Хемостат ( химическая среда статична ) представляет собой биореактор , в который непрерывно добавляют свежую среду, а культуральную жидкость, содержащую остатки питательных веществ, конечные продукты метаболизма и микроорганизмы, непрерывно удаляют с той же скоростью, чтобы поддерживать постоянный объем культуры . [2] [3] Изменяя скорость добавления среды в биореактор, можно легко контролировать удельную скорость роста микроорганизма в определенных пределах.
Операция
Устойчивое состояние
Одной из наиболее важных особенностей хемостатов является то, что микроорганизмы можно выращивать в физиологически устойчивом состоянии при постоянных условиях окружающей среды. В этом устойчивом состоянии рост происходит с постоянной удельной скоростью роста , и все параметры культуры остаются постоянными (объем культуры, концентрация растворенного кислорода, концентрации питательных веществ и продуктов, pH, плотность клеток и т. д.). Кроме того, условия окружающей среды могут контролироваться экспериментатором. [4] Микроорганизмы, растущие в хемостатах, обычно достигают устойчивого состояния из-за отрицательной обратной связи между скоростью роста и потреблением питательных веществ: если в биореакторе присутствует небольшое количество клеток, клетки могут расти со скоростью, превышающей скорость разбавления, поскольку они потребляют мало питательных веществ, чтобы рост был менее ограничен за счет добавления ограничивающего питательного вещества с поступающей свежей средой. Лимитирующее питательное вещество – это питательное вещество, необходимое для роста, присутствующее в среде в предельной концентрации (все остальные питательные вещества обычно поставляются в избытке). Однако чем больше становится количество клеток, тем больше питательных веществ потребляется, что снижает концентрацию лимитирующего питательного вещества. В свою очередь, это снизит удельную скорость роста клеток, что приведет к снижению количества клеток, поскольку они продолжают удаляться из системы с оттоком. Это приводит к устойчивому состоянию. Благодаря саморегуляции стационарное состояние является стабильным. Это позволяет экспериментатору контролировать удельную скорость роста микроорганизмов, изменяя скорость насоса, подающего в сосуд свежую среду.
Хорошо смешанный
Другой важной особенностью хемостатов и других систем непрерывного культивирования является то, что они хорошо перемешаны, поэтому условия окружающей среды являются однородными или однородными, а микроорганизмы беспорядочно рассредоточены и случайно сталкиваются друг с другом. Следовательно, конкуренция и другие взаимодействия в хемостате носят глобальный характер, в отличие от биопленок .
Скорость разбавления
Скорость обмена питательных веществ выражается как степень разбавления D. В устойчивом состоянии удельная скорость роста микроорганизма µ равна скорости разбавления D. Скорость разведения определяется как поток среды F в единицу времени по объему V культуры в биореакторе.
Максимальная скорость роста и критическая скорость разбавления
Удельная скорость роста µ обратно пропорциональна времени, необходимому для удвоения биомассы, называемому временем удвоения t d , следующим образом:
Следовательно, время удвоения t d становится функцией степени разбавления D в установившемся состоянии:
Каждый микроорганизм, растущий на определенном субстрате, имеет максимальную удельную скорость роста μ max (скорость роста, наблюдаемая, если рост ограничен внутренними ограничениями, а не внешними питательными веществами). Если выбрана скорость разбавления выше, чем μ max , клетки не могут расти со скоростью, такой же быстрой, как скорость их удаления, поэтому культура не сможет поддерживать себя в биореакторе и вымывается.
Однако, поскольку концентрация лимитирующего питательного вещества в хемостате не может превышать концентрацию в корме, удельная скорость роста, которой могут достичь клетки в хемостате, обычно немного ниже максимальной удельной скорости роста, поскольку удельная скорость роста обычно увеличивается с увеличением питательного вещества. концентрация, описываемая кинетикой уравнения Моно . [ нужна цитация ] Наивысшая удельная скорость роста ( μ max ), которую могут достичь клетки, равна критической скорости разбавления ( D' c ):
где S — концентрация субстрата или питательного вещества в хемостате, а KS — константа полунасыщения (это уравнение предполагает кинетику Моно).
