stringtranslate.com

Венепункции

Фото процедуры венепункции
Видео процедуры венепункции

В медицине венепункцией или венепункцией называется процесс получения внутривенного доступа с целью забора венозной крови (также называемой флеботомией ) или внутривенной терапии . В здравоохранении эта процедура выполняется учеными медицинских лабораторий , врачами-практиками , некоторыми фельдшерами , фельдшерами , флеботомистами , специалистами по диализу и другим сестринским персоналом. [1] В ветеринарии эта процедура выполняется ветеринарами и ветеринарными специалистами .

Важно следовать стандартной процедуре сбора образцов крови, чтобы получить точные результаты лабораторных исследований. Любая ошибка при сборе крови или заполнении пробирок может привести к ошибочным результатам лабораторных исследований. [2]

Венепункции являются одной из наиболее часто выполняемых инвазивных процедур и проводятся по одной из пяти причин:

  1. для получения крови в диагностических целях;
  2. для контроля уровня компонентов крови; [3]
  3. назначать терапевтическое лечение, включая медикаментозное лечение, питание или химиотерапию;
  4. для удаления крови из-за избыточного уровня железа или эритроцитов ( красных кровяных телец ); или
  5. для сбора крови для последующего использования, в основном для переливания донору или другому человеку .

Анализ крови является важным диагностическим инструментом, доступным врачам здравоохранения.

Кровь чаще всего берут из поверхностных вен верхней конечности. [1] Срединная локтевая вена , которая лежит в локтевой ямке спереди от локтя, находится близко к поверхности кожи без множества крупных нервов, расположенных поблизости. Другие вены, которые могут быть использованы в локтевой ямке для венепункции, включают головную , базиликовую и срединную предплечье вены . [4]

Небольшие количества крови можно брать из пальца , а у младенцев — из пятки или из вены головы с помощью иглы-крылышки .

Флеботомия (рассечение вены) также является методом лечения некоторых заболеваний, таких как гемохроматоз , первичная и вторичная полицитемия .

Осложнения

Исследование, проведенное в 1996 году среди доноров крови (при сдаче крови используется игла большего размера, чем при обычной венепункции), показало, что у 1 из 6300 доноров наблюдалось повреждение нерва. [5]

Риск и побочные эффекты могут включать в себя множество вещей. Головокружение, потливость, а также снижение частоты сердечных сокращений и артериального давления. [1] [6]

Оборудование

Эластичный жгут, используемый для временного ограничения кровотока. Жгут растягивает вены, делая их более ощутимыми и видимыми.

Существует много способов взятия крови из вены, и выбор метода зависит от возраста человека, имеющегося оборудования и типа требуемых анализов.

Большая часть сбора крови в США, Великобритании, Канаде и Гонконге осуществляется с помощью системы вакуумных трубок. Две распространенные системы — Vacutainer (Becton, Dickinson and company) и Vacuette (Greiner Bio-One). Оборудование состоит из пластикового адаптера, также известного как держатель/концентратор трубки или иглы, иглы для подкожных инъекций и вакуумной трубки. При определенных обстоятельствах может использоваться шприц, часто с иглой- бабочкой , которая представляет собой пластиковый катетер, прикрепленный к короткой игле. В развивающихся странах система вакуумных трубок является предпочтительным методом забора крови. [ необходима цитата ]

С вакуумными трубками или трубками с откачкой воздуха

Вакутейнеры для крови

Компания Greiner Bio-One изготовила первую в мире пластиковую вакуумную пробирку для сбора крови в 1985 году под торговой маркой VACUETTE. Сегодня многие компании продают вакуумные пробирки, поскольку патент на это устройство теперь находится в открытом доступе. Эти пробирки производятся с определенным объемом газа, удаленным из запечатанной пробирки. Когда игла из концентратора или устройства для переноса вставляется в пробку, вакуум пробирки автоматически втягивает требуемый объем крови. [ необходима цитата ]

Базовая система вакуумных трубок (ETS) состоит из иглы, держателя трубок и вакуумных трубок. Игла прикрепляется к держателю трубок флеботомистом перед сбором или может поставляться производителем как единое целое. Игла выступает через конец держателя трубок и имеет иглу на каждом конце. После предварительной очистки места венепункции и наложения жгута флеботомист снимает колпачок с иглы, прикрепленной к держателю трубок, вставляет иглу в вену, затем вставляет вакуумные трубки в держатель трубок, где пробка трубки прокалывается задним концом иглы. Затем вакуум в трубке автоматически забирает необходимую кровь непосредственно из вены. Несколько вакуумных трубок можно по очереди прикреплять и снимать с одной иглы, что позволяет получать несколько образцов в ходе одной процедуры. Это возможно благодаря многоразовому рукаву для образцов, который представляет собой гибкий резиновый фитинг над задним концом канюли иглы, который герметизирует иглу, пока она не будет вытолкнута в сторону. Это препятствует свободному вытеканию крови из задней части иглы, вставленной в вену, по мере того, как каждая пробирка удаляется, а следующая прокалывается. Правила безопасности OSHA требуют, чтобы иглы или держатели пробирок были оснащены защитным устройством, закрывающим иглу после процедуры, чтобы предотвратить случайную травму от укола иглой. [7]

