stringtranslate.com

Симбиосома

Часть клетки корневого клубенька, на которой видны симбиосомы, окружающие бактероиды.

Симбиосома — это специализированный отсек в клетке-хозяине, в котором находится эндосимбионт в симбиотических отношениях . [1]

Термин был впервые использован в 1983 году для описания структуры вакуоли в симбиозе между животным-хозяином Гидрой и эндосимбионтом Хлореллой . Симбиосомы также наблюдаются в других симбиозах книдарий - динофлагеллят , включая те, которые встречаются в симбиозах кораллов и водорослей . В 1989 году эта концепция была применена к похожей структуре, обнаруженной в азотфиксирующих корневых клубеньках некоторых растений. [1]

Симбиосома в корневых клубеньках была исследована гораздо более успешно, отчасти из-за сложности выделения мембраны симбиосомы у животных-хозяев. [1] Симбиосома в клетке корневого клубенька в растении представляет собой органеллоподобную структуру, которая образовалась в симбиотических отношениях с азотфиксирующими бактериями . Растительная симбиосома уникальна для тех растений, которые производят корневые клубеньки. [2] Большинство таких симбиозов осуществляется между бобовыми и диазотрофными бактериями Rhizobia . Симбиозы ризобий и бобовых являются наиболее изученными из-за их важности в сельском хозяйстве. [3] [4]

Каждая симбиосома в клетке корневого клубенька заключает в себе один ризобий, который дифференцируется в бактероид. Однако в некоторых случаях симбиосома может содержать несколько бактероидов. [5] Симбиосомная мембрана, или перибактероидная мембрана, окружает бактероидную мембрану, разделенную симбиосомным пространством. Эта единица обеспечивает межцарственную микросреду для производства азота для растения, [3] [6] и получения малата для энергии для бактероида. [7]

История

Концепция симбиосомы была впервые описана в 1983 году Некельманном и Маскатином, как показано в симбиотических отношениях между хлореллой (класс зеленых водорослей ) и гидрой , животным-хозяином отряда книдарий . [1] До этого она описывалась как вакуоль . Несколько лет спустя, в 1989 году, Лорен Рот с Гэри Стейси [8], а также Роберт Б. Меллор [9] применили эту концепцию к азотфиксирующей единице, обнаруженной в корневом клубеньке растения, [1] ранее называвшейся инфекционной вакуолью . [10]

С тех пор это породило множество исследований, одним из результатов которых стало предоставление более подробного описания симбиосомной (перибактероидной) мембраны, а также сравнение с аналогичными структурами в везикулярно-арбускулярных микоризных симбиозах у растений. [11] В животных моделях симбиосома имеет более сложную организацию мембран, поэтому ее оказалось трудно изолировать, очищать и изучать. [1]

Структура и формирование

Симбиосома образуется в результате сложного и скоординированного взаимодействия между хозяином симбионта и эндосимбионтом . [5] В точке проникновения в клетку хозяина симбионта часть клеточной мембраны обволакивает эндосимбионт и отрывается в цитоплазму как дискретная единица, органеллоподобная вакуоль, называемая симбиосомой. [5] [12] Это процесс, подобный эндоцитозу , который образует симбиосому, а не эндосому . У растений этот процесс уникален. [13]

Симбиосомная мембрана отделена от эндосимбионтной мембраны пространством, известным как симбиосомное пространство , которое позволяет симбионтам обмениваться растворенными веществами. [14] [12] В корневом клубеньке растения симбиосомная мембрана также называется перибактероидной мембраной. [13]

На заводе

В симбиозах бобовых и ризобий симбиосома является азотфиксирующей единицей в растении, образованной взаимодействием растительных и бактериальных сигналов и их кооперацией. Бобовые богаты белком и имеют высокую потребность в азоте, который обычно доступен из нитратов в почве. Когда их мало, растение выделяет флавоноиды , которые привлекают свободноживущие диазотрофные (азотфиксирующие) ризобии к своим корневым волоскам . В свою очередь, бактерии выделяют Nod-факторы , которые стимулируют процесс инфекции в растении. [1] [13]

Чтобы обеспечить заражение, кончик корневого волоска закручивается вокруг ризобии и, прорастая внутрь, образует инфекционную нить, которая переносит эндосимбионтов в корковые клетки. В то же время корковые клетки делятся, образуя жесткие корневые клубеньки , которые будут размещать и защищать бактерии. [15] [13] Считается, что бактериальное производство внеклеточного полимерного вещества (ЭПС) необходимо для обеспечения заражения. [13] Ризобии заражают растение в больших количествах, активно делясь только на кончике инъекционной нити, где они высвобождаются в клетки внутри симбиосом. [15] [1] Симбиосома образуется в результате процесса, похожего на эндоцитоз, который производит эндосому. Обычно эндосомы нацелены на лизосомы , но симбиосома перенацеливается на белки клетки-хозяина.

