stringtranslate.com

Шпиндельный аппарат

Микрофотография, показывающая конденсированные хромосомы ( синий цвет) , кинетохоры ( розовый цвет ) и микротрубочки ( зеленый цвет) во время метафазы митоза .

В биологии клетки веретенообразный аппарат — это цитоскелетная структура эукариотических клеток , которая формируется во время деления клетки для разделения сестринских хроматид между дочерними клетками . Его называют митотическим веретеном во время митоза , процесса, в результате которого образуются генетически идентичные дочерние клетки, или мейотическим веретеном во время мейоза , процесса, в результате которого образуются гаметы с половинным числом хромосом родительской клетки.

Помимо хромосом, веретенообразный аппарат состоит из сотен белков . [1] [2] Микротрубочки представляют собой наиболее распространенные компоненты этого механизма.

Структура веретена

На этой диаграмме изображена организация типичного митотического веретена, обнаруженного в клетках животных. Хромосомы прикреплены к микротрубочкам кинетохора с помощью мультипротеинового комплекса, называемого кинетохором. Полярные микротрубочки переплетаются в средней зоне веретена и раздвигают полюса веретена с помощью моторных белков . Астральные микротрубочки прикрепляют полюса веретена к клеточной мембране . Полимеризация микротрубочек зарождается в центре организации микротрубочек .

Прикрепление микротрубочек к хромосомам опосредовано кинетохорами , которые активно контролируют формирование веретена и предотвращают преждевременное начало анафазы . Динамическая полимеризация и деполимеризация микротрубочек управляет конгрессом хромосом. Деполимеризация микротрубочек создает натяжение в кинетохорах; [3] биполярное прикрепление сестринских кинетохор к микротрубочкам, исходящее от противоположных полюсов клетки, соединяет противоположные силы натяжения, выравнивая хромосомы на экваторе клетки и подготавливая их к сегрегации в дочерние клетки. Как только каждая хромосома становится двуориентированной, начинается анафаза, и когезин , который соединяет сестринские хроматиды , разрывается, что позволяет сестринским хроматидам перейти к противоположным полюсам.

Аппарат клеточного веретена включает микротрубочки веретена , связанные белки, которые включают молекулярные моторы кинезина и динеина , конденсированные хромосомы и любые центросомы или звезды , которые могут присутствовать на полюсах веретена в зависимости от типа клетки. [4] Аппарат веретена имеет неопределенно эллипсоидное поперечное сечение и сужается на концах. В широкой средней части, известной как средняя зона веретена, антипараллельные микротрубочки связаны кинезинами . На заостренных концах, известных как полюса веретена, микротрубочки зарождаются центросомами в большинстве клеток животных. Ацентросомные или анастральные веретена лишены центросом или звезд на полюсах веретена соответственно и встречаются, например, во время женского мейоза у большинства животных. [5] В этом случае градиент Ran GTP является основным регулятором организации и сборки микротрубочек веретена. У грибов веретена образуются между полюсными телами веретена , встроенными в ядерную оболочку , которая не разрушается во время митоза.

Белки, ассоциированные с микротрубочками, и динамика веретена

Динамическое удлинение и укорочение микротрубочек веретена посредством процесса, известного как динамическая нестабильность, в значительной степени определяет форму митотического веретена и способствует правильному выравниванию хромосом в средней зоне веретена. Белки, ассоциированные с микротрубочками (MAP), связываются с микротрубочками в средней зоне и полюсах веретена, регулируя их динамику. γ-тубулин — это специализированный вариант тубулина , который собирается в кольцевой комплекс, называемый γ-TuRC , который инициирует полимеризацию гетеродимеров α/β тубулина в микротрубочки. Привлечение γ-TuRC в перицентросомальную область стабилизирует минус-концы микротрубочек и закрепляет их вблизи центра организации микротрубочек . Белок, ассоциированный с микротрубочками, Augmin действует совместно с γ-TURC, зарождая новые микротрубочки из существующих микротрубочек. [6]