Также имеются в наличии фитинги и адаптеры, используемые для заполнения вакуумных трубок из наборов игл-бабочек и шприцев. [ необходима ссылка ]

Существует несколько калибров игл, из которых может выбирать флеботомист. Наиболее часто используются следующие: игла 21 г (зеленый верх), игла 22 г (черный верх), игла-бабочка 21 г (зеленая этикетка), игла-бабочка 23 г (голубая этикетка) и игла-бабочка 25 г (оранжевая или темно-синяя этикетка) (однако эта игла используется только в педиатрии или в крайних случаях, поскольку она настолько мала, что часто может приводить к гемолизу образца крови). Также существуют различные размеры и объемы пробирок и бутылок для различных требований к тестам. [8]

Добавки и порядок вытягивания

Пробирки, в которые собирается кровь, могут содержать одну или несколько добавок. Как правило, тесты, требующие цельной крови, требуют образцов крови, собранных в пробирках, содержащих некоторую форму антикоагулянта ЭДТА . ЭДТА хелатирует кальций, предотвращая свертывание. ЭДТА предпочтительна для гематологических тестов, поскольку она наносит минимальный ущерб морфологии клеток. Цитрат натрия является антикоагулянтом, используемым в образцах, собранных для тестов на коагуляцию. Большинство химических и иммунологических тестов проводятся на сыворотке, которая производится путем свертывания и последующего разделения образца крови с помощью центрифуги. Эти образцы собираются либо в пробирку без добавок, либо в пробирку, содержащую активатор свертывания . Этот активатор свертывания может мешать некоторым анализам , поэтому в этих случаях рекомендуется использовать простую пробирку, но это задержит тестирование. Пробирки, содержащие литий-гепарин или натрий-гепарин, также обычно используются для различных химических тестов, поскольку они не требуют свертывания и могут быть центрифугированы сразу после сбора. Для тестов на глюкозу используется комбинация фторида натрия и оксалата калия, поскольку эти добавки предотвращают свертывание и останавливают гликолиз, благодаря чему уровень глюкозы в крови сохраняется после сбора. [9] Другая специальная пробирка — непрозрачная пробирка янтарного цвета, используемая для сбора крови для анализа светочувствительных веществ, таких как билирубин . [ требуется ссылка ]

Пробирки маркируются добавкой, которую они содержат, но пробка на каждой пробирке также имеет цветовую кодировку в соответствии с добавкой. Хотя цвета различаются у разных производителей, цвета пробки, как правило, связаны с каждой добавкой, как указано ниже. Поскольку добавки из каждой пробирки могут оставаться на игле, используемой для заполнения пробирок, их необходимо набирать в определенном порядке, чтобы гарантировать, что перекрестное загрязнение не окажет отрицательного влияния на тестирование образцов, если одновременно набираются несколько пробирок. «Порядок взятия пробы» зависит от метода сбора. Ниже в порядке взятия пробы, обычно требуемом для метода сбора Evacuated Tube System (ETS), приведены наиболее распространенные пробирки с указанием добавки и цвета: [10] [11]

У детей

Использование ионофореза лидокаина эффективно для уменьшения боли и облегчения стресса во время венепункции у детей. [19] Было показано, что система доставки порошка лидокаина без иглы уменьшает боль при венепункции у детей. [20] [21] Быстрой дермальной анестезии можно добиться путем местной инфильтрации анестетика, но это может вызвать беспокойство у детей, испуганных иглами, или деформировать кожу, что затрудняет сосудистый доступ и увеличивает риск воздействия игл на работников здравоохранения. Дермальной анестезии также можно добиться без игл путем местного нанесения местных анестетиков или ионофореза лидокаина. Напротив, неинвазивная дермальная анестезия может быть установлена ​​в течение 5–15 минут без деформации подлежащих тканей с помощью ионофореза лидокаина, где постоянный электрический ток облегчает проникновение в кожу положительно заряженных молекул лидокаина при помещении под положительный электрод. [ необходима цитата ]