Изменения в растении, необходимые для формирования инфекционной нити, усиленного деления кортикальных клеток, образования корневого клубенька и симбиосомы, вызваны динамическими изменениями в актиновом цитоскелете . [16] [13] Нитевидный актин (F-актин) направляет удлинение инъекционных нитей, а короткие фрагменты F-актина разбросаны вокруг мембраны симбиосомы. [16] Бактерии высвобождаются в виде капель инъекции в клетки корневого клубенька хозяина, где плазматическая мембрана заключает их в органеллоподобную структуру симбиосомы. У большинства растений симбиосома заключает в себе одну бактерию-эндосимбионта, но некоторые типы могут содержать более одной. Отрицательная обратная связь, называемая ауторегуляцией клубенькообразования, работает для балансировки потребности в азоте и, таким образом, образования клубеньков. [17] [18]

Дифференциация

Внешняя мембрана симбиосомы, полученная из клетки-хозяина, заключает в себе пространство, называемое симбисомным пространством или перибактероидным пространством, которое окружает эндосимбионт. Для того чтобы симбиосома стала азотфиксирующей единицей, заключенная в ней бактерия должна окончательно дифференцироваться в морфологически измененный бактероид . Бактерия в почве является свободноживущей и подвижной. В симбиосоме она должна изменить экспрессию генов , чтобы адаптироваться к неподвижной, нерепродуктивной форме как бактероид. Это изменение отмечается увеличением размера бактерии и ее удлинением. Бактериальная мембрана также становится проницаемой. [19] [1] [13] Процесс дифференциации управляется растением с использованием пептидов, известных как специфичные для клубеньков цистеин-богатые пептиды ( NCR- пептиды).

NCR — это антимикробные пептиды , которые похожи на пептиды дефензина , используемые млекопитающими в ответ на вторжение патогенов. NCR нацелены на симбиосому, где они вызывают дифференциацию бактерии в бактероид. Основной эффект нацеливания NCR заключается в ограничении репродуктивной способности эндосимбионта. Эти изменения контролируются, поскольку бактерия не погибает в результате воздействия NCR. Часть этого контроля исходит от самой бактерии. [20] [21] [5] Чтобы выжить в результате деятельности NCR, бактерии должны вырабатывать белок, называемый BacA . Кроме того, липополисахарид , вырабатываемый бактериями, модифицируется необычной жирной кислотой , которая также обеспечивает защиту от экологических стрессов. Эти защитные меры помогают процессу дифференциации и обеспечивают их выживание в качестве бактероидов. Некоторые штаммы ризобий вырабатывают пептидазу, которая разрушает NCR. [20] [21]

Азотфиксирующий блок

Установленный бактероид способен фиксировать азот в химически пригодную для растения форму аммония. Это энергозатратный процесс, подпитываемый углеводами растения. [13] Транспортные везикулы образуются в мембране симбиосомы, позволяя аммонию проходить в пространство симбиосомы из бактероида и проходить питательным веществам растения в бактероид. [13] Ризобии заражают растение в больших количествах, где они высвобождаются в клетки внутри симбиосом. Они защищены жесткой структурой корневого клубенька. [15]

У животного

Наиболее хорошо изученный симбиоз с участием животного-хозяина — это симбиоз между книдариями и динофлагеллятами , чаще всего одноклеточными зооксантеллами . Симбиоз хлореллы и гидры впервые описал симбиосому . Коралл Zoanthus robustus использовался в качестве модельного организма для изучения симбиоза с его микросимбионтным видом водорослей Symbiodinium , с акцентом на симбиосому и ее мембраны. Были найдены методы выделения мембран симбиосом — симбионт в животном-хозяине имеет многослойный мембранный комплекс, который оказался устойчивым к разрушению, что затрудняет их выделение. [1] [22]

Эндосимбионтные динофлагелляты используются из-за их способности к фотосинтезу и производству энергии, что дает хозяевам-стрекающим, таким как кораллы и анемоны , растительные свойства. [23] Свободноживущие динофлагелляты попадают в гастродермальные клетки хозяина, а их симбиосомная мембрана происходит из клетки хозяина. [24] Процесс образования симбиосомы часто наблюдается у животного-хозяина как процесс фагоцитоза , [24] и предполагается, что симбиосома представляет собой фагосому , которая подверглась ранней остановке. [25]

