stringtranslate.com

кинетопласт

Электронная микрофотография нормального кинетопласта (К) Trypanosoma brucei.

Кинетопласт — это сеть кольцевой ДНК (называемой кДНК) внутри митохондрии , которая содержит множество копий митохондриального генома . [1] [2] Наиболее распространенной структурой кинетопласта является диск, но они наблюдались и в других формах. Кинетопласты встречаются только у Excavata класса Kinetoplastida . Вариативность строения кинетопластов может отражать филогенные взаимоотношения между кинетопластидами. [3] Кинетопласт обычно прилегает к базальному телу жгутика организма , что позволяет предположить, что он связан с некоторыми компонентами цитоскелета . У Trypanosoma brucei это цитоскелетное соединение называется трехсторонним комплексом прикрепления и включает белок p166. [4]

Трипаносома

У трипаносом , группы жгутиковых простейших, кинетопласт существует в виде плотной гранулы ДНК внутри митохондрии. Trypanosoma brucei , паразит, вызывающий африканский трипаносомоз (африканскую сонную болезнь), является примером трипаносомы с кинетопластом. Его кинетопласт легко увидеть в образцах , окрашенных DAPI ( флуоресцентное окрашивание ДНК) или с помощью флуоресцентной гибридизации in situ (FISH) с BrdU, аналогом тимидина . [5]

Состав

Кинетопласт содержит кольцевую ДНК в двух формах: максикольцах и миникольцах . Размер максикругов составляет от 20 до 40 КБ, а на кинетопласт приходится несколько десятков. В одном кинетопласте содержится несколько тысяч миникружков, размер которых составляет от 0,5 до 1 КБ. Максициклы кодируют типичные белковые продукты, необходимые для митохондрий, которые зашифрованы. В этом заключается единственная известная функция мини-колец — производство направляющей РНК (гРНК) для декодирования этой зашифрованной информации максикольца, обычно посредством вставки или удаления остатков уридина . Сеть макси- и мини-кругов соединены в цепочку , образуя плоскую сеть, напоминающую кольчугу . Воспроизведение этой сети затем требует, чтобы эти кольца были отсоединены от родительского кинетопласта и впоследствии повторно соединены в дочернем кинетопласте. [5] [6] Этот уникальный способ репликации ДНК может вдохновить потенциальных мишеней для лекарств .

Наиболее изученной структурой кДНК является структура Crithidia fasciculata , цепчатый диск из круглых макси- и мини-кольцев кДНК, большинство из которых не являются сверхспиральными . [3] Снаружи от диска кДНК, но непосредственно рядом находятся два комплекса белков, расположенных на расстоянии 180˚ друг от друга и участвующих в репликации мини-кольца. [1] [2] [5] [6]

Вариации

Также наблюдались вариации сетей кинетопластов, которые описываются расположением и расположением их кДНК.

Наличие такого разнообразия структур кДНК усиливает эволюционное родство между видами кинетопластид. Поскольку пан-кДНК больше всего напоминает ДНК- плазмиду , она может быть предковой формой кДНК. [3]

Репликация

Иллюстрация расположения комплекса репликации белка в кинетопласте и миграции миникольцев в белковый комплекс.
Рисунок 8. Иллюстрация расположения антиподального белкового комплекса относительно кинетопластного диска (вверху) и миграции миникольца к этим комплексам для репликации (внизу).

Репликация кинетопласта происходит одновременно с дупликацией соседнего жгутика и непосредственно перед репликацией ядерной ДНК . В традиционной сети кДНК Crithidia fasciculata инициации репликации способствует разъединение мини-колец кДНК с помощью топоизомеразы II . Свободные миникольца высвобождаются в область между кинетопластом и митохондриальной мембраной, называемую кинетофлагеллярной зоной (КФЗ). [2] [3] [6] После репликации миникольца мигрируют неизвестными механизмами к антиподальным белковым комплексам, которые содержат несколько белков репликации, включая эндонуклеазу , хеликазу , ДНК-полимеразу , ДНК-примазу и ДНК-лигазу , которые инициируют восстановление оставшихся разрывов в недавно реплицированные мини-круги. [5]

Этот процесс происходит по одному миникольцу за раз, и лишь небольшое количество миникругов не связаны в любой момент времени. Чтобы отслеживать, какие мини-кольца были реплицированы, после повторного присоединения к сети кДНК в возникающих мини-кольцах остается небольшой пробел, который идентифицирует их как уже реплицированные. Миникольца, которые еще не реплицировались, все еще ковалентно замкнуты. Сразу после репликации каждое потомство прикрепляется к сети кДНК, проксимальной к антиподальным белковым комплексам, и разрывы частично восстанавливаются. [1] [6]

Иллюстрация вращения кинетопласта во время репликации мини-кольца.
Рисунок 9. Иллюстрация вращения кинетопласта во время репликации мини-кольца.
При делении T. brucei первым делится кинетопласт (K), а затем ядро ​​(N).