Растущие концы микротрубочек защищены от катастрофы действием белков отслеживания плюс-концов микротрубочек (+TIPs), способствующих их ассоциации с кинетохорами в средней зоне. Было показано, что CLIP170 локализуется вблизи плюс-концов микротрубочек в клетках HeLa [7] и накапливается в кинетохорах во время прометафазы . [8] Хотя то, как CLIP170 распознает плюс-концы, остается неясным, было показано, что его гомологи защищают от катастрофы и способствуют спасению, [9] [10] предполагая роль CLIP170 в стабилизации плюс-концов и, возможно, опосредовании их прямого прикрепления к кинетохорам. [11] Было также показано, что ассоциированные с CLIP белки, такие как CLASP1 у людей, локализуются на плюс-концах и внешнем кинетохоре, а также модулируют динамику микротрубочек кинетохора (Maiato 2003). Гомологи CLASP у Drosophila , Xenopus и дрожжей необходимы для правильной сборки веретена; у млекопитающих CLASP1 и CLASP2 способствуют правильной сборке веретена и динамике микротрубочек в анафазе. [12] Полимеризация плюс-конца может дополнительно регулироваться белком EB1, который напрямую связывает растущие концы микротрубочек и координирует связывание других +TIP. [13] [14]

Действию этих стабилизирующих микротрубочки белков противостоит ряд факторов деполимеризации микротрубочек, которые позволяют проводить динамическое ремоделирование митотического веретена для содействия конгрессу хромосом и достижению биполярности . Суперсемейство MAP кинезина -13 содержит класс моторных белков, направленных на плюс-конец, с ассоциированной активностью деполимеризации микротрубочек, включая хорошо изученные MCAK млекопитающих и Xenopus XKCM1. MCAK локализуется на растущих кончиках микротрубочек на кинетохорах, где он может вызвать катастрофу в прямой конкуренции со стабилизирующей активностью +TIP. [15] Эти белки используют энергию гидролиза АТФ для индуцирования дестабилизирующих конформационных изменений в структуре протофиламентов, которые вызывают высвобождение кинезина и деполимеризацию микротрубочек. [16] Потеря их активности приводит к многочисленным митотическим дефектам. [15] Дополнительные белки, дестабилизирующие микротрубочки, включают Op18/ статмин и катанин , которые играют роль в ремоделировании митотического веретена, а также способствуют сегрегации хромосом во время анафазы. [17]

Активность этих MAP тщательно регулируется для поддержания правильной динамики микротрубочек во время сборки веретена, при этом многие из этих белков служат субстратами киназы типа Aurora и Polo . [17] [18]

Организация шпиндельного аппарата

В модели "поиска и захвата", опосредованной центросомой (слева), микротрубочки, образованные из центросом, случайно контактируют с хромосомами и стабилизируются на кинетохорах, образуя веретено. В модели "самоорганизации", опосредованной хроматином (справа), микротрубочки образованы вокруг митотического хроматина и организованы в биполярный массив с помощью моторных белков.

В правильно сформированном митотическом веретене биориентированные хромосомы выровнены вдоль экватора клетки, при этом микротрубочки веретена ориентированы примерно перпендикулярно хромосомам, их плюс-концы встроены в кинетохоры, а минус-концы закреплены на полюсах клетки. Точная ориентация этого комплекса необходима для обеспечения точной сегрегации хромосом и определения плоскости деления клетки. Однако остается неясным, как организуется веретено. В этой области доминируют две модели, которые являются синергетическими и не исключают друг друга. В модели поиска и захвата веретено преимущественно организовано путем разделения к полюсам центров организации центросомных микротрубочек (ЦОМТ). Микротрубочки веретена исходят из центросом и «ищут» кинетохоры; когда они связываются с кинетохорой, они стабилизируются и оказывают натяжение на хромосомы. В альтернативной модели самосборки микротрубочки подвергаются ацентросомной нуклеации среди конденсированных хромосом. Ограниченные клеточными размерами, боковыми связями с антипараллельными микротрубочками через двигательные белки и концевыми прикреплениями к кинетохорам, микротрубочки естественным образом принимают веретенообразную структуру с хромосомами, выровненными вдоль экватора клетки.

