stringtranslate.com

Sulfolobus solfataricus

Saccharolobus solfataricus — вид термофильных архей . Он был перенесен из рода Sulfolobus в новый род Saccharolobus с описанием Saccharolobus caldissimus в 2018 году. [ 1]

Впервые он был выделен и обнаружен в вулкане Сольфатара (в честь которого он впоследствии был назван) в 1980 году двумя немецкими микробиологами Карлом Сеттером и Вольфрамом Циллигом, на вулкане Сольфатара (Пишарелли-Кампания, Италия). [2]

Однако эти организмы не изолированы от вулканов, а встречаются по всему миру в таких местах, как горячие источники. Вид лучше всего растет при температуре около 80 °C, уровне pH от 2 до 4 и достаточном количестве серы для метаболизма solfataricus с целью получения энергии. Эти условия квалифицируют его как экстремофила , и он конкретно известен как термоацидофил из-за его предпочтения к высоким температурам и низким уровням pH, а также он находится в аэробных и гетеротропных категориях по своей метаболической системе. [3] Он обычно имеет сферическую форму клетки и часто образует доли. Будучи автотрофом, он получает энергию от роста на сере или даже различных органических соединениях. [4]

В настоящее время это наиболее широко изученный организм, который находится в ветви Thermoproteota . Solfataricus исследуются на предмет их методов репликации ДНК, клеточного цикла, хромосомной интеграции, транскрипции, процессинга РНК и трансляции. Все данные указывают на то, что организм имеет большой процент генов, специфичных для архей, что демонстрирует различия между тремя типами микробов: археями , бактериями и эукариотами .

Геном

Sulfolobus solfataricus является наиболее изученным микроорганизмом с молекулярной, генетической и биохимической точек зрения благодаря своей способности процветать в экстремальных условиях; его легко культивировать в лабораторных условиях; более того, он может обмениваться генетическим материалом посредством процессов трансформации, трансдукции и конъюгации.

Основной мотивацией для секвенирования этих микроорганизмов является термостабильность белков , которые обычно денатурируют при высокой температуре . Полная последовательность генома S. solfataricus была завершена в 2001 году. [5] На одной хромосоме находится 2 992 245 пар оснований, которые кодируют 2 977 белков и обильные РНК. Одна треть кодируемых S. solfataricus белков не имеет гомологов в других геномах. Для оставшихся кодируемых белков 40% специфичны для Archaea , 12% являются общими с Bacteria и 2,3% являются общими с Eukarya .; [6] 33% этих белков кодируются исключительно в Sulfolobus . Большое количество ORF ( открытая рамка считывания ) очень похожи в Thermoplasma . [3]

Малые ядрышковые РНК (snoRNA), уже присутствующие у эукариот, также были идентифицированы у S.Solfataricus и S.acidolcaldarius . Они уже известны по роли, которую они играют в посттранскрипционных модификациях и удалении интронов из рибосомальной РНК у Eucarya. [7]

Геном Sulfolobus характеризуется наличием коротких тандемных повторов, вставок и повторяющихся элементов, он отличается широким спектром разнообразия, поскольку имеет 200 различных элементов последовательности вставок IS.

Термофильная обратная гираза

Стабилизация двойной спирали против денатурации в археях обусловлена ​​наличием особого специфического термофильного фермента , обратной гиразы. Он был обнаружен в гипертермофильных и термофильных археях и бактериях. В Sulfolobus есть два гена , каждый из которых кодирует обратную гиразу. [8] Он определяется как атипичная ДНК- топоизомераза , и его основная активность заключается в образовании положительных супервитков в замкнутой кольцевой ДНК. Положительная суперспирализация важна для предотвращения образования открытых комплексов. Обратные гиразы состоят из двух доменов: первый из них — хеликазоподобный , а второй — топоизомераза I. Возможной ролью обратной гиразы может быть использование положительной суперспирализации для сборки хроматин-подобных структур. [9] В 1997 году ученые обнаружили еще одну важную особенность Sulfolobus : этот микроорганизм содержит топоизомеразу типа II, называемую TopoVI, субъединица А которой гомологична фактору мейотической рекомбинации Spo11 , который играет основную роль в инициации мейотической рекомбинации у всех Eucarya. [10] [11]

