stringtranslate.com

Эпикутикулярный воск

Эпикутикулярный воск представляет собой восковой налет, покрывающий внешнюю поверхность кутикулы наземных растений . Он может образовывать беловатую пленку или налетать на листьях, плодах и других органах растения. Химически он состоит из гидрофобных органических соединений, в основном алифатических углеводородов с прямой цепью с множеством замещенных функциональных групп или без них . Основные функции эпикутикулярного воска – уменьшение смачивания поверхности и потери влаги. Другие функции включают отражение ультрафиолетового света, способствующее образованию ультрагидрофобной и самоочищающейся поверхности и действующее как поверхность, препятствующая подъему.

Химический состав

Обычными компонентами эпикутикулярного воска являются преимущественно алифатические углеводороды с прямой цепью , которые могут быть насыщенными или ненасыщенными и содержать множество функциональных групп, таких как -гидроксил , карбоксил и -кетоил в концевом положении. Это расширяет спектр состава воска до жирных кислот , первичных спиртов и альдегидов ; если замещение происходит в средней цепи, это приведет к образованию β - дикетонов и вторичных спиртов . [1] Другими основными компонентами эпикутикулярных восков являются длинноцепочечные н -алкановые кислоты, такие как C 24 , C 26 и C 28 . [2]

Морфология воска, визуализированная с помощью СЭМ: восковые канальцы с преобладанием нонакозана-10-ола на листе Thalictrum flavum glaucum L. (Desf.) на (а), трубочки с преобладанием β -дикетонов листа Eucalyptus Gunnii Hook на (b), лист воск Triticum aestivum 'Naturastar' на (с) и палочки, демонстрирующие терминальное дендритное ветвление, состоящее из сложной смеси нескольких соединений, на листе Brassica oleracea L. на (d). [3]

Эти воски могут состоять из множества соединений, которые различаются в зависимости от вида растений. Восковые трубочки и восковые пластинки часто имеют как химические, так и морфологические различия. Трубочки можно разделить на две группы; первый содержит в основном вторичные спирты, а второй - β -дикетоны. В тромбоцитах преобладают тритерпеноиды , алканы , альдегиды, сложные эфиры , вторичные спирты или флавоноиды . Однако химический состав не является диагностическим признаком канальца или тромбоцита, поскольку не определяет морфологию. [3]

Парафины встречаются , например, в листьях гороха и капусты . Листья карнаубской пальмы и банана содержат алкиловые эфиры. Асимметричный вторичный спирт 10-нонакозанол появляется в большинстве голосеменных растений , таких как гинкго двулопастный и ель ситкинская , а также во многих лютиковых , маковых и розоцветных , а также в некоторых мхах . Симметричные вторичные спирты обнаружены у Brassicaceae , включая Arabidopsis thaliana . Первичные спирты (чаще всего октакозан-1-ол ) встречаются в эвкалипте , бобовых и большинстве злаков Poaceae . Травы также могут содержать β-дикетоны, как и эвкалипт , самшит самшит и вересковые . Молодые листья бука , стебли сахарного тростника и плоды лимона содержат альдегиды. Тритерпены являются основным компонентом фруктовых восков яблок , слив и винограда . [1] [4] Циклические компоненты часто регистрируются в эпикутикулярных восках, как в Никотиане , но, как правило, являются второстепенными составляющими. Они могут включать фитостерины , такие как β-ситостерин , и пентациклические тритерпеноиды, такие как урсоловая кислота и олеаноловая кислота , и их соответствующие предшественники, α-амирин и β-амирин. [1]

Фарина

Многие виды рода Primula и папоротников, такие как Cheilanthes , Pityrogramma и Notholaena , а также многие роды суккулентных растений Crassulaceae , производят мучнистый, беловатый или бледно-желтый железистый секрет, известный как фарина, который не является эпикутикулярным воском, а состоит из в основном из кристаллов другого класса полифенольных соединений, известных как флавоноиды. [5] В отличие от эпикутикулярного воска, фарина секретируется специализированными железистыми волосками , а не кутикулой всего эпидермиса. [5]

Физические свойства

Кристаллы эпикутикулярного воска, окружающие устьичное отверстие на нижней поверхности листа розы.

