stringtranslate.com

Трофосома

Трофосома — это высоковаскуляризированный орган, встречающийся у некоторых животных, в котором размещаются симбиотические бактерии , обеспечивающие своего хозяина пищей. Трофосомы содержатся в целоме трубчатых червей (семейство Siboglinidae , например, гигантский трубчатый червь Riftia pachyptila ) [1] и в теле симбиотических плоских червей рода Paracatenula . [2]

Трофосома Riftia pachyptila . [3]

Организация

Первоначально трофосома у френулят и вестиментифер , которые теперь классифицируются как члены Siboglinidae , была идентифицирована как мезодермальная ткань. [4] Открытие бактерий внутри трофосомной ткани произошло только в 1981 году, когда была изучена ультраструктура трофосомы нескольких видов френулят и Sclerolinum brattstromi . [5] Бактериоциты и симбионты составляют 70,5% и 24,1% объема трофосомы соответственно. [1] Как правило, трофосома простирается по всей области туловища между двумя продольными кровеносными сосудами от непосредственно позади вентральной ресничной полосы передней части до заднего конца туловища, очерченного перегородкой между туловищем и первым опистосомальным сегментом. [4] Трофосому можно разделить на переднюю и заднюю области из-за постепенных изменений в организации ткани хозяина , количестве бактериоцитов , размере и форме симбионтов. [4] Трофосома состояла спереди из небольшого количества бактериоцитов и обширной мезенхимы , в то время как задняя часть трофосомы впоследствии состояла из большой популяции бактериоцитов и периферической брюшины . [4]

Бактериоциты и симбионты

Цитоплазма бактериоцитов богата гликогеном и содержит некоторые электронно-плотные гранулы округлой формы . [4] Митохондрии и шероховатый эндопластический ретикулум малочисленны. Во всем переднем регионе трофосомы ядра были в основном овальными, но нерегулярность формы ядер наблюдается в заднем регионе трофосомы. [ 4] Клеточная стенка симбионтов состоит из внешней мембраны и цитоплазматической мембраны, типичной для грамотрицательных бактерий . [6] Симбионты часто были встроены отдельно в мембрану симбиосомы, прилегающую к клеточной стенке бактерий, за исключением случаев, когда они пролиферируют. [4] В таком случае пролиферирующие симбионты часто обнаруживаются в переднем регионе трофосомы.

Структурная организация

(A) Препарат выдавливания живого образца Paracatenula galateia под падающим светом, показывающий гладкий, шелковистый вид трофосомы и прозрачный рострум. (B) Поперечное сечение области трофосомы ТЭМ. Помечены один бактериоцит (обведенный пунктирной линией), тонкий эпидермис, необластные стволовые клетки и дорсовентральные мышцы. [7]

В уздечках

У френулят трофосома ограничена постаннулярной частью туловища. [4] Хотя, по-видимому, встречается структурный вариант френулятной трофосомы, этот орган обычно состоит из двух эпителиев и кровеносных пространств, зажатых между базальным матриксом эпителия , в котором внутренний состоит из бактериоцитов , а внешний — из целомической выстилки. [4] Трофосома Sclerolinum brattstromi состоит из центра бактериоцитов, окруженного кровеносным пространством и эпителием . [4]

У вестиментифер

Трофосома вестиментифер представляет собой сложное многодольчатое тело с сосудистой кровеносной системой , которая охватывает всю область туловища. [1] Каждая долька состоит из ткани бактериоцитов, окруженных апосимбиотическим целотелем. Она пересекается осевым эфферентным кровеносным сосудом и снабжена разветвленными периферическими афферентными кровеносными сосудами . [4]

ВОседакс

У Osedax трофосому имеет только самка. Трофосома у Osedax состоит из несимбиотических бактерий, которые находятся между мышечным слоем стенки тела и брюшиной в области ovisac и корня; следовательно, она происходит из соматической мезодермы . [8] [4]

Цвет трофосомы

У хозяина полностью отсутствует пищеварительная система , но он получает все необходимые питательные вещества от своего эндосимбионта . Хозяин, в свою очередь, обеспечивает эндосимбионта всеми необходимыми неорганическими соединениями для хемолитоавтотрофии . Неорганические элементы , такие как сероводород , окисляются бактериями для получения энергии для фиксации углерода . [5] Ткань трофосомы, содержащая большое количество концентрированной серы, имеет светло-желтоватый цвет. Во время ограничения серы, т. е. когда подача энергии снижается из-за низкой концентрации серы в окружающей среде, сохраненная сера поглощается, и трофосома выглядит намного темнее. [9] [10] [11] Таким образом, энергетическое состояние симбиоза можно специфически интерпретировать по цвету трофосомы.