S. solfataricus состоит из трех топоизомераз типа I, TopA и двух обратных гираз, TopR1 и TopR2, и одной топоизомеразы типа II, TopoVI. [12]

ДНК-связывающие белки

В Phylum Thermoproteota есть три белка, которые связывают малую бороздку ДНК , как гистоны : Alba, Cren7 и Sso7d, которые модифицируются после процесса трансляции. Они небольшие и были обнаружены в нескольких штаммах Sulfolobus, но не в других геномах. Хроматиновый белок в Sulfolobus составляет 1-5% от общего числа. Они могут иметь как структурные, так и регуляторные функции. Они выглядят как человеческие белки HMG-box из-за их влияния на геномы, на экспрессию и стабильность, а также на эпигенетические процессы. [13] У видов, у которых отсутствуют гистоны, они могут быть ацетилированы и метилированы, как эукариотические гистоны. [14] [15] [16] [17] Штаммы Sulfolobus представляют различные специфические белки, связывающие ДНК, такие как семейство белков Sso7d. Они стабилизируют двойную спираль, предотвращая денатурацию при высокой температуре, тем самым способствуя отжигу выше точки плавления . [18]

Основной компонент хроматина архей представлен белком семейства Sac10b, известным как Alba (ацетилирование снижает сродство связывания). [19] [20] Эти белки представляют собой небольшие, основные и димерные белки, связывающие нуклеиновые кислоты. Кроме того, он сохраняется в большинстве секвенированных геномов архей. [21] [22] Например, состояние ацетилирования Alba влияет на доступ промотора и транскрипцию in vitro, тогда как состояние метилирования другого белка хроматина Sulfolobus , Sso7D, изменяется в зависимости от температуры культивирования. [23] [24]

Работа группы Вольфрама Циллига, представляющая ранние доказательства эукариотических характеристик транскрипции у архей, с тех пор сделала Sulfolobus идеальной модельной системой для изучения транскрипции. Недавние исследования Sulfolobus, в дополнение к другим видам архей, в основном сосредоточены на составе, функции и регуляции транскрипционного аппарата у этих организмов и на фундаментальных консервативных аспектах этого процесса как у эукариот, так и у архей. [25]

перенос ДНК

Воздействие на Saccharolobus solfataricus агентов, повреждающих ДНК, УФ-излучения , блеомицина или митомицина С, вызывает клеточную агрегацию. [26] Другие физические стрессоры, такие как изменения pH или температурный сдвиг, не вызывают агрегацию, что позволяет предположить, что индукция агрегации вызвана именно повреждением ДНК. Ajon et al. [27] показали, что клеточная агрегация, вызванная УФ-излучением, опосредует обмен хромосомными маркерами с высокой частотой. Скорости рекомбинации превышали таковые в неиндуцированных культурах на три порядка. Frols et al. [26] [28] и Ajon et al. [27] выдвинули гипотезу, что процесс переноса ДНК, индуцируемый УФ-излучением, и последующая гомологичная рекомбинационная репарация представляют собой важный механизм поддержания целостности хромосом. Эта реакция может быть примитивной формой сексуального взаимодействия, похожей на более хорошо изученную бактериальную трансформацию, которая также связана с переносом ДНК между клетками, приводящим к гомологичной рекомбинационной репарации повреждений ДНК. [29]

Метаболизм

Известно, что Sulfolobus solfataricus растет хемоорганотрофно, в присутствии кислорода, на различных органических соединениях, таких как сахара, спирты, аминокислоты и ароматические соединения, такие как фенол . [30]

Он использует модифицированный путь Энтнера-Дудроффа для окисления глюкозы, а полученные молекулы пирувата могут быть полностью минерализованы в цикле трикарбоновых кислот . [30]

Молекулярный кислород является единственным известным акцептором электронов в конце цепи переноса электронов . [31] Помимо органических молекул, этот вид Archea может также использовать сероводород [6] и элементарную серу в качестве доноров электронов и фиксировать CO2 , возможно, посредством цикла HP/HB, [30] что делает его также способным жить хемоавтотрофно. Недавние исследования также обнаружили способность расти, хотя и медленно, окисляя молекулярный водород. [1]