Эпикутикулярные воски при температуре окружающей среды в основном представляют собой твердые вещества с температурой плавления выше 40 ° C (100 ° F). Они растворимы в органических растворителях, таких как хлороформ и гексан , что делает их доступными для химического анализа, но у некоторых видов этерификация кислот и спиртов в эстолиды или полимеризация альдегидов могут привести к образованию нерастворимых соединений. Растворяющие экстракты восков для кутикулы содержат как эпикутикулярный, так и кутикулярный воски, часто загрязненные липидами клеточных мембран нижележащих клеток. Эпикутикулярный воск теперь также можно выделить механическими методами, которые отличают эпикутикулярный воск вне кутикулы растения от кутикулярного воска, встроенного в полимер кутикулы. [6] Как следствие, теперь известно, что эти два слоя химически различны, [7] хотя механизм, который разделяет молекулярные частицы на два слоя, неизвестен. Недавние исследования сканирующей электронной микроскопии (СЭМ), атомно-силовой микроскопии (АСМ) и нейтронной рефлектометрии восстановленных восковых пленок обнаружили эпикутикулярные воски пшеницы; [8] состоит из поверхностных эпикутикулярных кристаллов и нижележащего пористого слоя фоновой пленки, который набухает при контакте с водой, что указывает на то, что фоновая пленка проницаема и восприимчива к переносу воды.

Эпикутикулярный воск может отражать ультрафиолетовый свет, например, белое меловое восковое покрытие Dudleya brittonii , которое имеет самую высокую отражательную способность к ультрафиолетовому свету (УФ) среди всех известных биологических веществ природного происхождения. [9]

Термин «сизоватый» используется для обозначения любой листвы, например, семейства Crassulaceae , которая кажется беловатой из-за воскового покрытия. Покрытия из эпикутикулярных флавоноидов можно назвать «фарина», а сами растения описываются как «мучные» или « мучные ». [10] : 51 

Кристаллы эпикутикулярного воска

Эпикутикулярный воск образует на поверхности растений кристаллические выступы, которые усиливают их водоотталкивающие свойства [11] , создают свойство самоочищения, известное как эффект лотоса [12] и отражают УФ- излучение. Форма кристаллов зависит от присутствующих в них восковых соединений. Асимметричные вторичные спирты и β-дикетоны образуют полые восковые нанотрубки , а первичные спирты и симметричные вторичные спирты образуют плоские пластины [13] [14] . Хотя они наблюдались с помощью просвечивающего электронного микроскопа [13] [15] и сканирующего электронного микроскопа [16]. ] процесс роста кристаллов никогда не наблюдался напрямую, пока Кох и его коллеги [17] [18] не изучили рост кристаллов воска на листьях подснежника ( Galanthus nivalis ) и других видов с помощью атомно-силового микроскопа . Эти исследования показывают, что кристаллы растут за счет расширения своих кончиков, что поднимает интересные вопросы о механизме транспорта молекул.

Методы измерения

Эпикутикулярные воски извлекаются из наземной, морской и озерной среды, что позволяет экстрагировать биомаркеры растворителем, а затем качественно и количественно определять профили с помощью газовой хроматографии, масс-спектрометрии (ГХ-МС) и пламенно-ионизационного детектора ГХ (ГХ-ПИД). ГХ-МС и ГХ-ПИД предпочтительны для идентификации и количественного определения н -алканов и н -алкановых кислот. Анализ изотопного соотношения (GC-IRMS) измеряет относительное содержание углерода, водорода и других изотопов с высокой точностью. Соотношение изотопов углерода между углеродом-13 и углеродом-12 выражается как δ 13 C относительно международного стандарта. Соотношение изотопов водорода между дейтерием и протием выражается как δD относительно международного стандарта. [19]

Использовать в качестве биомаркера

ГХ-МС трассировка н -алканов чет-нечет и н -алканов нечет-чет (вверху и внизу соответственно), углеродов, особенно длинных цепочек, образующихся наземными растениями для анализа C-13. [19]

[19] Эпикутикулярный воск использовался в качестве биомаркера для наблюдения за закономерностями эволюции человека. Эти липиды этих растительных восков были проанализированы при их извлечении из кернов океанов и озер , проектов бурения палеоозёр, археологических и геологических обнажений , пещерных отложений и антропогенных отложений . Эти данные дают представление об экологии растений в прошлом и стрессах окружающей среды , в частности, путем реконструкции ландшафтов с высоким таксономическим разрешением.