Приложения
Исследовать
Хемостаты в исследованиях используются для исследований в области клеточной биологии в качестве источника больших объемов однородных клеток или белка. Хемостат часто используется для сбора данных об устойчивом состоянии организма с целью создания математической модели, относящейся к его метаболическим процессам. Хемостаты также используются в качестве микрокосмов в экологии [5] [6] и эволюционной биологии. [7] [8] [9] [10] В одном случае мутация/отбор – это неприятность, в другом – это желаемый изучаемый процесс. Хемостаты также можно использовать для обогащения культур определенных типов бактериальных мутантов, таких как ауксотрофы или устойчивые к антибиотикам или бактериофагам, для дальнейшего научного изучения. [11] Вариации в скорости разбавления позволяют изучать метаболические стратегии, проводимые организмами при разных скоростях роста. [12] [13]
Конкуренция за одиночные и множественные ресурсы, эволюция путей приобретения и использования ресурсов, перекрестное питание/симбиоз, [14] [15] антагонизм, хищничество и конкуренция среди хищников - все это изучалось в экологии и эволюционной биологии с использованием хемостатов. [16] [17] [18]
Промышленность
Хемостаты часто используются при промышленном производстве этанола . В этом случае последовательно используются несколько хемостатов, каждый из которых поддерживает понижение концентрации сахара. [ нужна цитация ] Хемостат также служит экспериментальной моделью непрерывных клеточных культур в биотехнологической промышленности. [13]
Технические проблемы
Вспенивание приводит к переливу, при этом объем жидкости не совсем постоянный.
Клетки могут расти на стенках или прилипать к другим поверхностям, [19] что можно преодолеть, обработав стеклянные стенки сосуда силаном, чтобы сделать их гидрофобными. Однако ячейки будут выбраны для прикрепления к стенам, поскольку те, которые это сделают, не будут удалены из системы. Те бактерии, которые прочно прикрепляются к стенкам, образуя биопленку , трудно изучать в условиях хемостата.
Смешивание может быть не совсем равномерным, что нарушает «статические» свойства хемостата.
Капание среды в камеру фактически приводит к небольшим импульсам питательных веществ и, следовательно, к колебаниям концентраций, что снова нарушает «статические» свойства хемостата.
Бактерии довольно легко перемещаются вверх по течению. Они быстро достигнут резервуара со стерильной средой, если путь жидкости не будет прерван воздушным разрывом, при котором среда падает каплями через воздух.
Постоянные попытки исправить каждый дефект приводят к довольно регулярным изменениям в базовом хемостате. Примеров в литературе множество.
Для подавления пенообразования используются пеногасители.
Перемешивание и аэрацию можно проводить осторожно.
Для уменьшения роста стенок было использовано множество подходов [20] [21]
В различных приложениях для смешивания используются лопасти, барботаж или другие механизмы [22].
Капание можно сделать менее резким за счет меньших капель и большего объема сосуда.
Многие улучшения направлены на устранение угрозы загрязнения.
Соображения экспериментального дизайна
Выбор и настройка параметров
[23]
Стационарная концентрация лимитирующего субстрата в хемостате не зависит от концентрации притока. Концентрация притока будет влиять на концентрацию клеток и, следовательно, на OD в устойчивом состоянии.
Несмотря на то, что предельная концентрация субстрата в хемостате обычно очень низка и поддерживается дискретными высококонцентрированными импульсами притока, на практике временные изменения концентрации внутри хемостата невелики (несколько процентов или меньше) и, таким образом, могут рассматриваться как квазистационарное состояние.
Время, необходимое для того, чтобы плотность клеток (OD) приблизилась к установившемуся значению (превышение/недостаток), часто бывает продолжительным (множественные обороты хемостата), особенно когда исходный инокулят большой. Но время можно минимизировать при правильном выборе параметров.
