stringtranslate.com

P-сайт

P -сайт (для пептидила) является вторым сайтом связывания для тРНК в рибосоме . Другие два сайта - это A-сайт (аминоацил), который является первым сайтом связывания в рибосоме, и E-сайт (выход), третий. Во время трансляции белка P-сайт удерживает тРНК, которая связана с растущей полипептидной цепью. Когда достигается стоп-кодон , связь пептидил-тРНК тРНК, расположенная в P-сайте, расщепляется, высвобождая вновь синтезированный белок. [1] Во время этапа транслокации фазы элонгации мРНК продвигается вперед на один кодон, сопряженный с перемещением тРНК из рибосомальных сайтов A в P и P в E, катализируемым фактором элонгации EF-G. [2]

Обзор

Рибосомный P-сайт играет жизненно важную роль во всех фазах трансляции. Инициация включает распознавание стартового кодона (AUG) инициирующей тРНК в P-сайте, удлинение включает прохождение многих элонгаторных тРНК через P-сайт, терминация включает гидролиз зрелого полипептида из тРНК, связанной с P-сайтом, а рециркуляция рибосомы включает в себя высвобождение деацилированной тРНК. Связывание тРНК с P-сайтом в присутствии мРНК устанавливает взаимодействие кодон-антикодон, и это взаимодействие важно для контактов малой субъединицы рибосомы (30S) с тРНК. [3]

Классическая модель двух состояний [4] предполагает, что рибосома содержит два сайта связывания для тРНК, P-сайт и A-сайт . A-сайт связывается с входящей аминоацил-тРНК , которая имеет антикодон для соответствующего кодона в мРНК, представленной в A-сайте. После образования пептида между C-концевой карбонильной группой растущей полипептидной цепи (прикрепленной к связанной с P-сайтом тРНК) и аминогруппой аминоацил-тРНК (связанной с A-сайтом), полипептидная цепь затем присоединяется к тРНК в A-сайте. Деацилированная тРНК остается в P-сайте и высвобождается, как только пептидил-тРНК переносится в P-сайт. Как достигается транслокация пептидил-тРНК из A-сайта в P-сайт для завершения цикла? Было высказано предположение, что это происходит в два этапа путем перемещения двух рибосомных субъединиц относительно друг друга с образованием промежуточной гибридной структуры: А-участка одной субъединицы с Р-участком другой субъединицы. [5] Это аналогично перемещению большого объекта: сначала перемещается один конец, затем другой.

Эксперименты по химической модификации предоставили доказательства этой гибридной модели, в которой тРНК могут отбирать гибридное состояние связывания во время фазы удлинения (шаг предтранслокации). В этих гибридных состояниях связывания акцепторные и антикодоновые концы тРНК находятся в разных сайтах (A, P и E). С помощью методов химического зондирования был исследован набор филогенетически консервативных оснований в рибосомальной РНК, где связывается тРНК, и предполагается, что они напрямую участвуют в связывании тРНК с прокариотической рибосомой. [6] Корреляция таких сайт-специфических защищенных оснований в рРНК и занятость сайтов A, P и E позволила провести диагностические анализы этих оснований для изучения местоположения тРНК в любом заданном состоянии трансляционного цикла. Авторы предложили гибридную модель, в которой более высокое сродство дезактивированной тРНК и пептидной тРНК к сайтам E и P субъединицы 50S термодинамически благоприятствует переходам P/P в P/E и A/A в A/P, что было дополнительно продемонстрировано с помощью экспериментов с крио-ЭМ . [7] Кроме того, исследования FRET отдельных молекул выявили колебания в положениях тРНК, [8] что привело к выводу, что классические (A/AP/P) и гибридные состояния (A/PP/E) тРНК, безусловно, находятся в динамическом равновесии.

До образования пептидной связи аминоацил-тРНК связывается в А-сайте, пептидил-тРНК связывается в Р-сайте, а деацилированная тРНК (готовая к выходу из рибосомы) связывается с Е-сайтом. Трансляция перемещает тРНК из А-сайта через Р- и Е-сайты, за исключением инициирующей тРНК, которая связывается непосредственно с Р-сайтом. [9] Недавние эксперименты показали, что трансляция белка также может инициироваться с А-сайта. С помощью анализа тоупринтинга было показано, что синтез белка инициируется с А-сайта рибосомы (эукариотической) в вирусе паралича сверчков (CrPV). IGR-IRES (внутригенные регионы — внутренние сайты входа рибосомы) может собирать 80S рибосомы из 40S и 60S рибосомных субъединиц в отсутствие eIF2, Met-tRNAi или гидролиза GTP и без кодирующего триплета в рибосомном P-сайте. Авторы также показали, что IGR-IRES может направлять трансляцию белка, N-концевой остаток которого не является метионином. [10]

Структура

Полная трехмерная структура рибосомы T. thermophilus 70S была определена с помощью рентгеновской кристаллографии , содержащей мРНК и тРНК, связанные с сайтами P и E с разрешением 5,5 Å и с сайтом A с разрешением 7 Å. Авторы обнаружили, что все три сайта связывания тРНК (A, P и E) рибосомы контактируют со всеми тремя соответствующими тРНК в универсально консервативных частях их структур. Это позволяет рибосоме связывать различные виды тРНК точно таким же образом. Транслокационный этап синтеза белка требует перемещений тРНК на 20 Å или более, поскольку они перемещаются от сайтов A к сайтам P и E [11]

антибиотики, воздействующие на тРНК

Оксазолидины (например, линезолид) предотвращают связывание инициаторной тРНК в P-сайте. [12] Было показано, что оксазолидины плейотропно влияют на связывание инициаторной тРНК, EF-P (фактор удлинения P)-стимулированный синтез пептидных связей и EF-G-опосредованную транслокацию инициаторной тРНК в P-сайт. [13]

Антибиотики классов макролидов , линкозамидов и стрептограминов предотвращают образование пептидных связей и/или транслокацию тРНК из А-сайта в Р-сайт на рибосоме [14] [15] , что в конечном итоге приводит к нарушению стадии удлинения и, следовательно, к ингибированию трансляции белка.