Эпикутикулярный воск δ 13 C является благоприятным биомаркером благодаря своим преимуществам: он не склонен к питанию, как биомаркеры зубной эмали , и более широко распространен, чем карбонаты палеопочв , которые смещены в зависимости от количества осадков. Этот маркер также может идентифицировать пути фотосинтеза C3 и C4 . Биосинтез этих липидов приводит к дальнейшему фракционированию , что приводит к уменьшению массы δ 13 C. Исследования стабильности изотопов , характеризующие диагенетический процесс, могут выявить изменение углерода и водорода посредством химической и микробной активности, но эти исследования часто дают неоднозначные результаты. Состояние сохранности растительного воска в почвах и отложениях до сих пор неизвестно из-за сложных взаимодействий в среде отложения, включая pH , микробные сообщества , щелочность , температуру и содержание кислорода/влаги.

δ 13 C растений высших порядков использовался на археологических памятниках голоцена и плейстоцена . Разнообразная среда современной Африки была проанализирована посредством интерпретации эпикутикулярных восковых прокси: от лесисто- луговой растительности (где гомолог C 31 наиболее распространен) до засушливых и полузасушливых регионов южной Африки (характеризующихся обилием C 29 ). Отложения палеоозера Туркана с востока (формация Варголо 3,45–3,4 млн лет назад) и запада (формация Начукуи 1,9–1,4 млн лет назад) позволяют предположить, что контролируемая прецессией летняя инсоляция является основным фактором гидрологии плиоцена и плейстоцена в бассейне. Вариации δD и δ 13 C в определенные даты совпадают с изменениями таких переменных, как эксцентриситет орбиты и орудия гоминидов . [19]

Химические соединения четырех наиболее распространенных н -алкильных соединений в эпикутикулярных восках земных восков, где I представляет собой н-алкан, II н-алканол, III н-алкановая кислота и IV восковой эфир. [20]

Эпикутикулярный воск и его преемники алифатические соединения также используются в качестве биомаркеров высших растений. Длинноцепочечные n -алкильные соединения из листьев сосудистых растений являются основными компонентами эпикутикулярных восков, которые устойчивы к деградации и, следовательно, являются эффективными биомаркерами для высших растений. Эти наземные биомаркеры также могут присутствовать в морских отложениях. Из-за отсутствия материала высших растений в водных средах наличие биомаркеров высших растений в этих экосистемах позволяет предположить, что эти биомаркеры были перенесены из их исходной наземной среды. Изотопный состав углерода, в частности, его значение δ 13 C, отражает их метаболизм и окружающую среду, поскольку 13 C дискриминируется во время фотосинтеза. [20]

