Карикаин ( EC 3.4.22.30, пептидаза папайи A , пептидаза папайи II , протеиназа папайи , протеиназа папайи III , протеиназа папайи 3 , протеиназа омега , протеиназа папайи A , химопапаин S , Pp ) — фермент . [ 1] [2] [3] [4] [5] [6] Этот фермент катализирует следующую химическую реакцию : гидролиз белков с широкой специфичностью к пептидным связям , подобной папаину и химопапаину.
Этот фермент выделен из растения папайи Carica papaya .
Первое описание этого фермента было предоставлено Шаком [1], который назвал его пептидазой папайи А. С тех пор этому ферменту было дано несколько разных названий, включая пептидазу папайи II, [4] протеиназу папайи III [5] и протеиназу папайи. [7] Название карикаин было рекомендовано NC-IUBMB в 1992 году.
Карикаин синтезируется как препрофермент . На уровне мРНК имеются доказательства полиморфизма, были выделены два очень похожих клона, один из которых содержал C-концевое расширение. [8] Первичная структура зрелой формы фермента была определена, [9] и соответствует предсказанию одной из последовательностей кДНК . Длина белка составляет 216 аминокислот, и он на 68% идентичен последовательности папаину , на 65% химопапаину и на 81% глицилэндопептидазе . Три дисульфидные связи сохраняются между всеми протеиназами папайи, и нет никаких доказательств гликозилирования . Карикаин является чрезвычайно основным белком, его pI оценивается в 11,7. Сообщается, что A280,1% составляет 18,3, что дает молярный коэффициент экстинкции 4,193 104 М21 см21.
Как и некоторые другие растительные цистеиновые эндопептидазы , карикаин проявляет зарядовую гетерогенность. Это может быть отчасти обусловлено вариацией степени окисления серы активного центра, как в случае с гомологичными ферментами из стебля ананаса, хотя генетический полиморфизм также может вносить свой вклад.
Кристаллическая структура карикаина была решена с разрешением 1,8 A ̊ и демонстрирует конформацию основной цепи, очень похожую на таковую папаина. Карикаин имеет четыре аминокислотных остатка (Ser169-Lys172), которых нет в папаине , но именно папаин является исключительным в этой точке последовательности, показывая делецию, не наблюдаемую у других членов семейства. Архитектура активного центра карикаина очень похожа на таковую папаина.
Высокоосновный характер карикаина позволяет относительно легко отделить его от других цистеиновых эндопептидаз папайи в катионообменной хроматографии препаратов коммерчески доступного латекса папайи. Градиент ацетата натрия, pH 5,0, был впервые успешно использован Робинсоном [10] и с тех пор был принят другими. Карикаин обнаружен в пике белка, элюирующегося последним. Из-за зарядовой гетерогенности карикаина пик может быть несимметричным, но это не обязательно указывает на присутствие загрязняющих веществ. Ковалентная хроматография на тиол- сефарозе позволяет изолировать полностью активный карикаин из материала, полученного путем катионообмена. [11]
Как и большинство ферментов семейства C1, карикаин принимает гидрофобные аминокислотные остатки как в S2, так и в S3. Однако другие остатки также размещаются в этих подсайтах, включая пролин в S2 и лизин в S3. [ 12] Было обнаружено, что специфичности трех цистеиновых эндопептидаз из латекса папайи очень похожи. Карикаин и химопапаин , по-видимому, предпочитают алифатический остаток гидрофобному в P2. Сходство специфичности карикаина и химопапаина было продемонстрировано тем фактом, что из 44 пептидных связей в гемоглобине ламантина, расщепляемых карикаином, 29 также расщеплялись химопапаином. [12] Более раннее исследование [13] подчеркнуло сходство специфичности карикаина, химопапаина и папаина. Все семь связей окисленной В-цепи инсулина, которые были гидролизованы карикаином, были также расщеплены папаином, а шесть были гидролизованы химопапаином.
