stringtranslate.com

Эпикутикулярный воск

Эпикутикулярный воск — это воскообразное покрытие, которое покрывает внешнюю поверхность кутикулы растений у наземных растений . Он может образовывать беловатую пленку или налет на листьях, плодах и других органах растений. Химически он состоит из гидрофобных органических соединений, в основном линейных алифатических углеводородов с различными замещенными функциональными группами или без них . Основные функции эпикутикулярного воска — уменьшение смачивания поверхности и потери влаги. Другие функции включают отражение ультрафиолетового света, помощь в формировании ультрагидрофобной и самоочищающейся поверхности и действие в качестве противозаползающей поверхности.

Химический состав

Обычные компоненты эпикутикулярного воска — это преимущественно алифатические углеводороды с прямой цепью , которые могут быть насыщенными или ненасыщенными и содержать различные функциональные группы, такие как -гидроксил , карбоксил и -кетоил в терминальном положении. Это расширяет спектр состава воска до жирных кислот , первичных спиртов и альдегидов ; если замещение происходит в середине цепи, это приведет к β - дикетонам и вторичным спиртам . [1] Другими основными компонентами эпикутикулярных восков являются длинноцепочечные н- алкановые кислоты, такие как C24 , C26 и C28 . [ 2]

Морфология воска, визуализированная с помощью СЭМ: восковые трубочки, в которых преобладает нонакозан-10-ол на листе Thalictrum flavum glaucum L. (Desf.) на (a), трубочки, в которых преобладают β -дикетонами на листе Eucalyptus gunnii Hook на (b), восковой лист Triticum aestivum 'Naturastar' на (c) и палочки, демонстрирующие терминальное дендритное разветвление, состоящее из сложной смеси нескольких соединений на листе Brassica oleracea L. на (d). [3]

Эти воски могут состоять из множества соединений, которые различаются между видами растений. Восковые трубочки и восковые пластинки часто имеют как химические, так и морфологические различия. Трубочки можно разделить на две группы: первая в основном содержит вторичные спирты, а вторая содержит β -дикетоны. Тромбоциты либо состоят из тритерпеноидов , алканов , альдегидов, эфиров , вторичных спиртов или флавоноидов . Однако химический состав не является диагностическим признаком трубочки или тромбоцита, поскольку он не определяет морфологию. [3]

Парафины встречаются , например, в листьях гороха и капусты . Листья карнаубской пальмы и банана содержат алкиловые эфиры. Асимметричный вторичный спирт 10-нонакозанол встречается в большинстве голосеменных, таких как гинкго билоба и ель ситхинская, а также во многих лютиковых , маковых и розоцветных и некоторых мхах . Симметричные вторичные спирты встречаются в капустных, включая Arabidopsis thaliana . Первичные спирты (чаще всего октакозан-1-ол ) встречаются в эвкалипте , бобовых и большинстве злаковых . Злаки также могут содержать β-дикетоны, как и эвкалипт , самшит и вересковые . Молодые листья бука , стебли сахарного тростника и плоды лимона содержат альдегиды. Тритерпены являются основным компонентом восков плодов яблок , слив и винограда . [1] [4] Циклические компоненты часто регистрируются в эпикутикулярных восках, как в Nicotiana, но, как правило, являются второстепенными компонентами. Они могут включать фитостеролы, такие как β-ситостерол , и пентациклические тритерпеноиды, такие как урсоловая кислота и олеаноловая кислота , а также их соответствующие предшественники, α-амирин и β-амирин. [1]

Фарина

Многие виды рода Primula и папоротники, такие как Cheilanthes , Pityrogramma и Notholaena , а также многие роды суккулентных растений семейства Crassulaceae , производят мучнистый, беловатый или бледно-желтый железистый секрет, известный как фарина, который не является эпикутикулярным воском, но в основном состоит из кристаллов другого класса полифенольных соединений, известных как флавоноиды. [5] В отличие от эпикутикулярного воска, фарина секретируется специализированными железистыми волосками , а не кутикулой всего эпидермиса. [5]

Физические свойства

Эпикутикулярные кристаллы воска, окружающие устьичное отверстие на нижней поверхности листа розы.