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ abc Бейкер, EA (1982). «Химия и морфология растительных эпикутикулярных восков». Ин Катлер, диджей; Элвин, КЛ; Прайс, CE (ред.). Кутикула растения . Лондон: Академическая пресса. стр. 139–165. ISBN 0-12-199920-3.
  2. ^ Питерс, Кентукки; Уолтерс, CC; Молдаванин, Дж. М. (2005). Руководство по биомаркерам . Том. 1 (2-е изд.). Издательство Кембриджского университета . п. 47. ИСБН 0521781582.
  3. ^ Аб Кох, Керстин; Бартлотт, Вильгельм (2006). «Растительные эпикутикулярные воски: химия, форма, самосборка и функция». Коммуникации о натуральных продуктах . 1 (11): 1934578X0600101. дои : 10.1177/1934578X0600101123 . ISSN  1934-578X.
  4. ^ Холлоуэй, ПиДжей; Джеффри, CE (2005). «Эпикутикулярный воск». Энциклопедия прикладных наук о растениях . 3 : 1190–1204.
  5. ^ аб Уолтер К. Бласдейл (1945). «Состав твердого секрета Primula denticulata ». Журнал Американского химического общества . 67 (3): 491–493. дои : 10.1021/ja01219a036.
  6. ^ Энсикат, HJ; и другие. (2000). «Прямой доступ к кристаллам эпикутикулярного воска растений с помощью нового метода механической изоляции». Международный журнал наук о растениях . 161 (1): 143–148. дои : 10.1086/314234. PMID  10648204. S2CID  92392.
  7. ^ Джеттер, Р.; и другие. (2000). «Воски кутикулы листьев расположены в химически и механически отдельные слои: данные по Prunus laurocerasus L. Plant». Клетка и окружающая среда . 23 (6): 619–628. дои : 10.1046/j.1365-3040.2000.00581.x .
  8. ^ Памбу, Э.; и другие. (2016). «Структурные особенности восстановленных пленок пшеничного воска». JR Soc. Интерфейс . 13 (120). 20160396. дои : 10.1098/rsif.2016.0396 . ПМЦ 4971226 . ПМИД  27466439. 
  9. ^ Малрой, Томас В. (1979). «Спектральные свойства сильно сизых и не сизоватых листьев суккулентного розеточного растения». Экология . 38 (3): 349–357. Бибкод : 1979Oecol..38..349M. дои : 10.1007/BF00345193. PMID  28309493. S2CID  23753011.
  10. ^ Хенк Бентье (2016). Глоссарий завода в Кью (2-е изд.). Ричмонд, Суррей: Издательство Кью. ISBN 978-1-84246-604-9.
  11. ^ Холлоуэй, П.Дж. (1969). «Влияние поверхностного воска на смачиваемость листьев». Анналы прикладной биологии . 63 (1): 145–153. doi :10.1111/j.1744-7348.1969.tb05475.x.
  12. ^ Бартлотт, В.; Найнхейс, К. (1997). «Чистота священного лотоса, или избавление от загрязнения биологических поверхностей». Планта . 202 : 1–8. дои : 10.1007/s004250050096. S2CID  37872229.
  13. ^ аб Халлам, Северная Дакота (1967). Электронно-микроскопическое исследование восков листьев рода Eucalyptus L'Heritier (кандидатская диссертация). Университет Мельбурна. ОСЛК  225630715.
  14. ^ Джеффри, CE; Бейкер, Э.А.; Холлоуэй, Пи Джей (1975). «Ультраструктура и рекристаллизация растительных эпикутикулярных восков». Новый фитолог . 75 (3): 539–549. дои : 10.1111/j.1469-8137.1975.tb01417.x .
  15. ^ Можжевельник, Бельгия; Брэдли, Делавэр (1958). «Методика углеродных реплик в изучении ультраструктуры поверхности листьев». Журнал исследований ультраструктуры . 2 : 16–27. дои : 10.1016/S0022-5320(58)90045-5.
  16. ^ Джеффри, CE (2006). «Тонкая структура кутикулы растения». В Ридерере, М.; Мюллер, К. (ред.). Биология кутикулы растения. Издательство Блэквелл. стр. 11–125. Архивировано из оригинала 6 апреля 2007 года.
  17. ^ Кох, К.; и другие. (2004). «Самосборка эпикутикулярных восков на поверхности живых растений, полученная с помощью атомно-силовой микроскопии (АСМ)». Журнал экспериментальной ботаники . 55 (397): 711–718. дои : 10.1093/jxb/erh077 . ПМИД  14966216.
  18. ^ Кох, К.; и другие. (2005). «Структурный анализ пшеничного воска (Triticum aestivum, сорт 'Naturastar' L.): от молекулярного уровня до трехмерных кристаллов». Планта . 223 (2): 258–270. дои : 10.1007/s00425-005-0081-3. PMID  16133211. S2CID  20775168.
  19. ^ abcd Паталано, Роберт; Робертс, Патрик; Бойвен, Николь; Петралья, Майкл Д.; Меркадер, Хулио (2021). «Биомаркеры растительного воска в эволюционных исследованиях человека». Эволюционная антропология: проблемы, новости и обзоры . 30 (6): 385–398. дои : 10.1002/evan.21921. hdl : 10072/409183 . ISSN  1060-1538. PMID  34369041. S2CID  236960097 — через онлайн-библиотеку Wiley.
  20. ^ аб Панкост, Ричард Д.; Бут, Кристофер С. (1 декабря 2004 г.). «Палеоклиматическая полезность наземных биомаркеров в морских отложениях». Морская химия . Новые подходы в морской органической биогеохимии: дань уважения жизни и науке Джона И. Хеджеса. 92 (1): 239–261. Бибкод : 2004Март..92..239P. doi :10.1016/j.marchem.2004.06.029. ISSN  0304-4203.

Библиография