Ферредоксин

Предполагается, что ферредоксин действует как основной переносчик электронов в метаболизме S. solfataricus . Это контрастирует с большинством видов в пределах Bacteria и Eukarya, которые обычно полагаются на NADH как на основной переносчик электронов. S. solfataricus имеет сильные эукариотические черты в сочетании со многими уникальными способностями, специфичными для архей. Результаты исследований были получены из различных методов их механизмов ДНК, клеточных циклов и переходного аппарата. В целом, исследование было ярким примером различий, обнаруженных в Thermoproteota и « Euryarchaeota ». [6] [32]

Экология

Место обитания

Фумарола вулкана Сольфатара - Кампания, Италия.

S. solfataricus — это экстремально термофильная архея, как и остальные виды рода Sulfolobus, оптимальные условия для роста у нее в районах с сильной вулканической активностью, с высокой температурой и очень кислым pH, [33] эти специфические условия типичны для вулканических районов, таких как гейзеры или термальные источники, на самом деле наиболее изученными странами, где были обнаружены микроорганизмы, являются: США (Йеллоустонский национальный парк), [34] Новая Зеландия, [35] Исландия и Италия, известные такими вулканическими явлениями. Исследование, проведенное группой индонезийских ученых, показало наличие сообщества Sulfolobus также на Западной Яве, подтвердив, что высокие температуры, низкий pH и присутствие серы являются необходимыми условиями для роста этих микробов. [36]

Подкисление почвы

S. solfataricus способен окислять серу в соответствии с метаболической стратегией, одним из продуктов этих реакций является H+ и, следовательно, это приводит к медленному закислению окружающей территории. Закисление почвы увеличивается в местах, где есть выбросы загрязняющих веществ от промышленной деятельности, и этот процесс уменьшает количество гетеротрофных бактерий, участвующих в разложении, которые имеют основополагающее значение для переработки органического вещества и, в конечном счете, для удобрения почвы. [37]

Биотехнология: Освоение ресурсовСульфолобус

Сегодня во многих областях применения мы заинтересованы в использовании Sulfolobus sulfataricus в качестве источника ферментов термостабильности для исследований и диагностики, а также в пищевой, текстильной и чистящей промышленности, целлюлозно-бумажной промышленности. Кроме того, этот фермент перегружен из-за его каталитического разнообразия, высокой стабильности pH и температуры, повышенной устойчивости к органическим растворителям и устойчивости к протеолизу. [38] [39]

В настоящее время все большее значение приобретают тетраэфирные липиды, мембранные везикулы с антимикробными свойствами, компоненты трегалозы и новые β-галактоолигосахариды. [40]

β-галактозидаза

Термостабильный фермент β-галактозидаза, выделенный из экстремально термофильной архебактерии Sulfolobus solfataricus, штамм МТ-4.

Этот фермент используется во многих промышленных процессах очистки и характеристики физико-химических свойств жидкостей, содержащих лактозу. [41]

Протеазы

Промышленность заинтересована в стабильных протеазах, а также во многих различных сульфолобусных протеазах, которые были изучены. [42]

Была описана активная аминопептидаза , связанная с шаперонином Solfobulus solfataricus MT4 . [43]

Соммаруга и др. (2014) [44] также улучшили стабильность и выход реакции хорошо охарактеризованной карбоксипептидазы из S.solfataricus MT4 с помощью магнитных наночастиц, иммобилизующих фермент.

Эстеразы/Липазы

Новый термостабильный внеклеточный липолитический фермент сериновая арилэстераза , который был первоначально обнаружен из-за его большой активности в гидролизе органофосфатов из термоацидофильной археи Sulfolobus solfataricus P1 . [45]

Шаперонины

В ответ на температурный шок (50,4 °C) в клетках E.Coli был эффективно использован крошечный белок теплового оглушения (S.so-HSP20) из S.solfataricus P2 для улучшения толерантности. [46]

Ввиду того, что шаперонин Ssocpn (920 кДа), который включает АТФ , K+ и Mg2+, но не продуцировал никаких дополнительных белков в S.solfataricus для снабжения разрушенных и динамических белков из денатурированных материалов, он хранился в ячейке ультрафильтрации, в то время как ренатурированные субстраты перемещались через пленку. [47]

