Гистон-метилтрансферазы ( ГМТ ) — ферменты , модифицирующие гистоны (например, гистон-лизин-N-метилтрансферазы и гистон-аргинин-N-метилтрансферазы), катализирующие перенос одной, двух или трех метильных групп на остатки лизина и аргинина белков - гистонов . Присоединение метильных групп происходит преимущественно к специфическим остаткам лизина или аргинина на гистонах H3 и H4. [1] Существуют два основных типа гистоновых метилтрансфераз: лизин-специфичные (которые могут содержать домен SET ( S u(var)3-9, Enhancer of Zeste, Trithorax ) или не содержать домен SET) и аргинин-специфичные. . [2] [3] [4] В обоих типах гистоновых метилтрансфераз S-аденозилметионин (SAM) служит кофактором и метилдонорной группой. [1] [5] [6] [7]
Геномная ДНК эукариот связывается с гистонами, образуя хроматин . [8] Уровень уплотнения хроматина сильно зависит от метилирования гистонов и других посттрансляционных модификаций гистонов. [9] Метилирование гистонов является основной эпигенетической модификацией хроматина [9] , которая определяет экспрессию генов, стабильность генома, созревание стволовых клеток, развитие клеточных линий, генетический импринтинг, метилирование ДНК и митоз клеток. [2]
Класс лизинспецифичных гистонметилтрансфераз подразделяется на содержащие домен SET и не содержащие домен SET. Как видно из их прозвищ, они отличаются наличием домена SET, который представляет собой тип белкового домена.
Гены человека, кодирующие белки с активностью гистон-метилтрансферазы, включают:
Структурами, участвующими в активности метилтрансферазы, являются домен SET (состоящий примерно из 130 аминокислот), домены pre-SET и пост-SET. Домены pre-SET и post-SET обрамляют домен SET с обеих сторон. Область pre-SET содержит остатки цистеина, которые образуют треугольные кластеры цинка, прочно связывая атомы цинка и стабилизируя структуру. Сам домен SET содержит каталитическое ядро, богатое β-нитями, которые, в свою очередь, составляют несколько областей β-листов. Часто β-цепи, обнаруженные в домене pre-SET, образуют β-листы с β-нитями домена SET, что приводит к небольшим изменениям в структуре домена SET. Эти небольшие изменения изменяют специфичность сайта целевого остатка для метилирования и позволяют метилтрансферазам домена SET нацеливаться на множество различных остатков. Это взаимодействие между доменом pre-SET и каталитическим ядром имеет решающее значение для функции фермента. [1]
Для того чтобы реакция протекала, S-аденозилметионин (SAM) и остаток лизина хвоста субстратного гистона должны сначала быть связаны и правильно ориентированы в каталитическом кармане домена SET. Затем соседний остаток тирозина депротонирует ε-аминогруппу остатка лизина. [10] Затем лизиновая цепь совершает нуклеофильную атаку на метильную группу атома серы молекулы SAM, перенося метильную группу на боковую цепь лизина.
Вместо SET гистонметилтрансфераза, не содержащая домен SET, использует фермент Dot1. В отличие от домена SET, который нацелен на лизиновую хвостовую область гистона, Dot1 метилирует остаток лизина в глобулярном ядре гистона и является единственным известным ферментом, который это делает. [1] Возможный гомолог Dot1 был обнаружен у архей, который в недавних исследованиях демонстрирует способность метилировать гистоноподобный белок архей.
N-терминал Dot1 содержит активный сайт. Петля, служащая местом связывания для SAM, связывает N-концевой и C-концевой домены каталитического домена Dot1. С-конец важен для субстратной специфичности и связывания Dot1, поскольку этот регион несет положительный заряд, что обеспечивает благоприятное взаимодействие с отрицательно заряженным остовом ДНК. [11] Из-за структурных ограничений Dot1 способен метилировать только гистон H3.
