Олигонуклеотиды — это короткие молекулы ДНК или РНК , олигомеры , которые имеют широкий спектр применения в генетическом тестировании , исследованиях и судебной экспертизе . Обычно изготавливаемые в лаборатории методом твердофазного химического синтеза , [1] эти небольшие фрагменты нуклеиновых кислот могут быть изготовлены в виде одноцепочечных молекул с любой указанной пользователем последовательностью и поэтому имеют жизненно важное значение для искусственного синтеза генов , полимеразной цепной реакции (ПЦР), секвенирования ДНК , молекулярного клонирования и в качестве молекулярных зондов . В природе олигонуклеотиды обычно встречаются в виде небольших молекул РНК, которые функционируют в регуляции экспрессии генов (например, микроРНК ), [2] или являются промежуточными продуктами деградации, полученными при распаде более крупных молекул нуклеиновых кислот.
Олигонуклеотиды характеризуются последовательностью нуклеотидных остатков , которые составляют всю молекулу. Длина олигонуклеотида обычно обозначается как « -мер » (от греч. meros , «часть»). Например, олигонуклеотид из шести нуклеотидов (нт) является гексамером, в то время как один из 25 нт обычно называется «25-мером». Олигонуклеотиды легко связываются, специфичным для последовательности образом, с соответствующими им комплементарными олигонуклеотидами, ДНК или РНК, образуя дуплексы или, реже, гибриды более высокого порядка. Это основное свойство служит основой для использования олигонуклеотидов в качестве зондов для обнаружения определенных последовательностей ДНК или РНК. Примерами процедур, в которых используются олигонуклеотиды, являются ДНК-микрочипы , Саузерн-блоты , анализ ASO , [3] флуоресцентная гибридизация in situ (FISH), ПЦР и синтез искусственных генов.
Олигонуклеотиды состоят из 2'-дезоксирибонуклеотидов (олигодезоксирибонуклеотидов), которые могут быть модифицированы в остове или в положении сахара 2' для достижения различных фармакологических эффектов. Эти модификации придают олигонуклеотидам новые свойства и делают их ключевым элементом в антисмысловой терапии . [4] [5]
Олигонуклеотиды синтезируются химически с использованием строительных блоков, защищенных фосфорамидитов природных или химически модифицированных нуклеозидов или, в меньшей степени, ненуклеозидных соединений. Сборка цепи олигонуклеотидов происходит в направлении от 3' до 5', следуя рутинной процедуре, называемой «синтетическим циклом». Завершение одного синтетического цикла приводит к добавлению одного нуклеотидного остатка к растущей цепи. Выход менее 100% каждого синтетического шага и возникновение побочных реакций устанавливают практические пределы эффективности процесса. В целом, последовательности олигонуклеотидов обычно короткие (длиной 13–25 нуклеотидов). [6] Максимальная длина синтетических олигонуклеотидов едва ли превышает 200 нуклеотидных остатков. Для выделения продуктов с желаемой последовательностью можно использовать ВЭЖХ и другие методы. [ необходима цитата ]
Создание химически стабильных коротких олигонуклеотидов было самой ранней проблемой в разработке терапии ASO. Природные олигонуклеотиды легко разрушаются нуклеазами, ферментом, который расщепляет нуклеотиды и присутствует в изобилии в каждом типе клеток. [7] Короткие последовательности олигонуклеотидов также имеют слабую внутреннюю связывающую аффинность, что способствует их разрушению in vivo. [8]
Аналоги нуклеотидов нуклеозидорганотиофосфата (PS) придают олигонуклеотидам некоторые полезные свойства. Ключевыми полезными свойствами, которые PS-остовы придают нуклеотидам, являются диастереомерная идентификация каждого нуклеотида и возможность легко отслеживать реакции с участием фосфоротиоатных нуклеотидов, что полезно в синтезе олигонуклеотидов. [ 9] Модификации PS-остова олигонуклеотидов защищают их от нежелательной деградации ферментами. [10] Модификация нуклеотидного остова широко используется, поскольку ее можно достичь относительно легко и точно на большинстве нуклеотидов. [9] Сообщалось, что флуоресцентные модификации на 5'- и 3'-концах олигонуклеотидов позволяют оценить структуры, динамику и взаимодействия олигонуклеотидов с окружающей средой. [11]
Другая модификация, полезная для медицинского применения олигонуклеотидов, — это модификации сахара 2' . Модификация сахара в положении 2' увеличивает эффективность олигонуклеотидов за счет усиления связывающих способностей олигонуклеотидов с мишенью, особенно в антисмысловых олигонуклеотидных терапиях . [8] Они также уменьшают неспецифическое связывание с белками, повышая точность нацеливания на конкретные белки. [8] Две из наиболее часто используемых модификаций — это 2'-O-метил и 2'-O-метоксиэтил. [8] Также сообщалось о флуоресцентных модификациях на нуклеиновой основе. [11]
Антисмысловые олигонуклеотиды (ASO) представляют собой одиночные цепи ДНК или РНК, которые комплементарны выбранной последовательности. [6] В случае антисмысловой РНК они предотвращают трансляцию белка определенных цепей информационной РНК , связываясь с ними в процессе, называемом гибридизацией . [12] Антисмысловые олигонуклеотиды могут использоваться для нацеливания на определенную, комплементарную (кодирующую или некодирующую ) РНК. Если связывание происходит, этот гибрид может быть разрушен ферментом РНКазой H. [ 12] РНКаза H представляет собой фермент, который гидролизует РНК, и при использовании в антисмысловом олигонуклеотиде приводит к снижению экспрессии мРНК на 80-95%. [6]