В одном исследовании сделан вывод о том, что ионтофоретическое введение лидокаина безопасно и эффективно для обеспечения дермальной анестезии при венепункции у детей 6–17 лет. Эта методика может быть не применима ко всем детям. Будущие исследования могут предоставить информацию о минимальной эффективной ионтофоретической дозе для дермальной анестезии у детей и сравнение анестезирующей эффективности и удовлетворенности ионтофорезом лидокаина с местными анестетическими кремами и подкожной инфильтрацией. [19]

Нефармакологическое лечение боли, связанной с венепункцией у детей, включает гипноз и отвлечение. Эти методы лечения уменьшили сообщаемую самим пациентом боль, а в сочетании с когнитивно-поведенческой терапией (КПТ) уменьшение боли было еще больше. Другие вмешательства не были признаны эффективными, и это внушение, выдувание воздуха и отвлечение с родительским коучингом, которые не отличались от контроля боли и дистресса. [22]

С иглой и шприцем

Некоторые работники здравоохранения предпочитают использовать технику шприца -иглы для венепункции. Sarstedt производит систему забора крови (S-Monovette), которая использует этот принцип. [23] Этот метод может быть предпочтительным для пожилых людей, больных раком, с тяжелыми ожогами, ожирением или в случаях, когда вены ненадежны или хрупки. Поскольку шприцы управляются вручную, величину применяемого отсасывания можно легко контролировать. Это особенно полезно, когда вены маленькие и могут спадаться под действием отсасывающей трубки. У детей или в других случаях, когда количество получаемой крови может быть ограничено, может быть полезно знать, сколько крови можно получить, прежде чем распределять ее между различными добавками, которые потребуются в лаборатории. Другой альтернативой является забор крови из постоянных канюль. [24]

Культуры крови

Бывают случаи, когда требуется сбор культуры крови. Культура определит, есть ли в крови патогены. Обычно кровь стерильна. При заборе крови из культур используйте стерильный раствор, такой как бетадин, а не спирт . Это делается с использованием стерильных перчаток, не вытирая хирургический раствор, не касаясь места прокола и не нарушая каким-либо образом стерильность процесса. Крайне важно, чтобы процедура проводилась максимально стерильно, поскольку постоянное присутствие комменсалов кожи в культурах крови может указывать на эндокардит , но чаще всего они встречаются в качестве загрязнителей. Рекомендуется использовать абразивный метод подготовки кожи. Это удаляет верхние слои омертвевших клеток кожи вместе с их загрязняющими бактериями. [25] Традиционно использовался повидон-йод, но в Великобритании предпочтительнее использовать 2% раствор хлоргексидина в 70% растворе этанола или изопропилового спирта, и необходимо дать время, чтобы он высох. Верхние части любых контейнеров, используемых при заборе крови для посева, также следует дезинфицировать с помощью аналогичного раствора. Некоторые лаборатории активно не рекомендуют использовать йод, так как считается, что йод разрушает резиновую пробку, через которую кровь попадает в бутылку, тем самым позволяя загрязняющим веществам проникать в контейнер. [ необходима цитата ]

Кровь собирается в специальные транспортные бутылки, которые похожи на вакуумные трубки, но имеют другую форму. Бутылка для культивирования крови содержит транспортную среду для сохранения любых присутствующих микроорганизмов во время их транспортировки в лабораторию для культивирования. Поскольку неизвестно, являются ли патогены анаэробными (живущими без кислорода) или аэробными (живущими с кислородом), кровь собирается для проверки на оба типа. Сначала заполняется аэробная бутылка, а затем анаэробная бутылка. Однако, если сбор выполняется с помощью шприца, сначала заполняется анаэробная бутылка. Если используется набор для сбора бабочки, сначала заполняется аэробная бутылка, так что весь воздух в трубке выпускается в бутылку, содержащую кислород. [ необходима цитата ]

Специально разработанные бутылки для сбора крови устраняют необходимость в методе забора крови с помощью шприца или бабочки. Эти специально разработанные бутылки имеют длинные горлышки, которые подходят для держателей вакуумных трубок, используемых для обычного сбора венепункции. Эти бутылки также позволяют собирать другие образцы крови с помощью вакуумных трубок, которые собираются без дополнительной венепункции. [ необходима цитата ]

Количество собираемой крови имеет решающее значение для оптимального восстановления микроорганизмов. Обычно берут до 10 мл крови, но оно может варьироваться в зависимости от рекомендаций производителя бутылки для сбора. У младенцев и детей берут от 1 до 5 мл. Если собрать слишком мало крови, соотношение крови и питательного бульона будет подавлять рост микроорганизмов. Если собрать слишком много крови, существует риск анемии, вызванной больницей, а соотношение крови и питательного бульона будет отклоняться в противоположном направлении, что также не способствует оптимальному росту. [ необходима цитата ]