Стабильный рост
[23]
Может показаться, что хемостат находится в устойчивом состоянии, но захваты мутантных штаммов могут происходить непрерывно, даже если они не обнаруживаются путем мониторинга параметров макромасштаба, таких как OD или концентрации продукта.
Лимитирующий субстрат обычно находится в таких низких концентрациях, что его невозможно обнаружить. В результате концентрация лимитирующего субстрата может сильно меняться со временем (в процентном отношении), поскольку разные штаммы захватывают популяцию, даже если результирующие изменения OD слишком малы, чтобы их можно было обнаружить.
«Импульсный» хемостат (с очень большими импульсами притока) имеет существенно меньшую селективную способность, чем стандартный квазинепрерывный хемостат, для мутантного штамма с повышенной приспособленностью в лимитирующих условиях.
Резко снижая концентрацию субстрата, ограничивающую приток, можно временно подвергнуть клетки относительно более жестким условиям до тех пор, пока хемостат не стабилизируется обратно в устойчивое состояние (во временном порядке степени разбавления D).
Мутация
[23]
Некоторые типы мутантных штаммов появятся быстро:
Если существует SNP , который может повысить приспособленность, он должен появиться в популяции всего лишь после нескольких удвоений хемостата для характерно больших хемостатов (например, 10^11 клеток E. coli ).
Штамм, которому необходимы два конкретных SNP, где только их комбинация дает преимущество в приспособленности (в то время как каждый из них в отдельности нейтрален), вероятно, появится только в том случае, если целевой размер (количество различных местоположений SNP, которые приводят к выгодной мутации) для каждого SNP очень большой.
Появление других типов мутантных штаммов (например, двух SNP с небольшим размером мишени, большего количества SNP или хемостатов меньшего размера) маловероятно.
Эти другие мутации ожидаются только в результате последовательных выборок мутантов с преимуществом в приспособленности. Можно ожидать возникновения множественных мутантов только в том случае, если каждая мутация полезна независимо, а не в тех случаях, когда мутации нейтральны по отдельности, но вместе выгодны. Последовательные поглощения — единственный надежный способ продолжения эволюции в хемостате.
Казалось бы, экстремальный сценарий, когда мы требуем, чтобы каждый возможный SNP хотя бы один раз сосуществовал в хемостате, на самом деле вполне вероятен. Большой хемостат с большой вероятностью достигнет этого состояния.
Для большого хемостата ожидаемое время до появления выгодной мутации порядка времени оборота хемостата. Обратите внимание, что обычно это значительно короче, чем время, необходимое для захвата популяции хемостата выгодным штаммом. Это не обязательно так в небольшом хемостате.
Ожидается, что вышеуказанные моменты будут одинаковыми для разных видов бесполого размножения ( E. coli , S. cerevisiae и т. д.).
Более того, время до появления мутации не зависит от размера генома, но зависит от скорости мутаций каждого BP.
Для характерно больших хемостатов гипермутирующий штамм не дает достаточного преимущества, чтобы оправдать его использование. Кроме того, у него недостаточно селективного преимущества, чтобы можно было ожидать, что он всегда появится в результате случайной мутации и возьмет на себя управление хемостатом.
Единое поглощение
[23]
Время перехода предсказуемо с учетом соответствующих параметров деформации.
Различные степени разведения избирательно способствуют захвату популяции хемостата разными мутантными штаммами, если такой штамм существует. Например:
Высокая скорость разведения создает давление отбора для мутантного штамма с повышенной максимальной скоростью роста;
Средняя степень разведения создает давление отбора для мутантного штамма с более высоким сродством к лимитирующему субстрату;
Медленная скорость разведения создает давление отбора для мутантного штамма, который может расти в среде без ограничивающего субстрата (предположительно за счет потребления другого субстрата, присутствующего в среде);
Время захвата превосходящего мутанта будет довольно постоянным в диапазоне рабочих параметров. Для характеристических рабочих значений время срабатывания составляет от нескольких дней до недель.
