Гликогенфосфорилаза является одним из ферментов фосфорилазы ( EC 2.4.1.1). Гликогенфосфорилаза катализирует лимитирующий скорость этап гликогенолиза у животных, высвобождая глюкозо-1-фосфат из терминальной альфа-1,4-гликозидной связи. Гликогенфосфорилаза также изучается как модельный белок, регулируемый как обратимым фосфорилированием , так и аллостерическими эффектами.
Гликогенфосфорилаза расщепляет гликоген на субъединицы глюкозы (см. также рисунок ниже):
(α-1,4 гликогеновая цепь) n + Pi ⇌ (α-1,4 гликогеновая цепь) n-1 + α-D-глюкозо-1-фосфат. [2]
Гликоген остается с одной молекулой глюкозы меньше , а свободная молекула глюкозы находится в форме глюкозо-1-фосфата . Чтобы быть использованной для метаболизма , она должна быть преобразована в глюкозо-6-фосфат ферментом фосфоглюкомутазой .
Хотя реакция обратима in vitro , внутри клетки фермент работает только в прямом направлении, как показано ниже, поскольку концентрация неорганического фосфата намного выше, чем концентрация глюкозо-1-фосфата. [2]
Гликогенфосфорилаза может действовать только на линейные цепи гликогена (α1-4 гликозидная связь). Ее работа немедленно остановится на расстоянии четырех остатков от ветви α1-6 (которые чрезвычайно распространены в гликогене). В этих ситуациях необходим фермент деветвления , который выпрямит цепь в этой области. Кроме того, фермент трансфераза смещает блок из 3 глюкозильных остатков с внешней ветви на другой конец, а затем требуется фермент α1-6 глюкозидаза, чтобы разрушить оставшийся (один глюкозный) остаток α1-6, который остается в новой линейной цепи. После того, как все это сделано, гликогенфосфорилаза может продолжать работу. Фермент специфичен для цепей α1-4, так как молекула содержит щель длиной 30 ангстрем с тем же радиусом, что и спираль, образованная цепью гликогена; это вмещает 4-5 глюкозильных остатков, но слишком узко для ответвлений. Эта щель соединяет место хранения гликогена с активным, каталитическим участком.
Гликогенфосфорилаза имеет пиридоксальфосфат (PLP, полученный из витамина B 6 ) на каждом каталитическом сайте. Пиридоксальфосфат связывается с основными остатками (в данном случае Lys680) и ковалентно образует основание Шиффа . После образования связи с основанием Шиффа, удерживающей молекулу PLP в активном сайте, фосфатная группа на PLP легко отдает протон неорганической молекуле фосфата, позволяя неорганическому фосфату, в свою очередь, депротонироваться кислородом, образуя α-1,4-гликозидную связь. PLP легко депротонируется, поскольку его отрицательный заряд стабилизирован не только внутри фосфатной группы, но и в пиридиновом кольце, таким образом, сопряженное основание, полученное в результате депротонирования PLP, является довольно стабильным. Протонированный кислород теперь представляет собой хорошую уходящую группу , и цепь гликогена отделяется от терминального гликогена в режиме S N 1 , что приводит к образованию молекулы глюкозы с вторичным карбокатионом в положении 1. Наконец, депротонированный неорганический фосфат действует как нуклеофил и связывается с карбокатионом, что приводит к образованию глюкозо-1-фосфата и цепи гликогена, укороченной на одну молекулу глюкозы.
Существует также альтернативный предложенный механизм, включающий положительно заряженный кислород в конформации полукресла. [3]
Мономер гликогенфосфорилазы — это большой белок, состоящий из 842 аминокислот с массой 97,434 кДа в мышечных клетках. Хотя фермент может существовать как неактивный мономер или тетрамер, он биологически активен как димер из двух идентичных субъединиц. [4]
У млекопитающих основные изоферменты гликогенфосфорилазы находятся в мышцах, печени и мозге. Мозговой тип преобладает во взрослом мозге и эмбриональных тканях, тогда как печеночный и мышечный типы преобладают во взрослой печени и скелетных мышцах соответственно. [5]
Димер гликогенфосфорилазы имеет много областей биологического значения, включая каталитические сайты, сайты связывания гликогена, аллостерические сайты и обратимо фосфорилированный остаток серина. Во-первых, каталитические сайты относительно скрыты, 15Å от поверхности белка и от интерфейса субъединицы. [6] Это отсутствие легкого доступа каталитического сайта к поверхности имеет важное значение, поскольку делает активность белка весьма восприимчивой к регуляции, поскольку небольшие аллостерические эффекты могут значительно увеличить относительный доступ гликогена к сайту.