Модель «поиска и захвата», опосредованная центросомой

В этой модели микротрубочки зарождаются в центрах организации микротрубочек и подвергаются быстрому росту и катастрофе, чтобы «поискать» в цитоплазме кинетохоры. Как только они связываются с кинетохором, они стабилизируются, и их динамика снижается. Новая моноориентированная хромосома колеблется в пространстве около полюса, к которому она прикреплена, пока микротрубочка с противоположного полюса не свяжет сестринскую кинетохору. Это второе присоединение еще больше стабилизирует прикрепление кинетохоры к митотическому веретену. Постепенно биориентированная хромосома тянется к центру клетки, пока натяжение микротрубочек не будет сбалансировано по обе стороны от центромеры ; затем конгрессированная хромосома колеблется в метафазной пластинке , пока начало анафазы не освободит сцепление сестринских хроматид.

В этой модели центры организации микротрубочек локализуются на полюсах клетки, а их разделение обусловлено полимеризацией микротрубочек и «скольжением» антипараллельных веретенообразных микротрубочек относительно друг друга в средней зоне веретена, опосредованным биполярными кинезинами, направленными на плюс-конец. [19] [20] Такие скользящие силы могут объяснять не только разделение полюсов веретена на ранней стадии митоза, но и удлинение веретена во время поздней анафазы.

Самоорганизация митотического веретена, опосредованная хроматином

В отличие от механизма поиска и захвата, в котором центросомы в значительной степени диктуют организацию митотического веретена, эта модель предполагает, что микротрубочки зарождаются ацентросомно вблизи хромосом и спонтанно собираются в антипараллельные пучки и принимают веретеноподобную структуру. [21] Классические эксперименты Хилда и Карсенти показывают, что функциональные митотические веретена и ядра формируются вокруг покрытых ДНК шариков, инкубированных в экстрактах яиц Xenopus , и что биполярные массивы микротрубочек образуются при отсутствии центросом и кинетохор. [22] Действительно, также было показано, что лазерная абляция центросом в клетках позвоночных не ингибирует ни сборку веретена, ни сегрегацию хромосом. [23] Согласно этой схеме, форма и размер митотического веретена являются функцией биофизических свойств сшивающих моторных белков. [24]

Хроматин-опосредованное зарождение микротрубочек с помощью градиента Ran GTP

Фактор обмена гуаниновых нуклеотидов для малой ГТФазы Ran (регулятор конденсации хромосом 1 или RCC1 ) прикрепляется к нуклеосомам через основные гистоны H2A и H2B. [25] Таким образом, градиент ГТФ-связанного Ran образуется вокруг митотического хроматина. Стеклянные бусины, покрытые RCC1, вызывают зарождение микротрубочек и образование биполярного веретена в экстрактах яиц Xenopus , показывая, что градиент Ran GTP сам по себе достаточен для сборки веретена. [26] Градиент запускает высвобождение факторов сборки веретена (SAF) из ингибирующих взаимодействий через транспортные белки импортин β/α. Затем несвязанные SAF способствуют зарождению микротрубочек и стабилизации вокруг митотического хроматина, а биполярность веретена организуется моторными белками микротрубочек. [27]

Регулировка шпиндельного узла

Сборка веретена в значительной степени регулируется событиями фосфорилирования, катализируемыми митотическими киназами. Циклинзависимые киназные комплексы (CDK) активируются митотическими циклинами, трансляция которых увеличивается во время митоза. CDK1 (также называемый CDC2) считается основной митотической киназой в клетках млекопитающих и активируется циклином B1. Киназы Aurora необходимы для правильной сборки и разделения веретена. [28] Aurora A ассоциируется с центросомами и, как полагают, регулирует митотический вход. Aurora B является членом хромосомного пассажирского комплекса и опосредует присоединение хромосомы к микротрубочкам и сцепление сестринских хроматид. Polo-подобная киназа, также известная как PLK, особенно PLK1, играет важную роль в поддержании веретена, регулируя динамику микротрубочек. [29]