Рост трофосомы

Развитие трофосомной ткани происходит за счет стволовых клеток в центре каждой дольки, способствуя появлению новых долек, а также регенерации бактериоцитов, циркулирующих от центра к периферии каждой дольки, через которые происходит апоптоз . [12] Таким образом, трофосомная ткань показывает не только высокий уровень пролиферации, но и довольно низкий уровень апоптоза. Более того, симбионты на периферии постоянно перевариваются и заменяются разделяющимися симбионтами в середине. [13]

Лизофосфатидилэтаноламины и свободные жирные кислоты являются продуктами гидролиза фосфолипидов фосфолипазами посредством нормальной деградации мембран. [14] Наличие довольно высоких уровней лизофосфатидилэтаноламинов и жирных кислот в трофосоме указывает на высокий оборот клеток хозяина и симбионта в трофосоме, способствующий деградации тканей и мембран. [12]

Хемолитоавтотрофия

У обоих этих животных симбиотические бактерии , живущие в трофосоме, окисляют серу или сульфид, находящиеся в среде обитания червя, и производят органические молекулы путем фиксации углекислого газа , которые хозяева могут использовать для питания и в качестве источника энергии. Этот процесс известен как хемосинтез или хемолитоавтотрофия .

Передача углерода

Было предложено два различных способа передачи углерода от симбионтов к хозяину.

Фиксация углерода

Трофосома наблюдала высокую активность рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы и рибулозо-5-фосфаткиназы, ферментов цикла фиксации CO2 Кальвина-Бенсона . [16] Важно отметить, что наблюдаемая активность двух ферментов, рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы и рибулозо-5-фосфаткиназы, присутствует в высоких концентрациях в трофосоме, но отсутствует в мышце . [ 17] Кроме того, роданеза , АПСредуктаза и АТФ-сульфурилаза участвуют в синтезе аденозинтрифосфата с использованием энергии, содержащейся в соединениях серы, таких как сероводород . Эти результаты способствуют выводу о том, что симбионт R. pachyptila способен производить АТФ посредством окисления сульфида, и что энергия АТФ может быть использована для фиксации углекислого газа .

Хранение гликогена в трофосоме

У Riftia pachyptila содержание гликогена в 100 мкмоль гликозильных единиц г −1 свежей массы, определенное в трофосоме, делится поровну между хозяином и симбионтами. [18] Хотя симбионты занимают только 25% трофосомы, содержание гликогена распределяется поровну между обоими партнерами , и это соотношение остается одинаковым до 40 часов гипоксии. Таким образом, хозяин и симбионт содержат около 50 мкмоль гликозильных единиц г −1 свежей массы трофосомы. Это количество сопоставимо с количеством в других тканях хозяина R. pachyptila , например, в стенке тела (35 мкмоль гликозильных единиц г −1 сырой массы) или вестиментуме (20 мкмоль гликозильных единиц г −1 сырой массы), с количеством других хемоавтотрофных симбиотических животных и с количеством несимбиотических животных, которые, как известно, адаптированы к длительным периодам отсутствия кислорода. [19]

Взаимодействие хозяина и микроба

Защита от окислительного повреждения

Более высокая концентрация кислорода в трофосоме, (частичный) анаэробный метаболизм хозяина и ферменты детоксикации АФК хозяина в этой ткани не только защитят симбионтов от окислительного повреждения, но и сведут к минимуму конкуренцию между хозяином и его кислородными симбионтами. [20]

Контроль популяции симбионтов

Контроль популяции симбионтов может быть в значительной степени результатом переваривания симбионтами , что по сути предотвращает побег симбионтов из их отсеков и/или перерастание хозяина. [20] Тем не менее, иммунная система может включаться в защиту фагов и распознавание симбионтов во время симбиоза. [20]