Эпикутикулярные воски в основном являются твердыми веществами при температуре окружающей среды с температурой плавления выше примерно 40 °C (100 °F). Они растворимы в органических растворителях, таких как хлороформ и гексан , что делает их доступными для химического анализа, но у некоторых видов этерификация кислот и спиртов в эстолиды или полимеризация альдегидов может привести к образованию нерастворимых соединений. Экстракты растворителей кутикулярных восков содержат как эпикутикулярные, так и кутикулярные воски, часто загрязненные липидами клеточных мембран нижележащих клеток. Эпикутикулярный воск теперь также можно выделить механическими методами, которые отличают эпикутикулярный воск снаружи кутикулы растения от кутикулярного воска, встроенного в полимер кутикулы. [6] Как следствие, теперь известно, что эти два вещества химически различны, [7] хотя механизм, который разделяет молекулярные виды на два слоя, неизвестен. Недавние исследования с помощью сканирующей электронной микроскопии (СЭМ), атомно-силовой микроскопии (АСМ) и нейтронной рефлектометрии на восстановленных восковых пленках обнаружили пшеничные эпикутикулярные воски; [8] состоит из поверхностных эпикутикулярных кристаллов и нижележащего пористого фонового слоя пленки, который подвергается набуханию при контакте с водой, что указывает на то, что фоновая пленка проницаема и восприимчива к транспортировке воды.

Эпикутикулярный воск может отражать ультрафиолетовый свет, как, например, белый, меловой восковой налет Dudleya brittonii , который имеет самую высокую отражательную способность ультрафиолетового света (УФ) среди всех известных природных биологических веществ. [9]

Термин «сизый» используется для обозначения любой листвы, например, листвы семейства толстянковых , которая кажется беловатой из-за воскового покрытия. Покрытия эпикутикулярных флавоноидов могут называться «фаринными», а сами растения описываются как «мучнистые» или « мучнистые ». [10] : 51 

Эпикутикулярные кристаллы воска

Эпикутикулярный воск образует кристаллические выступы на поверхности растения, которые усиливают их водоотталкивающие свойства, [11] создают свойство самоочищения, известное как эффект лотоса [12], и отражают УФ- излучение. Формы кристаллов зависят от присутствующих в них восковых соединений. Асимметричные вторичные спирты и β-дикетоны образуют полые восковые нанотрубки , в то время как первичные спирты и симметричные вторичные спирты образуют плоские пластины [13] [14] Хотя они наблюдались с помощью просвечивающего электронного микроскопа [13] [15] и сканирующего электронного микроскопа [16], процесс роста кристаллов никогда не наблюдался напрямую, пока Кох и его коллеги [17] [18] не изучили растущие кристаллы воска на листьях подснежника ( Galanthus nivalis ) и других видов с помощью атомно-силового микроскопа . Эти исследования показывают, что кристаллы растут путем расширения от своих кончиков, поднимая интересные вопросы о механизме транспорта молекул.

Методы измерения

Эпикутикулярные воски извлекаются из наземных, морских и озерных сред, что позволяет проводить экстракцию биомаркеров растворителем, а затем качественное и количественное профилирование с помощью газовой хроматографии и масс-спектрометрии (ГХ-МС) и пламенно-ионизационного детектора ГХ (ГХ-ПИД). ГХ-МС и ГХ-ПИД являются предпочтительными для идентификации и количественного определения н -алканов и н -алкановых кислот. Анализ изотопных соотношений (ГХ-ИРМС) измеряет относительное содержание углерода, водорода и других изотопов с высокой точностью. Изотопное соотношение углерода выражается между углеродом-13 и углеродом-12 как δ 13 C относительно международного стандарта. Изотопное соотношение водорода между дейтерием и протием выражается как δD относительно международного стандарта. [19]