Структура митотической хромосомы

К концу репликации ДНК сестринские хроматиды связываются вместе в аморфную массу запутанной ДНК и белка. Митотический вход запускает драматическую реорганизацию дублированного генома, в результате чего сестринские хроматиды распутываются и отделяются друг от друга. Хромосомы также укорачиваются в длину, до 10 000 раз в клетках животных, [30] в процессе, называемом конденсацией. Конденсация начинается в профазе, и хромосомы максимально уплотняются в стержнеобразные структуры к тому времени, когда они выстраиваются в середине веретена в метафазе. Это придает митотическим хромосомам классическую форму «X», наблюдаемую в кариотипах , при этом каждая конденсированная сестринская хроматида связана по своей длине белками когезина и соединена, часто около центра, в центромере . [30] [31] [32]

Хотя эти динамические перестройки жизненно важны для обеспечения точной и высокоточной сегрегации генома, наше понимание структуры митотической хромосомы остается в значительной степени неполным. Однако было идентифицировано несколько конкретных молекулярных игроков: Топоизомераза II использует гидролиз АТФ для катализа декатенации переплетений ДНК, способствуя разрешению сестринских хроматид. [33] Конденсины представляют собой 5-субъединичные комплексы, которые также используют гидролиз АТФ для содействия конденсации хромосом. [34] Эксперименты с экстрактами яиц Xenopus также выявили линкерный гистон H1 как важный регулятор уплотнения митотических хромосом. [35]

Контрольная точка сборки митотического веретена

Завершение формирования веретена является важнейшей точкой перехода в клеточном цикле, называемой контрольной точкой сборки веретена . Если хромосомы не прикреплены должным образом к митотическому веретену к моменту этой контрольной точки, начало анафазы будет отложено. [36] Неудача в контрольной точке сборки веретена может привести к анеуплоидии и может быть связана со старением и образованием рака. [37]

Ориентация шпиндельного аппарата

Карикатура на делящуюся эпителиальную клетку, окруженную эпителиальной тканью. Веретенообразный аппарат вращается внутри клетки. Вращение является результатом тяги астральных микротрубочек к трехклеточным соединениям (TCJ), сигнальным центрам, локализованным в областях, где встречаются три клетки.

Ориентация деления клеток имеет большое значение для архитектуры ткани, судеб клеток и морфогенеза. Клетки имеют тенденцию делиться вдоль своей длинной оси в соответствии с так называемым правилом Гертвига . Ось деления клеток определяется ориентацией веретенного аппарата. Клетки делятся вдоль линии, соединяющей две центросомы веретенного аппарата. После формирования веретенный аппарат подвергается вращению внутри клетки. Астральные микротрубочки, происходящие из центросом, достигают клеточной мембраны, где они притягиваются к определенным кортикальным подсказкам. In vitro распределение кортикальных подсказок устанавливается адгезивным рисунком. [38] In vivo сигналы полярности определяются локализацией трехклеточных соединений, локализованных в вершинах клеток. [39] Пространственное распределение кортикальных подсказок приводит к силовому полю, которое определяет окончательную ориентацию веретенного аппарата и последующую ориентацию деления клеток.