Возможно, наиболее важным регуляторным сайтом является Ser14, сайт обратимого фосфорилирования, очень близкий к интерфейсу субъединицы. Структурное изменение, связанное с фосфорилированием и с преобразованием фосфорилазы b в фосфорилазу a, заключается в размещении изначально неупорядоченных остатков 10-22 в α-спирали. Это изменение увеличивает активность фосфорилазы до 25% даже в отсутствие AMP и еще больше усиливает активацию AMP. [7]
Аллостерический сайт связывания AMP на мышечных изоформах гликогенфосфорилазы находится близко к интерфейсу субъединицы, как и Ser14. Связывание AMP на этом сайте, соответствующее изменению из состояния T фермента в состояние R, приводит к небольшим изменениям в третичной структуре на интерфейсе субъединицы, что приводит к большим изменениям в четвертичной структуре. [8] Связывание AMP вращает башенные спирали (остатки 262-278) двух субъединиц на 50˚ относительно друг друга за счет большей организации и межсубъединичных взаимодействий. Это вращение башенных спиралей приводит к вращению двух субъединиц на 10˚ относительно друг друга и, что более важно, нарушает остатки 282-286 (петля 280s), которые блокируют доступ к каталитическому сайту в состоянии T, но не в состоянии R. [6]
Последний, возможно, самый любопытный участок белка гликогенфосфорилазы — это так называемый участок хранения гликогена. Остатки 397-437 образуют эту структуру, которая позволяет белку ковалентно связываться с цепью гликогена на расстоянии целых 30 Å от каталитического участка. Этот участок, скорее всего, является участком, на котором фермент связывается с гранулами гликогена перед началом расщепления терминальных молекул глюкозы. Фактически, 70% димерной фосфорилазы в клетке существует в связанном виде с гранулами гликогена, а не в свободном состоянии. [9]
Ингибирование гликогенфосфорилазы было предложено в качестве одного из методов лечения диабета 2 типа . [10] Поскольку было показано, что выработка глюкозы в печени увеличивается у пациентов с диабетом 2 типа, [11] ингибирование высвобождения глюкозы из запасов гликогена печени, по-видимому, является обоснованным подходом. Клонирование гликогенфосфорилазы печени человека (HLGP) выявило новый аллостерический сайт связывания вблизи интерфейса субъединицы, который отсутствует в гликогенфосфорилазе мышц кролика (RMGP), обычно используемой в исследованиях. Этот сайт не был чувствителен к тем же ингибиторам, что и ингибиторы на аллостерическом сайте AMP, [12] и наибольший успех был достигнут при синтезе новых ингибиторов, которые имитируют структуру глюкозы, поскольку глюкозо-6-фосфат является известным ингибитором HLGP и стабилизирует менее активное состояние T. [13] Эти производные глюкозы имели определенный успех в ингибировании HLGP, с прогнозируемыми значениями Ki всего лишь 0,016 мМ. [14]
Мутации в мышечной изоформе гликогенфосфорилазы (PYGM) связаны с болезнью накопления гликогена типа V (GSD V, болезнь Мак-Ардля). На сегодняшний день выявлено более 65 мутаций в гене PYGM, которые приводят к болезни Мак-Ардля. [15] [16] Симптомы болезни Мак-Ардля включают мышечную слабость, миалгию и отсутствие выносливости, все из-за низкого уровня глюкозы в мышечной ткани. [17]
Мутации в изоформе гликогенфосфорилазы печени (PYGL) связаны с болезнью Герса ( болезнь накопления гликогена типа VI ). [18] [19] Болезнь Герса часто связана с легкими симптомами, обычно ограниченными гипогликемией , и иногда ее трудно диагностировать из-за остаточной активности фермента. [20]
Мозговая изоформа гликогенфосфорилазы (PYGB) была предложена в качестве биомаркера рака желудка . [21]
Гликогенфосфорилаза регулируется посредством аллостерического контроля и посредством фосфорилирования . Фосфорилаза a и фосфорилаза b существуют в двух формах: неактивное состояние T (напряженное) и состояние R (расслабленное). Фосфорилаза b обычно находится в состоянии T, неактивном из-за физиологического присутствия АТФ и глюкозо-6-фосфата, а фосфорилаза a обычно находится в состоянии R (активном). Изофермент гликогенфосфорилазы существует в печени, чувствительной к концентрации глюкозы, поскольку печень действует как экспортер глюкозы. По сути, фосфорилаза печени реагирует на глюкозу, что вызывает очень чувствительный переход из формы R в форму T, инактивируя ее; кроме того, фосфорилаза печени нечувствительна к АМФ.