Коммуникация между хозяином и микробом

Коммуникация с хозяином может включать в себя эукариотическую -подобную белковую структуру. [20] Эти симбиотические белки, которых насчитывается более 100 в образцах трофосом, предполагают симбиотическую роль. [20] Считалось, что анкириновые повторы помогают во взаимодействиях белок-белок . [21] Анкириновые повторы белков могут напрямую взаимодействовать с белками хозяина, чтобы модулировать созревание эндосомы и мешать пищеварению симбионта хозяина . [20]

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ abc Bright M, Sorgo A (2003). "Ультраструктурное повторное исследование трофосомы у взрослых особей Riftia pachyptila (Annelida, Siboglinidae)". Invertebrate Biology . 122 (4): 347–368. doi :10.1111/j.1744-7410.2003.tb00099.x.
  2. ^ Leisch N, Dirks U, Gruber-Vodicka HR, Schmid M, Sterrer W, Ott JA (2011). «Микроанатомия области трофосомы Paracatenula cf. polyhymnia (Catenulida, Platyhelminthes) и ее внутриклеточных симбионтов». Зооморфология . 130 (4): 261–271. doi : 10.1007/s00435-011-0135-y . PMC 3213344. PMID  22131640 . 
  3. ^ "Рис. 1.10 Гигантская Riftia pachyptila в их среде обитания и абиссальной фауне..." ResearchGate . Проверено 3 августа 2020 г.
  4. ^ abcdefghijkl Eichinger I, Klepal W, Schmid M, Bright M (апрель 2011 г.). «Организация и микроанатомия трофосомы Sclerolinum contortum (Polychaeta, Siboglinidae)». The Biological Bulletin . 220 (2): 140–53. doi :10.1086/BBLv220n2p140. PMID  21551450. S2CID  22468048.
  5. ^ ab Cavanaugh CM, Gardiner SL, Jones ML, Jannasch HW, Waterbury JB (июль 1981 г.). "Прокариотические клетки в гидротермальном водоотводном черве Riftia pachyptila Jones: возможные хемоавтотрофные симбионты". Science . 213 (4505): 340–2. Bibcode :1981Sci...213..340C. doi :10.1126/science.213.4505.340. PMID  17819907.
  6. ^ Claus GW, Roth LE (февраль 1964). «Тонкая структура грамотрицательной бактерии Acetobacter Suboxydans». Журнал клеточной биологии . 20 (2): 217–33. doi :10.1083/jcb.20.2.217. PMC 2106392. PMID 14126870  . 
  7. ^ Dirks U, Gruber-Vodicka HR, Leisch N, Bulgheresi S, Egger B, Ladurner P, Ott JA (2012). «Поддержание бактериального симбиоза у бесполо размножающегося и регенерирующего плоского червя Paracatenula galateia». PLOS ONE . 7 (4): e34709. doi : 10.1371/journal.pone.0034709 . PMC 3317999. PMID 22509347.  e34709. 
  8. ^ Rouse GW, Goffredi SK, Vrijenhoek RC (июль 2004 г.). «Osedax: морские черви, поедающие кости, с карликовыми самцами». Science . 305 (5684): 668–71. Bibcode :2004Sci...305..668R. doi :10.1126/science.1098650. PMID  15286372. S2CID  34883310.
  9. ^ Pflugfelder B, Fisher CR, Bright M (2005-04-01). «Цвет трофосомы: распределение элементарной серы у эндосимбионтов Riftia pachyptila (Vestimentifera; Siboglinidae)». Marine Biology . 146 (5): 895–901. doi :10.1007/s00227-004-1500-x. ISSN  0025-3162. S2CID  86203023.
  10. ^ Wilmot DB, Vetter RD (1990-06-01). «Бактериальный симбионт из трубчатого червя гидротермального источника Riftia pachyptila — специалист по сульфидам». Marine Biology . 106 (2): 273–283. doi :10.1007/BF01314811. ISSN  0025-3162. S2CID  84499903.