Липосомы

Из-за тетраэфирного липидного материала мембрана экстремально термофильных архей уникальна по своему составу. Липиды архей являются перспективным источником липосом с исключительной стабильностью температуры и pH и герметичностью против утечки растворенного вещества. Такие археосомы являются возможными инструментами для доставки лекарств, вакцин и генов. [48]

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ ab Sakai HD, Kurosawa N (апрель 2018 г.). "Saccharolobus caldissimus gen. nov., sp. nov., факультативно анаэробная железовосстанавливающая гипертермофильная архея, выделенная из кислого наземного горячего источника, и переклассификация Sulfolobus solfataricus как Saccharolobus solfataricus comb. nov. и Sulfolobus shibatae как Saccharolobus shibatae comb. nov". Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии . 68 (4): 1271–1278. doi : 10.1099/ijsem.0.002665 . PMID  29485400. S2CID  4528286.
  2. ^ «Где впервые был обнаружен Sulfolobus solfataricus?». www.intercept.cnrs.fr . 15 января 2019 г.
  3. ^ ab Ciaramella M, Pisani FM, Rossi M (август 2002 г.). «Молекулярная биология экстремофилов: недавний прогресс в изучении гипертермофильного археона Sulfolobus». Антони ван Левенгук . 81 (1–4): 85–97. doi :10.1023/A:1020577510469. PMID  12448708. S2CID  8330296.
  4. ^ Брок ТД, Брок КМ, Белли РТ, Вайс РЛ (1972). «Sulfolobus: новый род сероокисляющих бактерий, живущих при низком pH и высокой температуре». Архив микробиологии . 84 (1): 54–68. doi :10.1007/bf00408082. PMID  4559703. S2CID  9204044.
  5. ^ Charlebois RL, Gaasterland T, Ragan MA, Doolittle WF, Sensen CW (июнь 1996 г.). «Проект генома Sulfolobus solfataricus P2». FEBS Letters . 389 (1): 88–91. doi :10.1016/s0014-5793(97)81281-1. PMID  8682213. S2CID  221414122.
  6. ^ abc She Q, Singh RK, Confalonieri F, Zivanovic Y, Allard G, Awayez MJ, et al. (Июль 2001 г.). «Полный геном кренархеона Sulfolobus solfataricus P2». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 98 (14): 7835–40. Bibcode : 2001PNAS...98.7835S. doi : 10.1073 /pnas.141222098 . PMC 35428. PMID  11427726. 
  7. ^ Omer AD, Lowe TM, Russell AG, Ebhardt H, Eddy SR, Dennis PP (апрель 2000 г.). «Гомологи малых ядрышковых РНК у архей». Science . 288 (5465): 517–22. Bibcode :2000Sci...288..517O. doi :10.1126/science.288.5465.517. PMID  10775111. S2CID  15552500.
  8. ^ Кутюрье М., Бизард А.Х., Гарнье Ф., Надаль М. (сентябрь 2014 г.). «Взгляд на клеточную вовлеченность двух обратных гираз из гипертермофильной археи Sulfolobus solfataricus». BMC Molecular Biology . 15 (1): 18. doi : 10.1186/1471-2199-15-18 . PMC 4183072. PMID  25200003 . 
  9. ^ Déclais AC, Marsault J, Confalonieri F, de La Tour CB, Duguet M (июнь 2000 г.). «Обратная гираза, два домена тесно взаимодействуют для содействия положительной суперспирализации». Журнал биологической химии . 275 (26): 19498–504. doi : 10.1074/jbc.m910091199 . PMID  10748189.
  10. ^ Bergerat A, de Massy B, Gadelle D, Varoutas PC, Nicolas A, Forterre P (март 1997). "Атипичная топоизомераза II из Archaea с последствиями для мейотической рекомбинации". Nature . 386 (6623): 414–7. Bibcode :1997Natur.386..414B. doi :10.1038/386414a0. PMID  9121560. S2CID  4327493.