Гормоны, такие как адреналин , инсулин и глюкагон, регулируют гликогенфосфорилазу с помощью систем амплификации вторичных мессенджеров, связанных с G-белками . Глюкагон активирует аденилатциклазу через рецептор, связанный с G-белком (GPCR), связанный с G -белками , который, в свою очередь, активирует аденилатциклазу для увеличения внутриклеточной концентрации цАМФ. цАМФ связывается с протеинкиназой А (ПКА) и активирует ее. ПКА фосфорилирует киназу фосфорилазы , которая, в свою очередь, фосфорилирует гликогенфосфорилазу b на Ser14, превращая ее в активную гликогенфосфорилазу a.
В печени глюкагон также активирует другой GPCR, который запускает другой каскад, что приводит к активации фосфолипазы C (PLC). PLC косвенно вызывает высвобождение кальция из эндоплазматического ретикулума гепатоцитов в цитозоль. Повышенная доступность кальция связывается с субъединицей кальмодулина и активирует киназу гликогенфосфорилазы. Киназа гликогенфосфорилазы активирует гликогенфосфорилазу тем же способом, который упоминался ранее.
Гликогенфосфорилаза b не всегда неактивна в мышцах, так как она может быть аллостерически активирована AMP. [6] [9] Увеличение концентрации AMP, которое происходит во время напряженных упражнений, сигнализирует о потребности в энергии. AMP активирует гликогенфосфорилазу b, изменяя свою конформацию с напряженной на расслабленную форму. Эта расслабленная форма имеет схожие ферментативные свойства с фосфорилированным ферментом. Увеличение концентрации АТФ противодействует этой активации, вытесняя AMP из места связывания нуклеотидов, что указывает на достаточные запасы энергии.
После приема пищи происходит выброс инсулина , сигнализирующего о наличии глюкозы в крови. Инсулин косвенно активирует протеинфосфатазу 1 (PP1) и фосфодиэстеразу через каскад передачи сигнала. PP1 дефосфорилирует гликогенфосфорилазу a, преобразуя неактивную гликогенфосфорилазу b. Фосфодиэстераза преобразует цАМФ в АМФ. Вместе они снижают концентрацию цАМФ и ингибируют PKA. В результате PKA больше не может инициировать каскад фосфорилирования, который заканчивается образованием (активной) гликогенфосфорилазы a. В целом, сигнализация инсулина снижает гликогенолиз, чтобы сохранить запасы гликогена в клетке и запустить гликогенез . [22]
Гликогенфосфорилаза была первым открытым аллостерическим ферментом. [8] Она была выделена и ее активность подробно охарактеризована Карлом Ф. Кори , Герхардом Шмидтом и Герти Т. Кори . [23] [24] Арда Грин и Герти Кори впервые кристаллизовали ее в 1943 году [25] и показали, что гликогенфосфорилаза существует либо в форме a, либо в форме b в зависимости от ее состояния фосфорилирования, а также в состояниях R или T в зависимости от присутствия AMP. [26]