По мере репликации мини-колец, чтобы предотвратить образование новых мини-колец, вся сеть кДНК будет вращаться вокруг центральной оси диска. Считается, что вращение напрямую связано с репликацией соседнего жгутика, поскольку дочернее базальное тело также будет вращаться вокруг материнского базального тела во времени и способом, аналогичным вращению кинетопласта. Вращаясь, мини-кольца дочернего кинетопласта собираются по спирали и начинают двигаться внутрь к центру диска, поскольку новые мини-кольца разъединяются и перемещаются в KFZ для репликации. [2] [5] [6]

Хотя точные механизмы кДНК максикольца еще предстоит определить так же подробно, как и кДНК миникольца, наблюдается структура, называемая nabelschnur ( по -немецки « пуповина »), которая связывает сети дочерних кДНК, но в конечном итоге рвется во время разделения. С помощью зондов FISH для нацеливания на набельшнура было обнаружено, что он содержит кДНК максикольца. [5]

Репликация кинетопласта описывается как происходящая в пять стадий, каждая из которых связана с репликацией соседнего жгутика.

восстановление ДНК

Trypanosoma cruzi способна восстанавливать нуклеотиды в своей геномной или кинетопластной ДНК , которые были повреждены активными формами кислорода , вырабатываемыми хозяином паразита во время инфекции. [7] ДНК-полимераза бета , экспрессируемая в T. cruzi, используется для устранения окислительных повреждений ДНК в процессе эксцизионной репарации оснований . Похоже, что ДНК-полимераза бета действует во время репликации ДНК кинетопласта , восстанавливая окислительные повреждения ДНК, вызванные генотоксическим стрессом в этой органелле. [7]

Рекомендации

  1. ^ abc Шапиро Т.А.; Энглунд П.Т. (1995). «Строение и репликация ДНК кинетопластов». Анну. Преподобный Микробиол . 49 : 117–43. дои : 10.1146/annurev.mi.49.100195.001001. ПМИД  8561456.
  2. ^ abcd Шломай Дж (2004). «Строение и репликация ДНК кинетопластов». Курс. Мол. Мед . 4 (6): 623–47. дои : 10.2174/1566524043360096. ПМИД  15357213.
  3. ^ abcdefgh Люкс Дж. и др. (2002). «Сеть ДНК кинетопластов: эволюция невероятной структуры». Эукариотическая клетка . 1 (4): 495–502. doi : 10.1128/ec.1.4.495-502.2002. ПМЦ 117999 . ПМИД  12455998. 
  4. ^ Чжао, Z; Линдси, Мэн; Рой Чоудхури, А; Робинсон, доктор медицинских наук; Энглунд, ПТ (2008). «P166, связь между митохондриальной ДНК трипаносомы и жгутиком, опосредует сегрегацию генома». Журнал ЭМБО . 27 (1): 143–54. doi : 10.1038/sj.emboj.7601956. ПМК 2206137 . ПМИД  18059470. 
  5. ^ abcdefg Gluenz E и др. (март 2011 г.). «Цикл репликации кинетопластов у Trypanosoma brucei регулируется клеточным морфогенезом, опосредованным цитоскелетом». Молекулярно-клеточная биология . 31 (5): 1012–1021. дои : 10.1128/MCB.01176-10. ПМК 3067821 . ПМИД  21173163. 
  6. ^ abcde Торри, А. и др. Репликация ДНК в эукариотических клетках . Лабораторный пресс Колд-Спринг-Харбор. 1996. Страницы = 1029–42. ISBN 0-87969-459-9 
  7. ^ ab Шамбер-Рейс Б.Л., Нарделли С., Режис-Сильва К.Г., Кампос ПК, Серкейра П.Г., Лима С.А., Франко Г.Р., Маседо А.М., Пенья С.Д., Казо К., Хоффманн Дж.С., Мотта М.К., Шенкман С., Тейшейра С.М., Мачадо Ч.Р. (2012). «ДНК-полимераза бета Trypanosoma cruzi участвует в репликации ДНК кинетопластов и восстановлении окислительных повреждений». Мол. Биохим. Паразитол . 183 (2): 122–31. дои : 10.1016/j.molbiopara.2012.02.007 . ПМИД  22369885.