Электропорация , или электропроницаемость , представляет собой метод, при котором к клеткам прикладывается электрическое поле с целью увеличения проницаемости клеточной мембраны . Это может позволить вводить в клетку химические вещества, лекарства, электродные матрицы или ДНК (также называемый электропереносом ). [1] [2] [3] [4]
Необратимая электропорация используется и оценивается как абляция сердца, позволяющая убить очень небольшие участки сердечной мышцы. Считается, что он обеспечивает лучшую селективность, чем предыдущие методы, в которых для уничтожения больших объемов использовалось тепло или холод. [5] Его также использовали для уничтожения раковых клеток.
В микробиологии процесс электропорации часто используется для трансформации протопластов бактерий , дрожжей или растений путем введения новой кодирующей ДНК. Если бактерии и плазмиды смешаны вместе, плазмиды можно перенести в бактерии после электропорации, хотя, в зависимости от того, что переносится, также можно использовать проникающие в клетку пептиды или сдавливание клеток . Электропорация осуществляется путем пропускания тысяч вольт (~ 8 кВ/см) через суспендированные клетки в кювете для электропорации. [2] После этого с клетками следует обращаться осторожно, пока они не получат возможность делиться, образуя новые клетки, содержащие воспроизведенные плазмиды. Этот процесс примерно в десять раз более эффективен в увеличении проницаемости клеточных мембран, чем химическая трансформация , хотя во многих лабораториях нет специального оборудования, необходимого для электропортации. [6] [7] [ нужна проверка ]
Электропорация также очень эффективна для введения чужеродных генов в клетки культуры ткани, особенно в клетки млекопитающих . Например, его используют в процессе получения нокаутных мышей , а также при лечении опухолей, генной терапии и клеточной терапии. Процесс внедрения чужеродной ДНК в эукариотические клетки известен как трансфекция . Электропорация очень эффективна для трансфекции клеток в суспензии с использованием кювет для электропорации. Электропорация доказала свою эффективность при использовании на тканях in vivo , внутриутробно , а также при трансфекции in ovo . Прикрепленные клетки также можно трансфицировать с помощью электропорации, что дает исследователям альтернативу трипсинизированию клеток перед трансфекцией. Однако одним из недостатков электропорации является то, что после этого процесса может быть нарушена экспрессия более 7000 генов. [8] Это может вызвать проблемы в исследованиях, где экспрессию генов необходимо контролировать для обеспечения точных и точных результатов.
Хотя объемная электропорация имеет много преимуществ по сравнению с методами физической доставки, такими как микроинъекции и генные пушки , она все же имеет ограничения, в том числе низкую жизнеспособность клеток. Была изучена миниатюризация электропорации, приводящая к микроэлектропорации и нанотрансфекции тканей с использованием методов электропорации через наноканалы для минимально инвазивной доставки груза в клетки. [9] [10]
Электропорация также использовалась как механизм запуска слияния клеток . Искусственно вызванное слияние клеток можно использовать для исследования и лечения различных заболеваний, таких как диабет, [11] [12] [13] для регенерации аксонов центральной нервной системы [14] и производства клеток с желаемыми свойствами, например, в клеточных вакцинах для иммунотерапия рака. [15] Однако первым и наиболее известным применением слияния клеток является производство моноклональных антител в гибридомной технологии , где гибридные клеточные линии (гибридомы) образуются путем слияния специфических В-лимфоцитов, продуцирующих антитела, с клеточной линией миеломы (рака В-лимфоцитов). . [16]
Электропорация проводится с помощью электропораторов — специальных устройств, создающих электростатическое поле в клеточном растворе. Клеточную суспензию вносят пипеткой в стеклянную или пластиковую кювету, по бокам которой имеются два алюминиевых электрода . Для бактериальной электропорации обычно используется суспензия объемом около 50 микролитров . Перед электропорацией эту суспензию бактерий смешивают с трансформируемой плазмидой . Смесь пипеткой заносят в кювету, устанавливают напряжение и емкость и вставляют кювету в электропоратор. Процесс требует прямого контакта между электродами и суспензией. Сразу после электропорации к бактериям добавляют один миллилитр жидкой среды (в кювету или пробирку Эппендорфа ) и пробирку инкубируют при оптимальной для бактерий температуре в течение часа или более, чтобы обеспечить восстановление клеток и экспрессию плазмиду с последующим культивированием бактерий на чашках с агаром .