  11. ^ Forterre P, Bergerat A, Lopez-Garcia P (май 1996). «Уникальная топология ДНК и топоизомеразы ДНК гипертермофильных архей». FEMS Microbiology Reviews . 18 (2–3): 237–48. doi : 10.1111/j.1574-6976.1996.tb00240.x . PMID  8639331.
  12. ^ Кутюрье М., Гадель Д., Фортерре П., Надаль М., Гарнье Ф. (ноябрь 2019 г.). «Обратная гираза TopR1 отвечает за гомеостатический контроль суперспирализации ДНК у гипертермофильной археи Sulfolobus solfataricus». Молекулярная микробиология . 113 (2): 356–368. doi : 10.1111/mmi.14424 . PMID  31713907. S2CID  207945754.
  13. ^ Malarkey CS, Churchill ME (декабрь 2012 г.). «Групповой блок высокой мобильности: главный игрок полезности клетки». Trends in Biochemical Sciences . 37 (12): 553–62. doi :10.1016/j.tibs.2012.09.003. PMC 4437563. PMID  23153957 . 
  14. ^ Payne S, McCarthy S, Johnson T, North E, Blum P (ноябрь 2018 г.). "Sulfolobus solfataricus". Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 115 (48): 12271–12276. doi : 10.1073/pnas.1808221115 . PMC 6275508. PMID  30425171 . 
  15. ^ Guagliardi A, Cerchia L, Moracci M, Rossi M (октябрь 2000 г.). «Хромосомный белок sso7d кренархеона Sulfolobus solfataricus спасает агрегированные белки в зависимости от гидролиза АТФ». Журнал биологической химии . 275 (41): 31813–8. doi : 10.1074/jbc.m002122200 . PMID  10908560.
  16. ^ Шехи Э., Граната В., Дель Веккио П., Бароне Г., Фузи П., Тортора П., Грациано Г. (июль 2003 г.). «Термическая стабильность и активность связывания ДНК вариантной формы белка Sso7d из археона Sulfolobus solfataricus , усеченного по лейцину 54». Биохимия . 42 (27): 8362–8. doi :10.1021/bi034520t. PMID  12846585.
  17. ^ Baumann H, Knapp S, Karshikoff A, Ladenstein R, Härd T (апрель 1995 г.). «ДНК-связывающая поверхность белка Sso7d из Sulfolobus solfataricus». Журнал молекулярной биологии . 247 (5): 840–6. doi : 10.1006/jmbi.1995.0184 . PMID  7723036.
  18. ^ Guagliardi A, Napoli A, Rossi M, Ciaramella M (апрель 1997 г.). «Отжиг комплементарных цепей ДНК выше точки плавления дуплекса, стимулируемый архейным белком». Журнал молекулярной биологии . 267 (4): 841–8. doi :10.1006/jmbi.1996.0873. PMID  9135116.
  19. ^ Forterre P, Confalonieri F, Knapp S (май 1999). «Идентификация гена, кодирующего архейно-специфические ДНК-связывающие белки семейства Sac10b». Молекулярная микробиология . 32 (3): 669–70. doi :10.1046/j.1365-2958.1999.01366.x. PMID  10320587. S2CID  28146814.
  20. ^ Xue H, Guo R, Wen Y, Liu D, Huang L (июль 2000 г.). «Обильный ДНК-связывающий белок из гипертермофильной археи Sulfolobus shibatae влияет на суперспирализацию ДНК в зависимости от температуры». Journal of Bacteriology . 182 (14): 3929–33. doi :10.1128/JB.182.14.3929-3933.2000. PMC 94576 . PMID  10869069. 
  21. ^ Goyal M, Banerjee C, Nag S, Bandyopadhyay U (май 2016 г.). «Семейство белков Alba: структура и функция». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Белки и протеомика . 1864 (5): 570–83. doi :10.1016/j.bbapap.2016.02.015. PMID  26900088.
  22. ^ Wardleworth BN, Russell RJ, Bell SD, Taylor GL, White MF (сентябрь 2002 г.). «Структура Alba: архейный хроматиновый белок, модулируемый ацетилированием». The EMBO Journal . 21 (17): 4654–62. doi :10.1093/emboj/cdf465. PMC 125410. PMID  12198167 . 