Существует три различных типа протеинаргининметилтрансфераз (PRMT) и три типа метилирования, которые могут происходить по остаткам аргинина на хвостах гистонов. Первый тип PRMT ( PRMT1 , PRMT3 , CARM1 ⧸PRMT4 и Rmt1⧸Hmt1) продуцируют монометиларгинин и асимметричный диметиларгинин (Rme2a). [12] [13] [14] Второй тип (JBP1⧸ PRMT5 ) продуцирует монометил или симметричный диметиларгинин (Rme2s). [5] Третий тип (PRMT7) производит только монометилированный аргинин. [15] Различия в характере метилирования PRMT возникают из-за ограничений в кармане связывания аргинина. [5]
Каталитический домен PRMT состоит из домена связывания SAM и домена связывания субстрата (всего около 310 аминокислот). [5] [6] [7] Каждый PRMT имеет уникальную N-концевую область и каталитическое ядро. Остаток аргинина и SAM должны быть правильно ориентированы внутри связывающего кармана. SAM закрепляется внутри кармана за счет гидрофобного взаимодействия между адениновым кольцом и фенильным кольцом фенилаланина. [7]
Глутамат в соседней петле взаимодействует с азотом целевого остатка аргинина. Это взаимодействие перераспределяет положительный заряд и приводит к депротонированию одной азотистой группы [16] , которая затем может произвести нуклеофильную атаку на метильную группу SAM. Различия между двумя типами PRMT определяют следующий этап метилирования: либо катализировать диметилирование одного азота, либо обеспечить симметричное метилирование обеих групп. [5] Однако в обоих случаях протон, отделенный от азота, рассеивается через систему ретрансляции протонов гистидин-аспартат и высвобождается в окружающий матрикс. [17]
Метилирование гистонов играет важную роль в эпигенетической регуляции генов . Метилированные гистоны могут либо подавлять, либо активировать транскрипцию, как показывают различные экспериментальные данные, в зависимости от места метилирования. Например, вполне вероятно, что метилирование лизина 9 на гистоне H3 (H3K9me3) в промоторной области генов предотвращает чрезмерную экспрессию этих генов и, следовательно, задерживает переход клеточного цикла и/или пролиферацию. [18] Напротив, метилирование остатков гистонов H3K4, H3K36 и H3K79 связано с транскрипционно активным эухроматином. [2]
В зависимости от места и симметрии метилирования метилированные аргинины рассматривают как активирующие (гистоны H4R3me2a, H3R2me2s, H3R17me2a, H3R26me2a) или репрессивные (H3R2me2a, H3R8me2a, H3R8me2s, H4R3me2s) гистоновые метки. [15] Как правило, влияние гистон-метилтрансферазы на экспрессию генов сильно зависит от того, какой остаток гистона она метилирует. См. Регуляция гистона #хроматина .
Аномальная экспрессия или активность ферментов, регулирующих метилирование, была отмечена при некоторых типах рака человека, что позволяет предположить связь между метилированием гистонов и злокачественной трансформацией клеток или образованием опухолей. [18] В последние годы эпигенетическая модификация белков-гистонов, особенно метилирование гистона H3, при развитии рака стала областью новых исследований. В настоящее время общепринято, что помимо генетических аберраций рак может быть инициирован эпигенетическими изменениями, при которых экспрессия генов изменяется без геномных аномалий. Эти эпигенетические изменения включают потерю или усиление метилирования как в ДНК, так и в белках-гистонах. [18]
Пока нет убедительных доказательств того, что рак развивается исключительно из-за нарушений метилирования гистонов или его сигнальных путей, однако они могут быть способствующим фактором. Например, снижение регуляции метилирования лизина 9 на гистоне 3 (H3K9me3) наблюдалось при нескольких типах рака человека (таких как колоректальный рак, рак яичников и рак легких), которые возникают либо из-за дефицита метилтрансфераз H3K9, либо из-за дефицита метилтрансфераз H3K9. повышенная активность или экспрессия деметилазы H3K9. [18] [19] [20]
Метилирование гистона лизина играет важную роль в выборе пути восстановления двухцепочечных разрывов ДНК . [21] Например, триметилированный H3K36 необходим для гомологичной рекомбинационной репарации, тогда как диметилированный H4K20 может рекрутировать белок 53BP1 для репарации по пути негомологичного соединения концов .
Гистон-метилтрансфераза может быть использована в качестве биомаркера для диагностики и прогноза рака. Кроме того, остается много вопросов о функции и регуляции гистоновых метилтрансфераз при злокачественной трансформации клеток, канцерогенезе ткани и онкогенезе. [18]