Успех электропорации во многом зависит от чистоты раствора плазмиды, особенно от содержания в нем солей. Растворы с высокой концентрацией соли могут вызвать электрический разряд (известный как искрение ), который часто снижает жизнеспособность бактерий. Для дальнейшего детального изучения процесса большее внимание следует уделить выходному сопротивлению устройства-поратора и входному сопротивлению суспензии клеток (например, содержанию солей ).
Поскольку клеточная мембрана не способна пропускать ток (за исключением ионных каналов), она действует как электрический конденсатор. Воздействие на мембраны электрического поля высокого напряжения приводит к их временному разрушению, в результате чего образуются поры, которые достаточно велики, чтобы макромолекулы (например, ДНК) могли проникать в клетку или покидать ее. [17]
Кроме того, электропорацию можно использовать для увеличения проницаемости клеток во время внутриутробных инъекций и операций. В частности, электропорация позволяет более эффективно трансфицировать ДНК, РНК, кшРНК и все нуклеиновые кислоты в клетки мышей и крыс. Успех электропорации in vivo во многом зависит от напряжения, повторяемости, импульсов и продолжительности. Развивающиеся центральные нервные системы наиболее эффективны для электропорации in vivo благодаря видимости желудочков для инъекций нуклеиновых кислот, а также повышенной проницаемости делящихся клеток. Электропорация инъецированных внутриутробно эмбрионов проводится через стенку матки, часто с помощью электродов типа щипцов, чтобы ограничить повреждение эмбриона. [18]
Электроперенос генов in vivo был впервые описан в 1991 году [19] , и на сегодняшний день проводится множество доклинических исследований электропереноса генов. Метод используется для доставки большого количества терапевтических генов для потенциального лечения ряда заболеваний, таких как: нарушения иммунной системы, опухоли, нарушения обмена веществ, моногенетические заболевания, сердечно-сосудистые заболевания, анальгезия.... [ 20] [21] [22 ] ]
Что касается необратимой электропорации, первое успешное лечение злокачественных опухолей кожи, имплантированных мышам, было завершено в 2007 году группой ученых, которым удалось добиться полной абляции опухоли у 12 из 13 мышей. Они добились этого, отправив 80 импульсов по 100 микросекунд с частотой 0,3 Гц и величиной электрического поля 2500 В/см для лечения кожных опухолей. [23] В настоящее время ряд компаний, в том числе AngioDynamics, Inc. и VoltMed, Inc., продолжают разрабатывать и внедрять необратимые технологии на основе электропорации в клинических условиях.