Похожие структуры

Подобная симбиосоме структура — это паразитофорная вакуоль, образованная внутри клеток хозяина, инфицированных паразитами апикомплекса . Вакуоль происходит из плазматической мембраны клетки хозяина. Она защищена от эндолизомальной системы хозяина с помощью модифицирующих белков, выделяемых паразитом. [26] [27] Мембрана паразитофорной вакуоли значительно ремоделируется паразитом. [28]

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ abcdefghij "Выделение симбиосом и комплекса мембран симбиосом из зоантида Zoanthus Robustus". ResearchGate .
  2. ^ Эмерих, Д. В.; Кришнан, Х. Б. (15 мая 2014 г.). «Симбиосомы: временные органеллы-«младшие светила»». Биохимический журнал . 460 (1): 1–11. doi : 10.1042/BJ20130271. PMID  24762136.
  3. ^ ab Coba de la Peña, T; Fedorova, E; Pueyo, JJ; Lucas, MM (2017). «Симбиосома: коэволюция бобовых и ризобий в направлении органеллы, фиксирующей азот?». Frontiers in Plant Science . 8 : 2229. doi : 10.3389/fpls.2017.02229 . PMC 5786577. PMID  29403508 . 
  4. ^ Захран, ХХ (декабрь 1999 г.). «Симбиоз ризобий-бобовых и фиксация азота в суровых условиях и в засушливом климате». Обзоры микробиологии и молекулярной биологии . 63 (4): 968–89, оглавление. doi :10.1128/mmbr.63.4.968-989.1999. PMC 98982. PMID 10585971  . 
  5. ^ abcd Хааг, А.Ф.; и др. (май 2013 г.). «Молекулярное понимание развития бактероидов во время симбиоза Rhizobium-бобовые». FEMS Microbiology Reviews . 37 (3): 364–83. doi : 10.1111/1574-6976.12003 . PMID  22998605.
  6. ^ Эндрюс, М.; Эндрюс, М.Э. (26 марта 2017 г.). «Специфичность симбиозов бобовых и ризобий». Международный журнал молекулярных наук . 18 (4): 705. doi : 10.3390/ijms18040705 . PMC 5412291. PMID  28346361 . 
  7. ^ Шульце, Дж. и др. (1 ноября 2002 г.). «Малат играет центральную роль в питании растений». Растения и почва . 247 : 133–139. doi :10.1023/A:1021171417525. S2CID  13833130.
  8. ^ Рот, LE; Стейси, G (июнь 1989). «Выделение бактерий в клетки-хозяева азотфиксирующих соевых клубеньков: мембрана симбиосомы поступает из трех источников». Европейский журнал клеточной биологии . 49 (1): 13–23. PMID  2759097.
  9. ^ Меллор, РБ (июнь 1989). «Бактероиды в симбиозе Rhizobium-бобовые населяют внутренний литический отсек растения: последствия для других микробных эндосимбиозов». Журнал экспериментальной ботаники . 40 (3): 831–839. doi :10.1093/jxb/40.8.831.
  10. ^ Goodchild, DJ; Bergersen, FJ (июль 1966). «Электронная микроскопия инфекции и последующего развития клеток клубеньков сои». Журнал бактериологии . 92 (1): 204–13. doi :10.1128/jb.92.1.204-213.1966. PMC 276217. PMID  5949564 . 
  11. ^ Mellor, RB; et, al (май 1990). «Везикулярно-арбускулярные микоризы дикого типа сои и не клубеньковых мутантов с Glomus mosseae содержат симбиотически специфичные полипептиды (микоризины), иммунологически перекрестно реагирующие с нодулинами». Planta . 182 (1): 22–26. doi :10.1007/BF00239978. PMID  24196994. S2CID  23585943.
  12. ^ ab Kereszt, A; Mergaert, P; Kondorosi, E (ноябрь 2011 г.). «Развитие бактероидов в бобовых клубеньках: эволюция взаимной выгоды или жертвенных жертв?». Molecular Plant-Microbe Interactions . 24 (11): 1300–9. doi :10.1094/MPMI-06-11-0152. PMID  21995798.
  13. ^ abcdefghi Long, SR (6 октября 2016 г.). «SnapShot: Signaling in Symbiosis». Cell . 167 (2): 582–582.e1. doi : 10.1016/j.cell.2016.09.046 . PMID  27716511.
  14. ^ Mouritzen, P; Rosendahl, L (октябрь 1997 г.). «Идентификация транспортного механизма для NH4+ в мембране симбиосомы корневых клубеньков гороха». Физиология растений . 115 (2): 519–526. doi :10.1104/pp.115.2.519. PMC 158510. PMID  12223820 . 