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ CE Walczak; R. Heald (2008). «Механизмы сборки и функционирования митотического веретена». International Review of Cytology . 265 : 111–158. doi :10.1016/s0074-7696(07)65003-7. ISBN 9780123743329. PMID  18275887.
  2. ^ Helmke KJ, Heald R, Wilbur JD (2013). "Взаимодействие между архитектурой веретена и функцией" (PDF) . Int. Rev. Cell Mol. Biol . International Review of Cell and Molecular Biology. 306 : 83–125. doi :10.1016/B978-0-12-407694-5.00003-1. ISBN 9780124076945. PMID  24016524. S2CID  8145444.
  3. ^ E. Nogales; VH Ramey (1 ноября 2009 г.). «Структурно-функциональное понимание комплекса кинетохоры дрожжей Dam1». J Cell Sci . 122 (21): 3831–3836. doi :10.1242/jcs.004689. PMC 2773187. PMID 19889968  . 
  4. ^ Кэмпбелл, Нил А.; Джейн Б. Рис (2005). Биология, 7-е издание . Сан-Франциско: Benjamin Cummings. стр. 221–224. ISBN 0-8053-7171-0.
  5. ^ Manandhar Gf; Schatten H; Sutovsky P (2005). «Редукция центросомы во время гаметогенеза и ее значение». Biol. Reprod . 72 (1): 2–13. doi : 10.1095/biolreprod.104.031245 . PMID  15385423. S2CID  37305534.
  6. ^ Petry S, et al. (2013). «Зарождение разветвленных микротрубочек в экстрактах яиц Xenopus, опосредованное аугмином и TPX2». Cell . 152 (4): 768–777. doi :10.1016/j.cell.2012.12.044. PMC 3680348 . PMID  23415226. 
  7. ^ JE Rickard; TE Kreis (1990). «Идентификация нового нуклеотид-чувствительного белка, связывающего микротрубочки, в клетках HeLa». J Cell Biol . 110 (5): 1623–1633. doi : 10.1083/jcb.110.5.1623. PMC 2200191. PMID  1970824. 
  8. ^ D. Dujardin; UI Wacker; A. Moreau; TA Schroer; JE Rickard; JR DeMey (1998). «Доказательства роли CLIP-170 в установлении выравнивания метафазных хромосом». J Cell Biol . 141 (4): 849–862. doi :10.1083/jcb.141.4.849. PMC 2132766. PMID  9585405 . 
  9. ^ D. Brunner; P. Nurse (2000). "CLIP-170-подобный tip1p пространственно организует микротрубочковую динамику в делящихся дрожжах". Cell . 102 (5): 695–704. doi : 10.1016/S0092-8674(00)00091-X . PMID  11007487. S2CID  11948950.
  10. ^ YA Komarova; AS Kojima; et al. (2002). «Цитоплазматические линкерные белки способствуют спасению микротрубочек in vivo». J Cell Biol . 159 (4): 589–599. doi :10.1083/jcb.200208058. PMC 2173097. PMID 12446741  . 
  11. ^ S. Goldstone; C. Reyes; G. Gay; T. Courthéoux; M. Dubarry; et al. (2010). "Tip1/CLIP-170 Protein Is Required for Correct Chromosome Poleward Movement in Fission Yeast". PLOS ONE . ​​5 (5): e10634. Bibcode :2010PLoSO...510634G. doi : 10.1371/journal.pone.0010634 . PMC 2869355 . PMID  20498706. 
  12. ^ AL Pereira; AJ Pereira; ARR Maia; et al. (1 октября 2006 г.). «CLASP1 и CLASP2 млекопитающих сотрудничают для обеспечения митотической точности путем регулирования функции веретена и кинетохора». Mol Biol Cell . 17 (10): 4526–4542. doi :10.1091/mbc.E06-07-0579. PMC 1635371. PMID  16914514 . 
  13. ^ А. Ахманова; МО Штейнмец (апрель 2008 г.). «Отслеживание концов: динамическая белковая сеть контролирует судьбу кончиков микротрубочек». Nat Rev Mol Cell Biol . 9 (4): 309–322. doi :10.1038/nrm2369. PMID  18322465. S2CID  24977579.