  11. ^ Скотт КМ, Боллер АДж, Добрински КП, Ле Брис Н (2012-02-01). «Реакция вестиментиферы гидротермального источника Riftia pachyptila на различия в химии среды обитания». Морская биология . 159 (2): 435–442. doi :10.1007/s00227-011-1821-5. ISSN  0025-3162. S2CID  99500443.
  12. ^ ab Klose J, Aistleitner K, Horn M, Krenn L, Dirsch V, Zehl M, Bright M (2016-01-05). Duperron S (ред.). "Трофосома глубоководного трубчатого червя Riftia pachyptila подавляет рост бактерий". PLOS ONE . ​​11 (1): e0146446. doi : 10.1371/journal.pone.0146446 . PMC 4701499 . PMID  26730960. 
  13. ^ Pflugfelder B, Cary SC, Bright M (июль 2009 г.). «Динамика пролиферации клеток и апоптоза отражает различные жизненные стратегии у вестиментиферовых трубчатых червей гидротермальных источников и холодных просачиваний». Cell and Tissue Research . 337 (1): 149–65. doi :10.1007/s00441-009-0811-0. PMID  19444472. S2CID  7853776.
  14. ^ Meylaers K, Clynen E, Daloze D, DeLoof A, Schoofs L (январь 2004 г.). «Идентификация 1-лизофосфатидилэтаноламина (C(16:1)) как антимикробного соединения у комнатной мухи Musca domestica». Биохимия насекомых и молекулярная биология . 34 (1): 43–9. doi :10.1016/j.ibmb.2003.09.001. PMID  14723896.
  15. ^ ab Bright M, Keckeis H, Fisher CR (2000-05-19). "Авторадиографическое исследование фиксации, переноса и использования углерода в симбиозе Riftia pachyptila". Морская биология . 136 (4): 621–632. doi :10.1007/s002270050722. S2CID  84235858.
  16. ^ abc Felbeck H, Jarchow J (1998-05-01). "Выделение углерода из очищенных хемоавтотрофных бактериальных симбионтов трубчатого червя гидротермального источника Riftia pachyptila". Физиологическая зоология . 71 (3): 294–302. doi :10.1086/515931. PMID  9634176. S2CID  44828316.
  17. ^ Фелбек Х (1 марта 1983 г.). «Окисление сульфида и фиксация углерода безкишечным моллюском Solemya reidi: симбиоз животных и бактерий». Журнал сравнительной физиологии . 152 (1): 3–11. doi :10.1007/BF00689721. ISSN  1432-1351. S2CID  9462221.
  18. ^ Arndt C, Schiedek D, Felbeck H (1998). «Метаболические реакции червя Riftia pachyptila, обитающего в гидротермальных источниках, на тяжелую гипоксию». Серия «Прогресс морской экологии» . 174 : 151–158. Bibcode : 1998MEPS..174..151A. doi : 10.3354/meps174151 . ISSN  0171-8630.
  19. ^ Sorgo A, Gaill F, Lechaire JP, Arndt C, Bright M (2002). «Хранение гликогена в трофосоме Riftia pachyptila: вклад хозяина и симбионтов». Серия «Прогресс морской экологии» . 231 : 115–120. Bibcode : 2002MEPS..231..115S. doi : 10.3354/meps231115 . ISSN  0171-8630.
  20. ^ abcdef Хинцке Т., Кляйнер М., Бреузинг С., Фелбек Х., Хеслер Р., Зиверт С.М. и др. (декабрь 2019 г.). Руби Д., Дистел Э.Г. (ред.). «Взаимодействие хозяина и микроба в хемосинтетическом симбиозе Riftia pachyptila». мБио . 10 (6): e02243–19, /mbio/10/6/mBio.02243–19.atom. doi : 10.1128/mBio.02243-19. ПМК 6918071 . ПМИД  31848270. 
  21. ^ Li J, Mahajan A, Tsai MD (декабрь 2006 г.). «Повтор анкирина: уникальный мотив, опосредующий белок-белковые взаимодействия». Биохимия . 45 (51): 15168–78. CiteSeerX 10.1.1.502.2771 . doi :10.1021/bi062188q. PMID  17176038. 

Внешние ссылки