  23. ^ Bell SD, Botting CH, Wardleworth BN, Jackson SP, White MF (апрель 2002 г.). «Взаимодействие Alba, консервативного белка архейного хроматина, с Sir2 и его регуляция ацетилированием». Science . 296 (5565): 148–51. Bibcode :2002Sci...296..148B. doi :10.1126/science.1070506. PMID  11935028. S2CID  27858056.
  24. ^ Baumann H, Knapp S, Lundbäck T, Ladenstein R, Härd T (ноябрь 1994 г.). «Структура раствора и свойства связывания ДНК термостабильного белка из архея Sulfolobus solfataricus». Nature Structural Biology . 1 (11): 808–19. doi :10.1038/nsb1194-808. PMID  7634092. S2CID  37220619.
  25. ^ Zillig W, Stetter KO, Janeković D (июнь 1979). «ДНК-зависимая РНК-полимераза из архебактерии Sulfolobus acidocaldarius». European Journal of Biochemistry . 96 (3): 597–604. doi : 10.1111/j.1432-1033.1979.tb13074.x . PMID  380989.
  26. ^ ab Fröls S, Ajon M, Wagner M, Teichmann D, Zolghadr B, Folea M и др. (ноябрь 2008 г.). "УФ-индуцируемая клеточная агрегация гипертермофильной археи Sulfolobus solfataricus опосредована образованием пилей" (PDF) . Molecular Microbiology . 70 (4): 938–52. doi : 10.1111/j.1365-2958.2008.06459.x . PMID  18990182.
  27. ^ ab Ajon M, Fröls S, van Wolferen M, Stoecker K, Teichmann D, Driessen AJ, et al. (ноябрь 2011 г.). "УФ-индуцируемый обмен ДНК у гипертермофильных архей, опосредованный пилями типа IV" (PDF) . Молекулярная микробиология . 82 (4): 807–17. doi : 10.1111/j.1365-2958.2011.07861.x . PMID  21999488.
  28. ^ Fröls S, White MF, Schleper C (февраль 2009). «Реакции на повреждение ультрафиолетом в модельном архее Sulfolobus solfataricus». Biochemical Society Transactions . 37 (Pt 1): 36–41. doi :10.1042/BST0370036. PMID  19143598. S2CID  837167.
  29. ^ Бернстайн Х, Бернстайн К (2010). «Эволюционное происхождение рекомбинации во время мейоза». BioScience. 60 (7): 498–505. doi:10.1525/bio.2010.60.7.5. S2CID 86663600
  30. ^ abc Ulas T, Riemer SA, Zaparty M, Siebers B, Schomburg D (2012-08-31). "Реконструкция в масштабе генома и анализ метаболической сети гипертермофильного археона Sulfolobus solfataricus". PLOS ONE . ​​7 (8): e43401. Bibcode :2012PLoSO...743401U. doi : 10.1371/journal.pone.0043401 . PMC 3432047 . PMID  22952675. 
  31. ^ Саймон Г, Вальтер Дж, Забети Н, Комбе-Блан Ю, Аурия Р, ван дер Ост Дж, Касалот Л (октябрь 2009 г.). «Влияние концентрации O2 на Sulfolobus solfataricus P2». Письма FEMS по микробиологии . 299 (2): 255–60. дои : 10.1111/j.1574-6968.2009.01759.x . ПМИД  19735462.
  32. ^ Zillig W, Stetter KO, Wunderl S, Schulz W, Priess H, Scholz I (апрель 1980 г.). «Группа Sulfolobus-«Caldariella»: таксономия на основе структуры ДНК-зависимых РНК-полимераз». Архив микробиологии . 125 (3): 259–69. doi :10.1007/BF00446886. S2CID  5805400.
  33. ^ Grogan DW (декабрь 1989). «Фенотипическая характеристика архебактериального рода Sulfolobus: сравнение пяти штаммов дикого типа». Журнал бактериологии . 171 (12): 6710–9. doi :10.1128/jb.171.12.6710-6719.1989. PMC 210567. PMID  2512283. 
  34. ^ "Sulfolobus". Microbewiki .
  35. ^ Hetzer A, Morgan HW, McDonald IR, Daughney CJ (июль 2007 г.). «Микробная жизнь в бассейне Шампань, геотермальном источнике в Вайотапу, Новая Зеландия». Extremophiles . 11 (4): 605–14. doi :10.1007/s00792-007-0073-2. PMID  17426919. S2CID  24239907.
