Газовые пузырьки , также известные как газовые вакуоли , представляют собой наноотсеки в некоторых прокариотических организмах, которые помогают им плавать. [1] Газовые пузырьки полностью состоят из белка ; липиды или углеводы не обнаружены.
Газовые пузырьки встречаются в основном в водных организмах, поскольку они используются для модуляции плавучести клетки и изменения ее положения в водной толще, чтобы она могла занять оптимальное положение для фотосинтеза или переместиться в места с большим или меньшим содержанием кислорода. [1] Организмы, которые могут всплывать на поверхность раздела воздух-жидкость, вытесняют других аэробов, которые не могут подниматься в водной толще, за счет использования кислорода в верхнем слое.
Кроме того, газовые везикулы могут использоваться для поддержания оптимальной солености путем размещения организма в определенных местах в стратифицированном водоеме для предотвращения осмотического шока . [2] Высокие концентрации растворенного вещества приведут к тому, что вода будет вытягиваться из клетки путем осмоса , вызывая лизис клетки. Способность синтезировать газовые везикулы является одной из многих стратегий, которые позволяют галофильным организмам переносить среду с высоким содержанием соли.
Газовые везикулы, вероятно, являются одним из самых ранних механизмов подвижности среди микроскопических организмов из-за того, что это наиболее распространенная форма подвижности, сохранившаяся в геноме прокариот, некоторые из которых развились около 3 миллиардов лет назад. [3] [4] Режимы активной подвижности, такие как движение жгутиков, требуют механизма, который мог бы преобразовывать химическую энергию в механическую, и, таким образом, являются гораздо более сложными и должны были развиться позже. Функции газовых везикул также в значительной степени сохраняются среди видов, хотя режим регуляции может различаться, что предполагает важность газовых везикул как формы подвижности. У некоторых организмов, таких как энтеробактерия Serratia sp. подвижность на основе жгутиков и производство газовых везикул регулируются противоположным образом одним связывающим РНК белком, RsmA, что предполагает альтернативные режимы адаптации к окружающей среде, которые могли бы развиться в различные таксоны посредством регуляции развития между подвижностью и флотацией. [5]
Хотя имеются данные, указывающие на раннюю эволюцию газовых пузырьков, перенос плазмиды служит альтернативным объяснением широко распространенной и консервативной природы органеллы. [4] Расщепление плазмиды в Halobacterium halobium привело к потере способности биосинтезировать газовые пузырьки, что указывает на возможность горизонтального переноса генов , который может привести к передаче способности производить газовые пузырьки между различными штаммами бактерий. [6]
Газовые везикулы, как правило, имеют форму лимона или цилиндра, полые трубки белка с коническими колпачками на обоих концах. Везикулы больше всего различаются по диаметру. Более крупные везикулы могут удерживать больше воздуха и использовать меньше белка, что делает их наиболее экономичными с точки зрения использования ресурсов, однако, чем больше везикула, тем структурно слабее она находится под давлением и тем меньшее давление требуется, чтобы везикула схлопнулась. Организмы эволюционировали, чтобы быть наиболее эффективными в использовании белка и использовать наибольший максимальный диаметр везикулы, который выдержит давление, которому может подвергнуться организм. Для того чтобы естественный отбор повлиял на газовые везикулы, диаметр везикул должен контролироваться генетикой. Хотя гены, кодирующие газовые везикулы, обнаружены у многих видов галоархей , только несколько видов их производят. Первый ген газовых везикул галоархей, GvpA, был клонирован из Halobacterium sp. NRC-1. [7] В образовании газовых пузырьков у галоархей участвуют 14 генов. [8]
Первый ген газовой везикулы, GvpA, был идентифицирован в Calothrix. [9] Существует по крайней мере два белка, которые составляют газовую везикулу цианобактерий: GvpA и GvpC. GvpA образует ребра и большую часть массы (до 90%) основной структуры. GvpA является сильно гидрофобным и может быть одним из самых гидрофобных известных белков. GvpC является гидрофильным и помогает стабилизировать структуру путем периодических включений в ребра GvpA. GvpC способен вымываться из везикулы и, как следствие, уменьшать прочность везикулы. Толщина стенки везикулы может составлять от 1,8 до 2,8 нм. Ребристая структура везикулы очевидна как на внутренней, так и на внешней поверхности с расстоянием между ребрами 4–5 нм. Везикулы могут иметь длину 100–1400 нм и диаметр 45–120 нм.
В пределах одного вида размеры газовых пузырьков относительно однородны со стандартным отклонением ±4%.
Похоже, что газовые пузырьки начинают свое существование как небольшие биконические (два конуса с плоскими основаниями, соединенными) структуры, которые увеличиваются до определенного диаметра, затем растут и увеличивают свою длину. Точно неизвестно, что контролирует диаметр, но это может быть молекула, которая мешает GvpA, или может измениться форма GvpA.