Последовательные поглощения
[23]
При подходящих условиях (достаточно большая популяция и множество мишеней в геноме для простых полезных мутаций) ожидается, что несколько штаммов последовательно захватят популяцию, и сделают это относительно синхронно и в темпе. Сроки зависят от типа мутации.
В последовательности поглощений, даже если избирательное улучшение каждого из штаммов остается постоянным (например, каждый новый штамм лучше предыдущего в постоянный коэффициент) – скорость поглощения не остается постоянной, а скорее уменьшается от штамма к штамму.
Бывают случаи, когда последовательные поглощения происходят настолько быстро, что отличить штаммы очень трудно даже при изучении частоты аллелей. Таким образом, линия множественных поглощений последовательных штаммов может выглядеть как поглощение одного штамма с группой мутаций.
Вариации
Установками для ферментации, тесно связанными с хемостатами, являются турбидостат , ауксостат и ретентостат. В ретентостатах культуральная жидкость также удаляется из биореактора, но биомасса удерживается фильтром. В этом случае концентрация биомассы увеличивается до тех пор, пока потребность в питательных веществах для поддержания биомассы не станет равна количеству лимитирующего питательного вещества, которое может быть потреблено.
^ Мэдиган, Майкл (2015). Брок Биология микроорганизмов . Пирсон. стр. 152–153. ISBN 978-0-321-89739-8.
^ Новик А., Сцилард Л. (1950). «Описание хемостата». Наука . 112 (2920): 715–6. Бибкод : 1950Sci...112..715N. дои : 10.1126/science.112.2920.715. ПМИД 14787503.
^ Джеймс Т.В. (1961). «Непрерывная культура микроорганизмов». Ежегодный обзор микробиологии . 15 : 27–46. doi : 10.1146/annurev.mi.15.100161.000331.
^ Д. Герберт; Р. Элсворт; Р. К. Теллинг (1956). «Непрерывная культура бактерий; теоретическое и экспериментальное исследование». Дж. Генерал Микробиол . 14 (3): 601–622. дои : 10.1099/00221287-14-3-601 . ПМИД 13346021.
^ Дыхуйзен Д.Э., Дин А.М. (2004). «Эволюция специалистов в экспериментальном микромире». Генетика . 167 (4): 2015–26. doi :10.1534/genetics.103.025205. ПМК 1470984 . ПМИД 15342537.
^ Вик Л.М., Вайленманн Х., Эгли Т. (2002). «Очевидная часовая эволюция Escherichia coli в хемостатах с ограниченным содержанием глюкозы воспроизводится при больших, но не при малых размерах популяции, и может быть объяснена кинетикой Моно». Микробиология . 148 (Часть 9): 2889–902. дои : 10.1099/00221287-148-9-2889 . ПМИД 12213934.
^ Бономи А., Фредриксон АГ (1976). «Питание простейших и рост бактериальных стенок». Биотехнология. Биоинж. 18 (2): 239–52. дои : 10.1002/bit.260180209. PMID 1267931. S2CID 41343643.
^ де Креси Э., Мецгар Д., Аллен С., Пеника М., Лайонс Б., Хансен С.Дж., де Креси-Лагард V (2007). «Разработка нового устройства непрерывного культивирования для экспериментальной эволюции бактериальных популяций». Прил. Микробиол. Биотехнология. 77 (2): 489–96. дои : 10.1007/s00253-007-1168-5. PMID 17896105. S2CID 25787277.
^ Ван Хюлле С.В., Ван Ден Брук С., Мартенс Дж., Виллес К., Шелстрете Г., Волке Э.И., Ванроллегем П.А. (2003). «Практический опыт запуска и эксплуатации лабораторного реактора ШАРОН с непрерывной аэрацией». Коммун. Сельское хозяйство. Прил. Биол. наук. 68 (2 часть А): 77–84. ПМИД 15296140.
^ abcde Wides A, Майло Р. (2018). «Понимание динамики и оптимизация эффективности экспериментов по выбору хемостата». arXiv : 1806.00272 [q-bio.PE].