  14. ^ JS Tirnauer; S. Grego; ED Salmon; TJ Mitchison (1 октября 2002 г.). «Взаимодействие EB1 с микротрубочками в экстрактах яиц Xenopus: роль EB1 в стабилизации микротрубочек и механизмы нацеливания на микротрубочки». Mol Biol Cell . 13 (10): 3614–3626. doi :10.1091/mbc.02-04-0210. PMC 129970. PMID  12388761 . 
  15. ^ ab ME Tanenbaum; RH Medema; A. Akhmanova (2011). "Регуляция локализации и активности деполимеразы микротрубочек MCAK". Биоархитектура . 1 (2): 80–87. doi :10.4161/bioa.1.2.15807. PMC 3158623. PMID  21866268 . 
  16. ^ H. Niederstrasser; H. Salehi-Had; EC Gan; C. Walczak; E. Nogales (2002). «XKCM1 действует на один протофиламент и требует C-конца тубулина». J Mol Biol . 316 (3): 817–828. doi :10.1006/jmbi.2001.5360. PMID  11866534.
  17. ^ ab H. Maiato; P Sampaio; CE Sunkel (2004). «Микротрубочковые-ассоциированные белки и их основные роли во время митоза». Int Rev Cytol . Международный обзор цитологии. 241 : 53–153. doi : 10.1016/S0074-7696(04)41002-X. hdl : 10216/53621 . ISBN 9780123646453. PMID  15548419.
  18. ^ R. Tournebize; A. Popov; K. Kinoshita; AJ Ashford; et al. (2000). «Контроль динамики микротрубочек с помощью антагонистической активности XMAP215 и XKCM1 в экстрактах яиц Xenopus». Nat Cell Biol . 2 (1): 13–19. doi :10.1038/71330. PMID  10620801. S2CID  10732643.
  19. ^ J. McIntosh; SC Landis (1971). «Распределение микротрубочек веретена во время митоза в культивируемых клетках человека». J Cell Biol . 49 (2): 468–497. doi :10.1083/jcb.49.2.468. PMC 2108320. PMID  19866774 . 
  20. ^ DJ Sharp; KL McDonald; HM Brown; и др. (1999). «Биполярный кинезин, KLP61F, сшивает микротрубочки в межполярных пучках микротрубочек эмбриональных митотических веретен Drosophila». J Cell Biol . 144 (1): 125–138. doi :10.1083/jcb.144.1.125. PMC 2148119. PMID  9885249 . 
  21. ^ MA Hallen; SA Endow (2009). «Сборка анастромного веретена: математическая модель». Biophys J . 97 (8): 2191–2201. Bibcode :2009BpJ....97.2191H. doi :10.1016/j.bpj.2009.08.008. PMC 2764103 . PMID  19843451. 
  22. ^ R. Heald; R. Tournebize; et al. (1996). «Самоорганизация микротрубочек в биполярные веретена вокруг искусственных хромосом в экстрактах яиц Xenopus». Nature . 382 (6590): 420–425. Bibcode :1996Natur.382..420H. doi :10.1038/382420a0. PMID  8684481. S2CID  4238425.
  23. ^ А. Ходжаков; RW Cole; BR Oakley; CL Rieder (2000). «Центросомонезависимое формирование митотического веретена у позвоночных». Curr Biol . 10 (2): 59–67. doi : 10.1016/S0960-9822(99)00276-6 . PMID  10662665. S2CID  9976687.
  24. ^ KS Burbank; TJ Mitchison; DS Fisher (2007). «Модели слайдов и кластеров для сборки веретена». Curr Biol . 17 (16): 1373–1383. doi : 10.1016/j.cub.2007.07.058 . PMID  17702580.
  25. ^ Makde R, England J, Yennawar H, Tan S (2010). «Структура фактора хроматина RCC1, связанного с частицей ядра нуклеосомы». Nature . 467 (7315): 562–566. Bibcode :2010Natur.467..562M. doi :10.1038/nature09321. PMC 3168546 . PMID  20739938. 