Первую группу, изучавшую электропорацию в медицинских целях, возглавил Луис М. Мир из Института Гюстава Русси. В этом случае они рассматривали возможность использования обратимой электропорации в сочетании с непроницаемыми макромолекулами. Первое исследование, посвященное тому, как наносекундные импульсы можно использовать на клетках человека, было проведено исследователями из Медицинской школы Восточной Вирджинии и Университета Олд-Доминион и опубликовано в 2003 году. [24]
Первое медицинское применение электропорации было использовано для введения противораковых препаратов с плохой проницаемостью в опухолевые узелки. [25] Вскоре электроперенос генов стал вызывать особый интерес из-за его низкой стоимости, простоты реализации и безопасности. А именно, вирусные векторы могут иметь серьезные ограничения с точки зрения иммуногенности и патогенности при использовании для переноса ДНК. [26]
Необратимая электропорация используется и оценивается как абляция сердца, позволяющая убить очень небольшие участки сердечной мышцы. Это делается для лечения нарушений сердечного ритма . Сердечный катетер доставляет серии высоковольтных сверхбыстрых электрических импульсов, которые образуют необратимые поры в клеточных мембранах, что приводит к гибели клеток. Считается, что он обеспечивает лучшую избирательность, чем предыдущие методы, в которых для уничтожения больших объемов мышц использовалось тепло или холод. [5]
У свиней было обнаружено, что более высокое напряжение электропорации необратимо разрушает клетки-мишени в узком диапазоне, оставляя соседние клетки незатронутыми, и, таким образом, представляет собой многообещающее новое лечение рака, болезней сердца и других болезненных состояний, требующих удаления тканей. [27] С тех пор необратимая электропорация (IRE) доказала свою эффективность в лечении рака человека: хирурги из Университета Джонса Хопкинса и других учреждений теперь используют эту технологию для лечения рака поджелудочной железы, который ранее считался неоперабельным. [28]
Также сообщалось о первом этапе I клинического исследования электропереноса генов у пациентов с метастатической меланомой. [29] [30] Осуществляли опосредованную электропорацией доставку плазмиды, кодирующей ген интерлейкина-12 (pIL-12), и контролировали безопасность, переносимость и терапевтический эффект. Исследование пришло к выводу, что электроперенос гена с помощью pIL-12 безопасен и хорошо переносится. Кроме того, частичный или полный ответ наблюдался также в отдаленных нелеченых метастазах, что указывает на системный эффект лечения. На основании этих результатов они уже планируют перейти ко II фазе клинических исследований. В настоящее время проводится несколько клинических исследований электропереноса генов [31] , в которых отслеживается безопасность, переносимость и эффективность иммунизации ДНК-вакциной, которую вводят с помощью электрических импульсов.
Хотя метод не системный, а строго локальный, он по-прежнему остается наиболее эффективной невирусной стратегией доставки генов.
Недавний метод, называемый нетермической необратимой электропорацией (N-TIRE), оказался успешным в лечении многих различных типов опухолей и других нежелательных тканей. Эта процедура выполняется с использованием небольших электродов (диаметром около 1 мм), размещаемых внутри или вокруг целевой ткани, для подачи коротких повторяющихся импульсов электричества с заданным напряжением и частотой. Эти всплески электричества увеличивают трансмембранный потенциал покоя (ТМП), в результате чего в плазматической мембране образуются нанопоры. Когда электричество, приложенное к ткани, превышает порог электрического поля целевой ткани, клетки становятся постоянно проницаемыми из-за образования нанопор. В результате клетки не могут восстановить повреждения и погибают из-за потери гомеостаза. [32] N-TIRE уникален среди других методов абляции опухолей тем, что он не вызывает термического повреждения тканей вокруг него.
Напротив, обратимая электропорация возникает, когда электричество, подаваемое с помощью электродов, находится ниже порога электрического поля целевой ткани. Поскольку подаваемое электричество ниже порога клетки, оно позволяет клеткам восстановить свой фосфолипидный бислой и продолжить нормальные клеточные функции. Обратимая электропорация обычно выполняется с помощью методов лечения, которые включают введение лекарства или гена (или другой молекулы, которая обычно не проницаема для клеточной мембраны) в клетку. Не все ткани имеют одинаковый порог электрического поля; поэтому перед началом лечения необходимо провести тщательные расчеты, чтобы обеспечить безопасность и эффективность. [33]
Одним из основных преимуществ использования N-TIRE является то, что, если все сделано правильно и в соответствии с тщательными расчетами, оно влияет только на целевую ткань. Белки, внеклеточный матрикс и критические структуры, такие как кровеносные сосуды и нервы, не затрагиваются и остаются здоровыми в результате этого лечения. Это позволяет ускорить выздоровление и способствует более быстрой замене мертвых опухолевых клеток здоровыми клетками. [34]
Прежде чем проводить процедуру, ученые должны тщательно рассчитать, что именно необходимо сделать, и лечить каждого пациента в индивидуальном порядке. Для этого обычно используются технологии визуализации, такие как компьютерная томография и МРТ, для создания трехмерного изображения опухоли. На основе этой информации они могут приблизительно определить объем опухоли и принять решение о наилучшем способе действий, включая место введения электродов, угол их введения, необходимое напряжение и многое другое, используя программные технологии. Часто для установки электродов во время процедуры используется компьютерная томография, особенно когда электроды используются для лечения опухолей головного мозга. [35]
Вся процедура очень быстрая, обычно занимает около пяти минут. Уровень успеха этих процедур высок [36] и очень перспективен для будущего лечения людей. Одним из недостатков использования N-TIRE является то, что электричество, подаваемое от электродов, может стимулировать сокращение мышечных клеток, что в зависимости от ситуации может иметь смертельные последствия. Поэтому при выполнении процедуры необходимо использовать паралитическое средство. Паралитические агенты , которые использовались в таких исследованиях, оказались успешными ; однако при использовании анестетиков всегда существует некоторый риск, хотя и небольшой.