  15. ^ abc Buhian, WP; Bensmihen, S (2018). "Мини-обзор: Nod-фактор регуляции фитогормональной сигнализации и гомеостаза во время симбиоза ризобий и бобовых". Frontiers in Plant Science . 9 : 1247. doi : 10.3389/fpls.2018.01247 . PMC 6166096. PMID  30319665 . 
  16. ^ ab Zhang, X; Han, L; Wang, Q; Zhang, C; Yu, Y; Tian, ​​J; Kong, Z (январь 2019 г.). «Актиновый цитоскелет хозяина направляет высвобождение ризобий и облегчает размещение симбиосом во время образования клубеньков у Medicago truncatula». The New Phytologist . 221 (2): 1049–1059. doi : 10.1111/nph.15423 . PMID  30156704.
  17. ^ Ван, C; Рейд, JB; Фу, E (2018). «Искусство самоконтроля — авторегуляция симбиозов растений и микробов». Frontiers in Plant Science . 9 : 988. doi : 10.3389/fpls.2018.00988 . PMC 6048281. PMID  30042780 . 
  18. ^ Reid, DE; Ferguson, BJ; Hayashi, S; Lin, YH; Gresshoff, PM (октябрь 2011 г.). «Молекулярные механизмы, контролирующие авторегуляцию образования клубеньков у бобовых». Annals of Botany . 108 (5): 789–95. doi :10.1093/aob/mcr205. PMC 3177682. PMID  21856632 . 
  19. ^ Alunni, B; Gourion, B (июль 2016 г.). «Терминальная дифференциация бактероидов в симбиозе бобовых и ризобий: специфичные для клубеньков цистеин-богатые пептиды и далее». The New Phytologist . 211 (2): 411–7. doi : 10.1111/nph.14025 . PMID  27241115.
  20. ^ ab Maróti, G; Downie, JA; Kondorosi, É (август 2015 г.). «Растительные цистеин-богатые пептиды, которые подавляют рост патогенов и контролируют дифференциацию ризобий в клубеньках бобовых». Current Opinion in Plant Biology . 26 : 57–63. doi : 10.1016/j.pbi.2015.05.031. PMID  26116977.
  21. ^ ab Pan, H; Wang, D (4 мая 2017 г.). «Клубневые цистеин-богатые пептиды поддерживают рабочий баланс во время азотфиксирующего симбиоза». Nature Plants . 3 (5): 17048. doi :10.1038/nplants.2017.48. PMID  28470183.
  22. ^ Davy, SK; Allemand, D; Weis, VM (июнь 2012 г.). «Клеточная биология симбиоза книдарий и динофлагеллят». Microbiology and Molecular Biology Reviews . 76 (2): 229–61. doi :10.1128/MMBR.05014-11. PMC 3372257. PMID 22688813  . 
  23. ^ Allemand, D; Furla, P (май 2018). «Как животное ведет себя как растение? Физиологическая и молекулярная адаптация зооксантелл и их хозяев к симбиозу». Comptes Rendus Biologies . 341 (5): 276–280. doi : 10.1016/j.crvi.2018.03.007 . PMID  29650460.
  24. ^ ab Peng, SE; et al. (март 2010 г.). «Протеомный анализ мембран симбиосом в эндосимбиозе Cnidaria-dinoflagellate». Proteomics . 10 (5): 1002–16. doi :10.1002/pmic.200900595. PMID  20049864. S2CID  27108503.
  25. ^ Мохамед, AR; и др. (июль 2016 г.). «Транскриптомный ответ коралла Acropora digitifera на компетентный штамм Symbiodinium: симбиосома как задержанная ранняя фагосома». Молекулярная экология . 25 (13): 3127–41. doi :10.1111/mec.13659. PMID  27094992.
  26. ^ Clough, B; Frickel, EM (июнь 2017 г.). «Паразитофорная вакуоль токсоплазмы: эволюционирующая граница хозяина и паразита». Тенденции в паразитологии . 33 (6): 473–488. doi :10.1016/j.pt.2017.02.007. PMID  28330745.
  27. ^ Лингельбах, К; Джойнер, КА (июнь 1998 г.). «Паразитофорная вакуольная мембрана, окружающая плазмодий и токсоплазму: необычный отсек в инфицированных клетках». Журнал клеточной науки . 111 (ч. 11) (11): 1467–75. doi :10.1242/jcs.111.11.1467. PMID  9580555.
  28. ^ Бурда, Пол-Кристиан; Хойслер, Фолькер Т.; Брюльманн, Фрэнсис; Бауш-Флюк, Дамарис; Шнидер, Силли Бернардетт (28 февраля 2018 г.). «BioID раскрывает новые белки мембраны паразитофорной вакуоли плазмодия». mSphere . 3 (1): e00522–17. doi :10.1128/mSphere.00522-17. PMC 5784244 . PMID  29404413.