Ссылки

  1. ^ Лодиш, Харви (2013). Молекулярная клеточная биология (седьмое изд.). Нью-Йорк: Worth Publ. стр. 141–143. ISBN 978-1-4292-3413-9.
  2. ^ Роднина, МВ; Савельсберг, А; Катунин, ВИ; Винтермейер, В (2 января 1997 г.). «Гидролиз ГТФ фактором удлинения G управляет движением тРНК на рибосоме». Nature . 385 (6611): 37–41. Bibcode :1997Natur.385...37R. doi :10.1038/385037a0. PMID  8985244.
  3. ^ Шефер, MA; Тастан, AO; Патцке, S; Блаха, G; Шпан, CM; Уилсон, DN; Ниерхаус, KH (24 мая 2002 г.). «Взаимодействие кодона и антикодона на участке P является предпосылкой для взаимодействия тРНК с малой рибосомной субъединицей». Журнал биологической химии . 277 (21): 19095–19105. doi : 10.1074/jbc.M108902200 . PMID  11867615.
  4. ^ Уотсон, JD (1964). «Синтез белков на рибосомах». Бюллетень Общества биологической химии . 46 : 1399–1425. ПМИД  14270536.
  5. ^ Bretscher, MS (1968). «Транслокация в синтезе белка: модель гибридной структуры». Nature . 218 (5142): 675–677. Bibcode :1968Natur.218..675B. doi :10.1038/218675a0. PMID  5655957.
  6. ^ Moazed, D; Noller, HF (9 ноября 1989). «Промежуточные состояния в движении транспортной РНК в рибосоме». Nature . 342 (6246): 142–148. Bibcode :1989Natur.342..142M. doi :10.1038/342142a0. PMID  2682263.
  7. ^ Agirrezabala, Xabier; Lei, Jianlin; Brunelle, Julie L.; Ortiz-Meoz, Rodrigo F.; Green, Rachel; Frank, Joachim (октябрь 2008 г.). «Визуализация гибридного состояния связывания тРНК, стимулируемого спонтанным храповым механизмом рибосомы». Molecular Cell . 32 (2): 190–197. doi :10.1016/j.molcel.2008.10.001. PMC 2614368 . PMID  18951087. 
  8. ^ Бланчард, SC; Гонсалес, RL; Ким, HD; Чу, S; Пуглиси, JD (октябрь 2004 г.). «выбор тРНК и кинетическая корректура при переводе». Nature Structural & Molecular Biology . 11 (10): 1008–1014. doi :10.1038/nsmb831. PMID  15448679.
  9. ^ Laursen, BS; Sorensen, HP; Mortensen, KK; Sperling-Petersen, HU (8 марта 2005 г.). «Инициация синтеза белка у бактерий». Microbiology and Molecular Biology Reviews . 69 (1): 101–123. doi : 10.1128/MMBR.69.1.101-123.2005. PMC 1082788. PMID  15755955. 
  10. ^ Wilson, JE; Pestova, TV; Hellen, CU; Sarnow, P (18 августа 2000 г.). «Инициация синтеза белка из участка A рибосомы». Cell . 102 (4): 511–520. doi : 10.1016/s0092-8674(00)00055-6 . PMID  10966112.
  11. ^ Юсупов, ММ; Юсупова, ГЗ; Бауком, А; Либерман, К; Эрнест, ТН; Кейт, Дж. Х.; Ноллер, Х. Ф. (4 мая 2001 г.). «Кристаллическая структура рибосомы при разрешении 5,5 А». Science . 292 (5518): 883–896. Bibcode :2001Sci...292..883Y. doi : 10.1126/science.1060089 . PMID  11283358.
  12. ^ Чопра, Шайледжа; Ридер, Джон (25 декабря 2014 г.). «тРНК как мишени антибиотиков». Международный журнал молекулярных наук . 16 (1): 321–349. doi : 10.3390/ijms16010321 . PMC 4307249. PMID  25547494 . 
  13. ^ Aoki, H.; Ke, L.; Poppe, SM; Poel, TJ; Weaver, EA; Gadwood, RC; Thomas, RC; Shinabarger, DL; Ganoza, MC (1 апреля 2002 г.). «Оксазолидиноновые антибиотики нацелены на сайт P на рибосомах Escherichiacoli». Antimicrobial Agents and Chemotherapy . 46 (4): 1080–1085. doi :10.1128/AAC.46.4.1080-1085.2002. PMC 127084 . PMID  11897593. 
  14. ^ Джонстон, Николь; Мухтар, Тарик; Райт, Джерард (1 августа 2002 г.). «Антибиотики-стрептограмины: способ действия и резистентность». Current Drug Targets . 3 (4): 335–344. doi :10.2174/1389450023347678.
  15. ^ Champney, W. Scott; Tober, Craig L. (21 августа 2000 г.). «Специфическое ингибирование образования 50S рибосомальной субъединицы в клетках Staphylococcus aureus 16-членными макролидами, линкозамидом и антибиотиками стрептограмин B». Current Microbiology . 41 (2): 126–135. doi :10.1007/s002840010106. PMID  10856379.