  26. ^ Halpin D, Kalab P, Wang J, Weis K, Heald R (2011). «Сборка митотического веретена вокруг покрытых RCC1 шариков в экстрактах яиц Xenopus». PLOS Biol . 9 (12): e1001225. doi : 10.1371/journal.pbio.1001225 . PMC 3246454. PMID  22215983 . 
  27. ^ Fu J, Jiang Q, Zhang C (2010). «Координация событий клеточного цикла с помощью Ran GTPase». Nature Education . 3 (9): 32.
  28. ^ AR Barr; F. Gergely (2007). «Aurora A: Создатель и разрушитель шпиндельных полюсов». J Cell Sci . 120 (17): 2987–2996. doi : 10.1242/jcs.013136 . PMID  17715155.
  29. ^ Питерс, У., Дж. Чериан и др. (2006). «Исследование пространства фенотипа клеточного деления и функции Polo-подобной киназы с использованием малых молекул». Nat Chem Biol . 2 (11): 618–26. doi :10.1038/nchembio826. PMID  17028580. S2CID  22213611.{{cite journal}}: CS1 maint: несколько имен: список авторов ( ссылка )
  30. ^ ab Morgan DO: Клеточный цикл: принципы управления (Праймеры в биологии) Лондон: New Science Press Ltd; 2007:297. ISBN 978-0-9539181-2-6 
  31. ^ Belmont AS (2010). «Крупномасштабная организация хроматина: хорошее, удивительное и все еще озадачивающее». Curr Opin Cell Biol . 26 : 69–78. doi :10.1016/j.ceb.2013.10.002. PMC 3927141. PMID 24529248  . 
  32. ^ Марко, Дж. Ф. Митотическая хромосома: структура и механика. 2012. Организация и функция генома в ядре клетки. Wiley-VCH, Гл. 18, 449-485. doi :10.1002/9783527639991.ch18
  33. ^ Champoux JJ (2001). «ДНК-ТОПОИЗОМЕРАЗЫ: Структура, Функция и Механизм». Annu Rev Biochem . 70 (1): 369–413. doi :10.1146/annurev.biochem.70.1.369. PMID  11395412.
  34. ^ Хирано Т (2012). «Конденсины: универсальные организаторы хромосом с разнообразными функциями». Genes Dev . 26 (15): 1659–1678. doi :10.1101/gad.194746.112. PMC 3418584. PMID  22855829 . 
  35. ^ Maresca TJ, Freedman BS, Heald R (2005). «Гистон H1 необходим для митотической архитектуры хромосом и сегрегации в экстрактах яиц Xenopus laevis». J. Cell Biol . 169 (6): 859–69. doi :10.1083/jcb.200503031. PMC 2171634. PMID  15967810 . 
  36. ^ Равен, Питер Х.; Рэй Ф. Эверт; Сьюзен Э. Эйххорн (2005). Биология растений, 7-е издание . Нью-Йорк: WH Freeman and Company Publishers. стр. 59. ISBN 0-7167-1007-2.
  37. ^ Бейкер DJ, Чен J, ван Дёрсен JM (2005). «Митотическая контрольная точка при раке и старении: чему нас научили мыши?». Curr. Opin. Cell Biol . 17 (6): 583–9. doi :10.1016/j.ceb.2005.09.011. PMID  16226453.
  38. ^ Thery M, Jimenez-Dalmaroni A, Racine V, Bornens M, Julicher F (2007). "Экспериментальное и теоретическое исследование ориентации митотического веретена". Nature . 447 (7143): 493–6. Bibcode :2007Natur.447..493T. doi :10.1038/nature05786. PMID  17495931. S2CID  4391685.
  39. ^ Босвельд Ф, Маркова О, Гирао Б, Мартин С, Ван З, Пьер А, Балакирева М, Гог И, Эйнсли А, Кристофору Н, Любенский ДК, Минк Н, Беллаиш Ю (2016). «Эпителиальные трехклеточные соединения действуют как датчики формы интерфазных клеток, ориентируя митоз». Природа . 530 (7591): 496–8. Бибкод : 2016Natur.530..495B. дои : 10.1038/nature16970. ПМК 5450930 . ПМИД  26886796. 

Внешние ссылки