управлением по контролю за продуктами и лекарствами США в 1987 году. Это был первый коммерчески доступный рекомбинантный белок, полученный из клеток CHO. [3] [6] Клетки CHO продолжают оставаться наиболее широко используемым подходом к производству рекомбинантных белковых терапевтических и профилактических средств. [7] [8] В 2018 году 10 из 15 самых продаваемых лекарств были произведены в клетках CHO. [ нужна цитата ]
Все клеточные линии CHO дефицитны по синтезу пролина . [9] Кроме того, клетки CHO не экспрессируют рецептор эпидермального фактора роста (EGFR), что делает их идеальными для исследования различных мутаций EGFR. [10]
Кроме того, клетки яичника китайского хомячка способны продуцировать белки со сложным гликозилированием и посттрансляционными модификациями (ПТМ), сходными с теми, которые производятся у человека. Их легко выращивать в крупномасштабных культурах, и они обладают высокой жизнеспособностью, поэтому идеально подходят для производства белка GMP . Кроме того, клетки CHO устойчивы к изменениям параметров, будь то уровень кислорода, значение pH , температура или плотность клеток. [11]
Имея очень низкое для млекопитающих число хромосом (2n=22) , китайский хомяк также является хорошей моделью для радиационной цитогенетики и культуры тканей. [12]
С тех пор как исходная клеточная линия CHO была описана в 1956 году, было разработано множество вариантов этой клеточной линии для различных целей. [9] [ необходимы дополнительные ссылки ] В 1957 году CHO-K1 был получен из одного клона клеток CHO. [13] Однако, согласно источнику в отрасли, учёный Теодор Пак впервые выделил CHO-K1 в 1968 году. [1] Пак и его коллеги сообщили о создании линии клеток, происходящей из яичников китайского хомячка, в 1957 году. [14] [15] Варианты K1 включают депозиты в ATCC, ECACC и версию, адаптированную для роста в безбелковой среде. [13]
CHO-K1 был мутагенизирован в 1970-х годах с помощью этилметансульфоната для создания линии клеток, лишенной активности дигидрофолатредуктазы (DHFR), называемой CHO-DXB11 (также называемой CHO-DUKX). [16] Однако эти клетки при мутагенизации могут вернуться к активности DHFR, что делает их полезность для исследований несколько ограниченной. [16] Впоследствии, в 1983 году, клетки CHO были мутагенизированы гамма-излучением , чтобы получить клеточную линию, в которой оба аллеля локуса DHFR были полностью устранены, названную CHO-DG44. [17] Этим штаммам с дефицитом DHFR для роста необходимы глицин , гипоксантин и тимидин . [17] Клеточные линии с мутированным DHFR полезны для генетических манипуляций, поскольку клетки, трансфицированные интересующим геном вместе с функциональной копией гена DHFR , можно легко проверить в средах, не содержащих тимидина. В связи с этим клетки CHO, лишенные DHFR, являются наиболее широко используемыми клетками CHO для промышленного производства белка.
Совсем недавно стали популярными другие системы селекции, а также векторные системы, которые могут более эффективно воздействовать на активный хроматин в клетках СНО, а также селекцию антибиотиков ( пуромицин ) для создания рекомбинантных клеток, экспрессирующих белки на высоком уровне. Такая система не требует специальной мутации, поэтому было обнаружено, что культура клеток-хозяев, не содержащая DHFR, продуцирует превосходные уровни белков.
Поскольку клетки CHO имеют очень высокую склонность к генетической нестабильности (как и все иммортализованные клетки), не следует предполагать, что применяемые названия указывают на их пригодность для производственных целей. Например, каждая из трех потомственных культур K1, доступных в 2013 году, имеет значительные накопленные мутации по сравнению друг с другом. [13] Большинство, если не все промышленно используемые линии клеток CHO, в настоящее время культивируются в средах, не содержащих животных компонентов, или в химически определенных средах и используются в крупномасштабных биореакторах в условиях суспензионной культуры. [9] [13] Широко обсуждалась сложная генетика клеток CHO и вопросы, касающиеся клонального происхождения клеточной популяции. [18] [19]
Большая часть генетических манипуляций, проводимых в клетках CHO, выполняется в клетках, лишенных фермента DHFR . Эта схема генетической селекции остается одним из стандартных методов создания трансфицированных клеточных линий CHO для производства рекомбинантных терапевтических белков. Процесс начинается с молекулярного клонирования интересующего гена и гена DHFR в единую систему экспрессии млекопитающих . Плазмидную ДНК , несущую два гена, затем трансфицируют в клетки, и клетки выращивают в селективных условиях в среде без тимидина . Выжившие клетки будут иметь экзогенный ген DHFR вместе с интересующим геном, интегрированным в их геном . [20] [21] Скорость роста и уровень продукции рекомбинантного белка в каждой клеточной линии широко варьируются. Чтобы получить несколько стабильно трансфицированных линий клеток с желаемыми фенотипическими характеристиками, может потребоваться оценка нескольких сотен линий клеток-кандидатов.
Клеточные линии CHO и CHO-K1 можно получить из ряда центров биологических ресурсов, таких как Европейская коллекция клеточных культур , которая является частью коллекций культур Агентства по охране здоровья. Эти организации также хранят данные, такие как кривые роста, замедленные видеоролики роста, изображения и повседневную информацию о субкультурах. [22]
Клетки CHO представляют собой наиболее распространенную клеточную линию млекопитающих, используемую для массового производства терапевтических белков, таких как моноклональные антитела, используемые в 70% терапевтических моноклональных антител. [2] Они могут производить рекомбинантный белок в количестве 3–10 граммов на литр культуры. [9] Продукты клеток CHO подходят для применения на людях, поскольку эти клетки млекопитающих выполняют подобные человеческим посттрансляционные модификации рекомбинантных белков, что является ключом к функционированию некоторых белков. [23]
Однако 70% биологических препаратов и почти все моноклональные антитела производятся в клетках яичника китайского хомячка (CHO), которые являются наиболее часто используемыми и предпочтительными хозяевами для производства биофармацевтических белков.
С 2016 года около 70% всех рБП и моноклональных антител были произведены из клеточных линий яичника китайского хомячка (СНО).