  36. ^ Адитиавати П., Йохандини Х., Мадаянти Ф. (2009). «Микробное разнообразие кислых горячих источников (кава худжан Б) в геотермальном поле в районе Камоджанг, западная Ява, Индонезия». Открытый микробиологический журнал . 3 : 58–66. дои : 10.2174/1874285800903010058 . ПМК 2681175 . ПМИД  19440252. 
  37. ^ Брайант РД, Горди ЕА, Лейшли ЕДж (1979). «Влияние закисления почвы на микрофлору почвы». Вода, воздух и загрязнение почвы . 11 (4): 437. Bibcode : 1979WASP...11..437B. doi : 10.1007/BF00283435. S2CID  96729369.
  38. ^ Степанкова, Вероника (14 октября 2013 г.). «Стратегии стабилизации ферментов в органических растворителях». ACS Catalysis . 3 (12): 2823–2836. doi :10.1021/cs400684x.
  39. ^ DANIEL, RM (1982). «Корреляция между термостабильностью белка и устойчивостью к протеолизу». Biochemical Journal . 207 (3): 641–644. doi :10.1042/bj2070641. PMC 1153914. PMID  6819862 . 
  40. ^ Квенбергер, Джулиан (2017). «Sulfolobus – потенциальный ключевой организм в будущей биотехнологии». Frontiers in Microbiology . 8 : 2474. doi : 10.3389 /fmicb.2017.02474 . PMC 5733018. PMID  29312184. 
  41. ^ M. PISANI, Francesca (1990). «Термостабильная P-галактозидаза из архебактерии Sulfolobus solfataricus». European Journal of Biochemistry . 187 (2): 321–328. doi : 10.1111/j.1432-1033.1990.tb15308.x . PMID  2105216.
  42. ^ Ханнер, Маркус (1990). Выделение и характеристика внутриклеточной аминопептидазы из экстремально термофильной архебактерии Sulfolobus solfataricus . Т. 1033. Elsevier BV стр. 148–153. doi :10.1016/0304-4165(90)90005-H. ISBN 0117536121. PMID  2106344. {{cite book}}: |journal=проигнорировано ( помощь )
  43. ^ Кондо, Ивано; Руджеро, Давиде (1998). «Новая аминопептидаза, связанная с шаперонином 60 кДа в термофильной архее Sulfolobus solfataricus. Mol. Microbiol». Молекулярная микробиология . 29 (3): 775–785. doi : 10.1046/j.1365-2958.1998.00971.x . PMID  9723917.
  44. ^ Sommaruga, Silvia (2014). «Мобилизация карбоксипептидазы из Sulfolobus solfataricus на магнитных наночастицах улучшает стабильность и функциональность фермента в органических средах. BMC Biotechnol». BMC Biotechnology . 14 (1): 82. doi : 10.1186/1472-6750-14-82 . PMC 4177664 . PMID  25193105. 
  45. ^ Park, Young-Jun (2016). «Очистка и характеристика нового индуцибельного термостабильного внеклеточного липолитического фермента из термоацидофильной археи Sulfolobus solfataricus P1». Журнал молекулярного катализа B: Enzymatic . 124 : 11–19. doi :10.1016/j.molcatb.2015.11.023.
  46. ^ Ли, Донг-Чол (август 2011 г.). «Термоустойчивость и молекулярная шаперонная функция малого белка теплового шока HSP20 из гипертермофильной археи Sulfolobus solfataricus P2. Шапероны клеточного стресса». Клеточный стресс и шапероны . 17 (1): 103–108. doi :10.1007/s12192-011-0289-z. PMC 3227843. PMID  21853411 . 
  47. ^ Cerchia, Laura (7 августа 1999 г.). «Архейный шаперонин-основанный реактор для ренатурации денатурированных белков. Экстремофил». Экстремофилы: жизнь в экстремальных условиях . 4 (1): 1–7. doi :10.1007/s007920050001. PMID  10741831. S2CID  25407893.
  48. ^ Б. Патель, Гиришчандра (1999). «Археобактериальные эфиролипидные липосомы (археосомы) как новые системы доставки вакцин и лекарств». Критические обзоры в биотехнологии . 19 (4): 317–357. doi :10.1080/0738-859991229170. PMID  10723627.

Дальнейшее чтение

Внешние ссылки