Был разработан более поздний метод, названный высокочастотной необратимой электропорацией (H-FIRE). В этом методе используются электроды для подачи биполярных всплесков электричества на высокой частоте, в отличие от униполярных всплесков электричества на низкой частоте. Этот тип процедуры имеет такой же успех абляции опухоли, как и N-TIRE. Однако у него есть одно явное преимущество: H-FIRE не вызывает сокращения мышц у пациента, и поэтому нет необходимости в паралитическом агенте. [37] Кроме того, было продемонстрировано, что H-FIRE обеспечивает более предсказуемую абляцию из-за меньшей разницы в электрических свойствах тканей на более высоких частотах. [38]
Электропорацию также можно использовать для доставки лекарств или генов в клетку путем применения коротких и интенсивных электрических импульсов, которые временно проницаемы для клеточной мембраны, тем самым позволяя транспортировать молекулы, которые иначе не транспортировались бы через клеточную мембрану. Эта процедура называется электрохимиотерапией , когда транспортируемые молекулы представляют собой химиотерапевтические агенты, или электропереносом гена , когда транспортируемой молекулой является ДНК. Ученые из Каролинского института и Оксфордского университета используют электропорацию экзосом для доставки миРНК, антисмысловых олигонуклеотидов, химиотерапевтических агентов и белков специально к нейронам после их системного введения (в кровь). Поскольку эти экзосомы способны преодолевать гематоэнцефалический барьер , этот протокол может решить проблему плохой доставки лекарств в центральную нервную систему и потенциально лечить болезнь Альцгеймера , болезнь Паркинсона и рак головного мозга , среди других состояний. [39]
Бактериальная трансформация, как правило, является самым простым способом получения большого количества определенного белка, необходимого для биотехнологических целей или в медицине. Поскольку электроперенос гена является очень простым, быстрым и высокоэффективным методом, он впервые стал очень удобной заменой других процедур трансформации. [40]
Недавние исследования показали, что ударные волны можно использовать для предварительной обработки клеточной мембраны перед электропорацией. [41] [42] Эта синергетическая стратегия показала снижение требований к внешнему напряжению и создание более крупных пор. Кроме того, применение ударных волн позволяет воздействовать на желаемый участок мембраны. Эта процедура позволяет контролировать размер пор.
Электропорация позволяет вводить в клетку большие высокозаряженные молекулы, такие как ДНК , которые никогда не будут пассивно диффундировать через гидрофобное бислойное ядро. [2] Это явление указывает на то, что механизм заключается в создании заполненных водой отверстий нанометрового размера в мембране. [43] Электропоры были оптически отображены в моделях липидного бислоя, таких как бислои интерфейса капель [44] и гигантские однослойные везикулы, [45] в то время как добавление белков цитоскелета, таких как актиновые сети, к гигантским однослойным везикулам, по-видимому, предотвращает образование видимых электропор. [46] Также появились экспериментальные доказательства участия актиновых сетей в регуляции проницаемости клеточных мембран. [47] Хотя электропорация и пробой диэлектрика происходят в результате применения электрического поля, задействованные механизмы фундаментально различны. При пробое диэлектрика материал барьера ионизируется, создавая проводящий путь. Таким образом, материальные изменения имеют химическую природу. Напротив, во время электропорации молекулы липидов не изменяются химически, а просто меняют положение, открывая пору, которая действует как проводящий путь через бислой, поскольку он заполнен водой.