Карикаин можно анализировать с Bz-ArgkNHPhNO2, kcat/Km составляет 187 M21 s21 при pH 6,8 и 40˚C. Более чувствительные субстраты могут использовать флуорометрическую уходящую группу, kcat/Km для гидролиза Z-Phe-ArgkNHMec составляет 1,06 3 106 M21 s21 (pH 6,8, 40˚C). [5] Фермент демонстрирует широкий профиль pH-активности с оптимумом около 7,0. Около половины максимальной активности все еще достигается при значениях pH около 5,3 и 8,3, и, как сообщается, профиль регулируется по крайней мере тремя ионизирующими группами. [14] Сера активного центра требует восстановления для каталитической компетентности, и это лучше всего достигается путем включения низких миллимолярных концентраций цистеина в аналитические буферы.
Карикаин инактивируется E-64, что делает ингибитор удобным титрантом активного центра, и он ингибируется цистатинами , причем Ki для ингибирования цистатином папайи составляет 1,5 нМ.
Структура прокарикаина показывает про-регион, соединенный с активным ферментом. [15] Карикаин рассматривается как цистеиновая эндопептидаза , то есть он функционирует посредством действия остатка цистеина в своем активном центре и способен гидролизовать пептидные связи, которые находятся в пределах N -конца и С-конца субстрата .
В случае проферментов фармакокинетика обычно регулируется скоростью внутримолекулярного расщепления для получения активной формы фермента. Каталитический сайт расположен в щели между двумя долями, и связывание субстрата должно произойти до того, как активность станет доступной. [16] Однако, поскольку активная форма — это та, которая присутствует в обработанном латексе, [17] этапом, ограничивающим скорость, в реакции с белками будет просто преобразование комплекса фермент-субстрат в продукт с регенерацией фермента. Однако гидролиз пептидной связи является автоматически благоприятной реакцией. [18] Протеолитические ферменты, такие как карикаин, катализируют гидролиз пептидной связи со скоростями, которые зависят от определенных химических групп аминокислот по соседству с этой связью. [19] Гидролиз обычно ограничивается пептидами, образованными из аминокислот L-конфигурации. Скорость изменяется линейно с низкой концентрацией субстрата (кинетика первого порядка) и становится независимой при высоких концентрациях субстрата ( кинетика нулевого порядка ).
Кинетика зависит от быстрого образования комплекса фермент-субстрат, который затем медленно преобразуется в продукт на этапе определения скорости, который регенерирует фермент. Когда концентрация фермента намного меньше концентрации субстрата, скорость реакции прямо пропорциональна общей концентрации фермента. Однако гидролиз пептидной связи является энергетически выгодной реакцией. [18]
Недавние эксперименты как с сырым карикаином, так и с очищенным карикаином показали, что реакция, которая контролирует детоксикацию переваренного глиадина пшеницы при pH 7,5 и 37 °C, действительно является реакцией 1-го порядка с константой скорости 1,7 x 10−4 сек. − 1 . [20] Скорость реакции сопровождалась исчезновением пептидов глиадина , которые были токсичны для лизосом печени крыс.
Глютен - это структурный белок, который естественным образом содержится в некоторых злаковых культурах . В медицинской литературе глютеном называют комбинацию белков проламина и глютелина, которые естественным образом присутствуют во всех злаках и которые, как доказано, способны вызывать целиакию . Специфические иммуногенные пептиды в глиадине , классе белков, присутствующих в пшенице и некоторых других злаках , обладают способностью провоцировать аутоиммунную энтеропатию, вызванную аномальным иммунным ответом у генетически восприимчивых людей с целиакией и другими расстройствами, связанными с глютеном .
Ферментная терапия для расстройств, связанных с глютеном, предполагает использование высоконаправленных пролин- и глутамин -специфичных эндопротеаз для разрушения иммуногенных пептидов глютена до того, как они вступят во взаимодействие с кишечной оболочкой. Исследования in vitro [21] [20] продемонстрировали, что карикаин обеспечивает высокую степень защиты от токсического действия глиадина на лизосомы печени крыс и способен быстро переваривать ключевые иммунореактивные эпитопы глютена, связанные с патологией целиакии.