Использование антисмысловых олигонуклеотидов морфолино для нокдауна генов у позвоночных , которое в настоящее время является стандартной методикой в биологии развития и применяется для изучения измененной экспрессии генов и функций генов, было впервые разработано Джанет Хисман с использованием Xenopus . [13] Одобренные FDA препараты морфолино включают этеплирсен и голодирсен . Антисмысловые олигонуклеотиды также использовались для ингибирования репликации вируса гриппа в клеточных линиях. [14] [15]
Нейродегенеративные заболевания, которые являются результатом одного мутантного белка, являются хорошими мишенями для антисмысловой олигонуклеотидной терапии из-за их способности нацеливаться и модифицировать очень специфические последовательности РНК с высокой селективностью. [3] Многие генетические заболевания, включая болезнь Хантингтона , болезнь Альцгеймера , болезнь Паркинсона и боковой амиотрофический склероз (БАС), связаны с изменениями ДНК, которые приводят к неправильным последовательностям РНК и приводят к неправильно транслированным белкам, которые оказывают токсическое физиологическое воздействие. [16]
Поглощение клетками/интернализация по-прежнему представляет собой самое большое препятствие на пути к успешной терапии олигонуклеотидами (ОН). Прямое поглощение, как и для большинства низкомолекулярных препаратов, затруднено полианионным остовом и молекулярным размером ОН. Точные механизмы поглощения и внутриклеточного перемещения к месту действия до сих пор в значительной степени неясны. Более того, небольшие различия в структуре/модификации ОН (см. выше) и различия в типе клеток приводят к огромным различиям в поглощении. Считается, что поглощение клетками происходит по разным путям после адсорбции ОН на поверхности клетки. В частности, исследования показывают, что большинство клеток культуры тканей легко поглощают АСО (фосфоротиотную связь) непродуктивным образом, что означает, что антисмысловой эффект не наблюдается. В отличие от этого конъюгация АСО с лигандами, распознаваемыми G-связанными рецепторами, приводит к повышенному продуктивному поглощению. [17] Вслед за этой классификацией (непродуктивные против продуктивных), интернализация клеток в основном происходит энергозависимым способом (рецептор-опосредованный эндоцитоз), но энергонезависимая пассивная диффузия (гимноз) не может быть исключена. После прохождения клеточной мембраны терапевтические средства ON инкапсулируются в ранних эндосомах , которые транспортируются к поздним эндосомам, которые в конечном итоге сливаются с лизосомами, содержащими деградирующие ферменты при низком pH. [18] Чтобы оказать свою терапевтическую функцию, ON необходимо покинуть эндосому до ее деградации. В настоящее время не существует универсального метода преодоления проблем доставки, поглощения клетками и выхода из эндосом, но существует несколько подходов, которые адаптированы к конкретным клеткам и их рецепторам. [19]
Конъюгация терапевтических средств ON с сущностью, ответственной за распознавание/поглощение клетками, не только увеличивает поглощение (см. выше), но также, как полагают, снижает сложность поглощения клетками, поскольку в этом случае задействован в основном один (идеально известный) механизм. [18] Это было достигнуто с помощью конъюгатов малых молекул-ON, например, содержащих N-ацетилгалактозамин , который нацелен на рецепторы гепатоцитов . [20] Эти конъюгаты являются прекрасным примером получения повышенного поглощения клетками в сочетании с целевой доставкой, поскольку соответствующие рецепторы сверхэкспрессируются на целевых клетках, что приводит к целевой терапии (сравните конъюгаты антитело-лекарство, которые используют сверхэкспрессированные рецепторы на раковых клетках). [19] Другим широко используемым и тщательно исследованным субъектом для целевой доставки и повышенного поглощения клетками олигонуклеотидов являются антитела .
Алкиламиды могут использоваться в качестве хроматографических неподвижных фаз. [21] Эти фазы были исследованы для разделения олигонуклеотидов. [22] Высокоэффективная жидкостная хроматография с обращенной фазой ион-пар используется для разделения и анализа олигонуклеотидов после автоматизированного синтеза. [23]
Смесь 5-метоксисалициловой кислоты и спермина может быть использована в качестве матрицы для анализа олигонуклеотидов в масс-спектрометрии MALDI . [24] Масс-спектрометрия с ионизацией электрораспылением (ESI-MS) также является мощным инструментом для характеристики массы олигонуклеотидов. [25]
ДНК-микрочипы являются полезным аналитическим применением олигонуклеотидов. По сравнению со стандартными кДНК-микрочипами , микрочипы на основе олигонуклеотидов имеют более контролируемую специфичность по сравнению с гибридизацией и способностью измерять наличие и распространенность альтернативно сплайсированных или полиаденилированных последовательностей. [26] Один подтип ДНК-микрочипов можно описать как субстраты (нейлон, стекло и т. д.), с которыми олигонуклеотиды были связаны с высокой плотностью. [27] Существует ряд применений ДНК-микрочипов в науках о жизни. [ необходима цитата ]
{{cite journal}}
: CS1 maint: numeric names: authors list (link){{cite book}}
: |journal=
проигнорировано ( помощь )