Затем бутылки инкубируют в специализированных установках в течение 24 часов, прежде чем лаборант изучает и/или тестирует их. Этот шаг позволяет очень небольшому количеству бактерий (потенциально 1 или 2 организма) размножаться до уровня, достаточного для идентификации +/-тестирования устойчивости к антибиотикам. Современные бутылки для гемокультуры имеют индикатор в основании, который меняет цвет в присутствии роста бактерий и может автоматически считываться машиной. (По этой причине наклейки со штрих-кодом, находящиеся на этих бутылках, не следует удалять, поскольку они используются автоматизированными системами лаборатории.) [ необходима цитата ]

Взятие образцов крови у животных

Образцы крови от живых лабораторных животных можно собирать следующими методами: [26] [27]

Объем взятия образца крови очень важен у экспериментальных животных. Все нетерминальные взятия крови без замены жидкостей ограничены до 10% от общего объема циркулирующей крови у здоровых, нормальных, взрослых животных за один раз, и взятие может быть повторено через три-четыре недели. В случае, если требуются повторные взятия образцов крови с короткими интервалами, максимум 0,6 мл/кг/день или 1,0% от общего объема крови животного можно забирать каждые 24 часа. Расчетный объем крови у взрослых животных составляет от 55 до 70 мл/кг массы тела. Следует проявлять осторожность в отношении пожилых и тучных животных. Если объем взятия крови превышает более 10% от общего объема крови, может потребоваться замена жидкости. Национальные институты здравоохранения (NIH) рекомендуют раствор Рингера с лактатом (LRS) в качестве лучшей замены жидкости. Если объем взятия крови превышает более 30% от общего объема циркулирующей крови, следует принять соответствующие меры, чтобы у животного не развилась гиповолемия. [27]

Тесты на алкоголь в крови

Обычно не рекомендуется использовать изопропиловый спирт для очистки места венепункции при получении образца для анализа крови на алкоголь . Это было связано в основном с потенциальными правовыми последствиями, связанными с использованием очистителей на основе спирта, которые теоретически могут повлиять на анализ. Было выпущено множество наборов для сбора алкоголя полицией, которые включают консервант фторид натрия/оксалат калия и очищающие средства на неспиртовой основе для обеспечения надлежащего сбора. Использование мыла и горячей воды или тампона с повидон-йодом являются рекомендуемыми альтернативами изопропиловому спирту в этом случае. [ необходима цитата ]