Образование газовых везикул регулируется двумя белками Gvp: GvpD, который подавляет экспрессию белков GvpA и GvpC, и GvpE, который индуцирует экспрессию. [10] Факторы внеклеточной среды также влияют на образование везикул, либо регулируя выработку белка Gvp, либо напрямую нарушая структуру везикул. [8] [11]
Было обнаружено, что интенсивность света по-разному влияет на производство и поддержание газовых везикул у разных бактерий и архей. Для Anabaena flos-aquae более высокая интенсивность света приводит к коллапсу везикул из-за увеличения давления тургора и большего накопления продуктов фотосинтеза. У цианобактерий производство везикул уменьшается при высокой интенсивности света из-за воздействия УФ-излучения на бактериальную поверхность, что может повредить бактериальный геном. [11]
Было обнаружено , что накопление глюкозы, мальтозы или сахарозы в Haloferax mediterranei и Haloferax volcanii подавляет экспрессию белков GvpA и, следовательно, снижает продукцию газовых везикул. Однако это происходило только на ранней фазе экспоненциального роста клетки. Образование везикул также могло быть вызвано снижением внеклеточной концентрации глюкозы. [12]
Было обнаружено, что недостаток кислорода отрицательно влияет на образование газовых везикул у галофильных архей. Halobacterium salinarum производит мало или не производит везикул в анаэробных условиях из-за сниженного синтеза транскриптов мРНК, кодирующих белки Gvp. H. mediterranei и H. volcanii не производят никаких везикул в бескислородных условиях из-за снижения синтезируемых транскриптов, кодирующих GvpA, и укороченных транскриптов, экспрессирующих GvpD. [12]
Было обнаружено, что повышенные внеклеточные уровни pH увеличивают образование везикул у видов Microcytis. При повышенном pH уровни транскриптов gvpA и gvpC увеличиваются, что позволяет большему воздействию рибосом для экспрессии и приводит к повышению регуляции белков Gvp. Это может быть связано с большей транскрипцией этих генов, сниженным распадом синтезированных транскриптов или более высокой стабильностью мРНК. [13]
Было обнаружено, что ультразвуковое облучение на определенных частотах разрушает газовые пузырьки в цианобактериях Spirulina platensis , предотвращая их цветение. [14]
В энтеробактериях; Serratia sp. штамм ATCC39006 , газовый везикула образуется только при достаточной концентрации сигнальной молекулы, N-ацилгомосеринлактона. В этом случае молекула, чувствительная к кворуму , N-ацилгомосеринлактон действует как морфоген, инициирующий развитие органеллы. [5] Это выгодно для организма, поскольку ресурсы для производства газовых везикул используются только при ограничении кислорода, вызванном ростом популяции бактерий.
Ген газовых везикул gvp C из Halobacterium sp. используется в качестве системы доставки для исследований вакцин.
Несколько характеристик белка, кодируемого геном газовых пузырьков gvp C, позволяют использовать его в качестве носителя и адъюванта для антигенов: он стабилен, устойчив к биологической деградации, выдерживает относительно высокие температуры (до 50 °C) и непатогенен для человека. [15] Несколько антигенов из различных человеческих патогенов были рекомбинированы в ген gvp C для создания субъединичных вакцин с длительными иммунологическими ответами. [16]
Различные геномные сегменты, кодирующие несколько белков патогена Chlamydia trachomatis , включая MOMP, OmcB и PompD, присоединены к гену gvp C Halobacteria . Оценки клеток in vitro показывают экспрессию генов Chlamydia на поверхности клеток с помощью методов визуализации и показывают характерные иммунологические реакции, такие как активность TLR и выработка провоспалительных цитокинов. [17] Ген газовых пузырьков может быть использован в качестве средства доставки для создания потенциальной вакцины против Chlamydia. Ограничения этого метода включают необходимость минимизировать повреждение самого белка GvpC, одновременно включая как можно большую часть гена-мишени вакцины в сегмент гена gvp C. [17]
Похожий эксперимент использует тот же ген газовых пузырьков и секретируемый инозинфосфатный эффекторный белок SopB4 и SopB5 патогена Salmonella enterica для создания потенциального вектора вакцины. Иммунизированные мыши секретируют провоспалительные цитокины IFN-γ, IL-2 и IL-9. Также обнаруживаются антитела IgG. После заражения в отобранных органах, таких как селезенка и печень, не было обнаружено ни одного или было обнаружено значительно меньшее количество бактерий. Потенциальные вакцины, использующие газовые пузырьки в качестве антигенного дисплея, могут вводиться через слизистую оболочку в качестве альтернативного пути введения, что повышает их доступность для большего числа людей и вызывает более широкий спектр иммунных реакций в организме. [15]
Газовые пузырьки обладают несколькими физическими свойствами, которые делают их видимыми на различных медицинских устройствах визуализации . [18] Способность газовых пузырьков рассеивать свет использовалась в течение десятилетий для оценки их концентрации и измерения давления их коллапса. Оптический контраст газовых пузырьков также позволяет им служить контрастными агентами в оптической когерентной томографии с применением в офтальмологии . [19] Разница в акустическом импедансе между газом в их ядрах и окружающей жидкостью дает газовым пузырькам надежный акустический контраст. [20] Более того, способность некоторых оболочек газовых пузырьков изгибаться генерирует гармонические ультразвуковые эхо, которые улучшают соотношение контрастности к ткани. [21] Наконец, газовые пузырьки можно использовать в качестве контрастных агентов для магнитно-резонансной томографии (МРТ), полагаясь на разницу между магнитной восприимчивостью воздуха и воды. [22] Возможность неинвазивного коллапса газовых пузырьков с помощью волн давления обеспечивает механизм стирания их сигнала и улучшения их контрастности. Вычитание изображений до и после акустического коллапса позволяет устранить фоновые сигналы, что улучшает обнаружение газовых пузырьков.
Гетерологичная экспрессия газовых везикул в бактериальных [23] и млекопитающих [24] клетках позволила использовать их в качестве первого семейства акустических репортерных генов . [25] В то время как флуоресцентные репортерные гены, такие как зеленый флуоресцентный белок (GFP), широко использовались в биологии, их применение in vivo ограничено глубиной проникновения света в ткань, обычно несколькими мм. Люминесценция может быть обнаружена глубже внутри ткани, но имеет низкое пространственное разрешение. Акустические репортерные гены обеспечивают субмиллиметровое пространственное разрешение и глубину проникновения в несколько сантиметров, что позволяет изучать in vivo биологические процессы глубоко внутри ткани.