Электропорация — это динамическое явление, которое зависит от локального трансмембранного напряжения в каждой точке клеточной мембраны. Принято считать, что для заданной длительности и формы импульса существует определенный порог трансмембранного напряжения проявления явления электропорации (от 0,5 В до 1 В). Это приводит к определению порога величины электрического поля для электропорации (Eth ) . То есть электропорации подвергаются только клетки внутри областей, где E≥Eth . Если второй порог (E ir ) достигнут или превышен, электропорация поставит под угрозу жизнеспособность клеток, т.е. необратимая электропорация (IRE). [48]
Электропорация — это многоэтапный процесс, состоящий из нескольких отдельных этапов. [49] [50] Сначала необходимо подать короткий электрический импульс. Типичные параметры составляют 300–400 мВ в течение < 1 мс через мембрану (обратите внимание: напряжения, используемые в клеточных экспериментах, обычно намного выше, поскольку они прикладываются к объемному раствору на больших расстояниях, поэтому результирующее поле на реальной мембране составляет всего лишь небольшая часть приложенного смещения). При приложении этого потенциала мембрана заряжается как конденсатор за счет миграции ионов из окружающего раствора. Как только критическое поле достигается, происходит быстрая локализованная перестройка морфологии липидов. Полученная структура считается «пред-порой», поскольку она не является электропроводной, но быстро приводит к созданию проводящей поры. [51] Доказательства существования таких предпор в основном получены из «мерцания» пор, что предполагает переход между проводящим и изолирующим состояниями. [52] Было высказано предположение, что эти предпоры представляют собой небольшие (~3 Å) гидрофобные дефекты. Если эта теория верна, то переход в проводящее состояние можно объяснить перестройкой на краю поры, при которой липидные головки сгибаются, образуя гидрофильный интерфейс. Наконец, эти проводящие поры могут либо зажить, закрывая бислой, либо расшириться, в конечном итоге разрывая его. Итоговая судьба зависит от того, был ли превышен критический размер дефекта [53] , который, в свою очередь, зависит от приложенного поля, локального механического напряжения и энергии края бислоя.
Подача на клетку электрических импульсов достаточной силы вызывает увеличение трансмембранной разности потенциалов, что провоцирует дестабилизацию мембраны. Проницаемость клеточной мембраны увеличивается, и в противном случае в клетку проникают непроницаемые молекулы. [54] [55] Хотя механизмы электропереноса генов еще не до конца изучены, было показано, что внедрение ДНК происходит только в часть мембраны, обращенную к катоду, и что для успешной трансфекции необходимо несколько этапов: электрофоретическая миграция ДНК по направлению к клетке, вставка ДНК в мембрану, транслокация через мембрану, миграция ДНК к ядру, перенос ДНК через ядерную оболочку и, наконец, экспрессия генов. [56] Существует ряд факторов, которые могут влиять на эффективность электропереноса генов, таких как: температура, параметры электрических импульсов, концентрация ДНК, используемый буфер для электропорации, размер клеток и способность клеток экспрессировать трансфицированные гены. [57] При электропереносе генов in vivo решающее значение также имеют диффузия ДНК через внеклеточный матрикс, свойства тканей и общая проводимость тканей. [58]
В 1960-е годы было известно, что при приложении внешнего электрического поля можно создать большой мембранный потенциал на двух полюсах клетки. В 1970-х годах было обнаружено, что когда мембранный потенциал достигает критического уровня, мембрана разрушается и может восстанавливаться. [59] К 1980-м годам это отверстие использовалось для введения в клетки различных материалов/молекул. [60]
{{cite book}}
: CS1 maint: другие ( ссылка )