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ ab Higgins, Dan (28 сентября 2004 г.). «Venepuncture». Nursing Times . 100 (39): 30–1. PMID  15500234. Архивировано из оригинала 2 января 2020 г.
  2. ^ Dg, Dayyal (22 мая 2018 г.). "Процедуры сбора крови для гематологических исследований". BioScience Pakistan . ISSN  2521-5760. Архивировано из оригинала 18 сентября 2020 г.
  3. ^ Lavery, I; Ingram, P (август 2005). «Venepuncture: Best Practice» (Венепункции: Лучшая практика). Nurs Stand . 19 (49): 55–65. doi :10.7748/ns2005.08.19.49.55.c3936. PMID  16134421.
  4. ^ Ялонго, Кристиано; Бернардини, Серджио (15.02.2016). «Флеботомия, мост между лабораторией и пациентом». Biochemia Medica . 26 (1): 17–33. doi :10.11613/BM.2016.002. ISSN  1330-0962. PMC 4783087. PMID 26981016  . 
  5. ^ Japenga, Ann (30 мая 2006 г.). «„Маленькое укус“ может стать изнуряющей травмой». The New York Times . Получено 25 марта 2020 г.
  6. ^ Нельсон, Анджела. «Что такое флеботомия?». WebMD . Получено 01.02.2024 .
  7. ^ Макколл, Рут (2020). Основы флеботомии (7-е изд.). Wolters Kluwer. стр. 193. ISBN 9781496387073.
  8. ^ Перри, Салли (2007). «Спросите лабораторию: гемолиз образцов крови». Nursing.advanceweb.com . Получено 29.12.2013 .
  9. ^ ab Castellini MA, Castellini JM, Kirby VL (1992). «Влияние стандартных антикоагулянтов и процедур хранения на показатели глюкозы в плазме у тюленей». J Am Vet Med Assoc . 201 (1): 145–8. PMID  1644639.
  10. ^ "Коллекция". www.osfhealthcare.org . Получено 2019-12-08 .
  11. ^ Кристофер Паркер (2019-01-31). «Услуги флеботомии». Медицинская школа Университета Северной Каролины .
  12. ^ Пагана, К.Д.; Пагана, Ти Джей; Пагана, Теннесси (19 сентября 2014 г.). Справочник Мосби по диагностическим и лабораторным тестам - электронная книга. Elsevier Науки о здоровье. п. xiii. ISBN 978-0-323-22592-2.
  13. ^ "Глава 3.4.1: Культуры крови; общее обнаружение и интерпретация". Справочник по клиническим микробиологическим процедурам. Wiley. 6 августа 2020 г. ISBN 978-1-55581-881-4.
  14. ^ "Руководство по пробиркам и порядок отбора проб" (PDF) . Guthrie Laboratory Services . Июнь 2019 г.
  15. ^ "Требования к образцам/контейнеры". Патология и лабораторная медицина, Медицинская школа UCI . Получено 10 сентября 2020 г.
  16. ^ "Правильный порядок жеребьевки" (PDF) . Memorial Lab Services . Получено 2023-06-15 .
  17. ^ Амитава Дасгупта; Хорхе Л. Сепульведа (20 июля 2019 г.). Точные результаты в клинической лаборатории: руководство по обнаружению и исправлению ошибок. Elsevier Science. стр. 131. ISBN 978-0-12-813777-2.
  18. ^ «Какие типы образцов будет анализировать токсикологическая лаборатория?». Бюро расследований штата Оклахома . Получено 24.01.2024 .
  19. ^ аб Роуз, Джон Б.; Галинкин, Джеффри Л.; Янцен, Эллен С.; Кьяваччи, Розетта М. (2002). «Исследование ионтофореза лидокаина для детской венепункции». Анестезия и анальгезия . 94 (4): 867–71, оглавление. дои : 10.1097/00000539-200204000-00017 . PMID  11916787. S2CID  25591907.
  20. ^ Лакруа, Элен (октябрь 2008 г.). «Безыгольная система подачи порошка лидокаина уменьшила боль при венепункции у детей». Evidence-Based Nursing . 11 (4): 106. doi :10.1136/ebn.11.4.106. PMID  18815318. S2CID  44888650.
  21. ^ Робертсон, Дж. (январь 2006 г.). «Липосомальный лидокаин улучшил показатели успешности внутривенной катетеризации у детей». Evid-Based Nurs . 9 (1): 10. doi :10.1136/ebn.9.1.10. PMID  16437788. S2CID  45422187.
  22. ^ Робертсон, Дж. (июль 2007 г.). «Обзор: отвлечение, гипноз и комбинированные когнитивно-поведенческие вмешательства уменьшают боль и дистресс, связанные с иглами, у детей и подростков». Evid-Based Nurs . 10 (3): 75. doi :10.1136/ebn.10.3.75. PMID  17596380. S2CID  34364928.
  23. ^ "Сбор крови с помощью S-Monovette" (PDF) . Получено 27 мая 2020 г.
  24. ^ Лессер, Финниан Д.; Ланхэм, Дэвид А.; Дэвис, Дэниел (6 мая 2020 г.). «Кровь, взятая из существующих периферических внутривенных канюль, дает результаты, эквивалентные венепункции: систематический обзор». JRSM Open . 11 (5). doi : 10.1177/2054270419894817 . PMC 7236571. PMID  32523703 . 
  25. ^ Гарсия, РА; Шпицер, ЭД; Бодри, Дж; Бек, К; Диблази, Р; Джиллини-Блабак, М; Хаугард, К; Хойшнайдер, С; Кранц, БП; Маклин, К; Моралес, КЛ; Оуэнс, С; Пачиелла, МЭ; Торрегроса, Э (ноябрь 2015 г.). «Обзор передового опыта сбора и обработки культур крови многопрофильной группой для определения эффективных мер по повышению урожайности истинно положительных бактериемий, снижению заражения и устранению ложноположительных инфекций кровотока, связанных с центральной линией». Am J Infect Control . 43 (11): 1222–37. doi :10.1016/j.ajic.2015.06.030. PMID  26298636.
  26. ^ Hoff, J. (2000). "Методы сбора крови у мышей" (PDF) . Lab Animal . 29 (10): 47–53. Архивировано из оригинала (PDF) 2012-09-15 . Получено 2013-12-29 .
  27. ^ ab Parasuraman, S; Raveendran, R; Kesavan, R (2010). «Сбор образцов крови у мелких лабораторных животных». Журнал фармакологии и фармакотерапии . 1 (2): 87–93. doi : 10.4103/0976-500X.72350 . PMC 3043327. PMID  21350616 .