Использовать в качестве биомаркера

ГХ-МС-след н- алканоидных четных над нечетными и н- алканов нечетных над четными (сверху и снизу соответственно), углеродов, в частности длинных цепей, производимых наземными растениями для анализа C-13. [19]

[19] Эпикутикулярный воск использовался в качестве биомаркера для наблюдения за моделями эволюции человека. Эти липиды этих растительных восков были проанализированы при извлечении из океанических и озерных кернов, проектов бурения палеоозеров, археологических и геологических обнажений , пещерных отложений и человеческих отложений . Эти данные дают представление о прошлой экологии растений и экологических стрессах , в частности, путем реконструкции ландшафтов с высоким таксономическим разрешением.

Эпикутикулярный воск δ 13 C является благоприятным биомаркером из-за своих преимуществ: он не склонен к питанию, как биомаркеры зубной эмали , и более распространен, чем палеосолевые карбонаты, которые склонны к смещению в зависимости от количества осадков. Этот маркер также может идентифицировать фотосинтетические пути C 3 и C 4 . Биосинтез этих липидов приводит к дальнейшему фракционированию , что приводит к более легкому объему δ 13 C. Исследования стабильности изотопов , характеризующие диагенетический процесс, могут идентифицировать изменение углерода и водорода посредством химической и микробной активности, но эти исследования часто дают неоднозначные результаты. Состояние сохранности растительного воска в почвах и отложениях до сих пор неизвестно из-за сложных взаимодействий в осадочных средах, включая pH , микробные сообщества , щелочность , температуру и содержание кислорода/влаги.

δ 13 C растений высшего порядка использовался на археологических объектах голоцена и плейстоцена . Разнообразные среды в современной Африке были проанализированы с помощью интерпретации эпикутикулярных восковых прокси, от лесистой травянистой растительности (где гомолог C 31 наиболее распространен) до засушливых и полузасушливых регионов южной Африки (характеризующихся обилием C 29 ). Палеоозёрные отложения Турканы с востока (формация Варголо 3,45-3,4 млн лет) и запада (формация Начукуи 1,9-1,4 млн лет) предполагают, что летняя инсоляция, контролируемая прецессией, является основным фактором плиоценовой и плейстоценовой гидрологии в бассейне. Дисперсия δD и δ 13 C в определенные даты совпадают с изменениями в таких переменных, как орбитальный эксцентриситет и орудия гоминидов . [19]

Химические соединения четырех наиболее распространенных н- алкильных соединений в эпикутикулярных восках наземных восков, где I – н-алкан, II – н-алканол, III – н-алкановая кислота и IV – эфир воска. [20]

Эпикутикулярный воск и его последующие алифатические соединения также используются в качестве биомаркеров для высших растений. Длинноцепочечные н -алкильные соединения из листьев сосудистых растений являются основными компонентами эпикутикулярных восков, которые устойчивы к деградации и, таким образом, являются эффективными биомаркерами для высших растений. Эти наземные биомаркеры также могут присутствовать в морских отложениях. Из-за отсутствия материала высших растений в водных условиях присутствие биомаркеров высших растений в этих экосистемах предполагает, что эти биомаркеры были перенесены из их первоначальной наземной среды. Изотопный состав углерода, в частности, их значение δ 13 C, отражает их метаболизм и окружающую среду, поскольку 13 C дискриминируется во время фотосинтеза. [20]

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ abc Baker, EA (1982). «Химия и морфология растительных эпикутикулярных восков». В Cutler, DJ; Alvin, KL; Price, CE (ред.). Растительная кутикула . ​​Лондон: Academic Press. стр. 139–165. ISBN 0-12-199920-3.
  2. ^ Peters, KE; Walters, CC; Moldowan, JM (2005). The Biomarker Guide . Том 1 (2-е изд.). Cambridge University Press . стр. 47. ISBN 0521781582.
  3. ^ ab Koch, Kerstin; Barthlott, Wilhelm (2006). "Растительные эпикутикулярные воски: химия, форма, самосборка и функция". Natural Product Communications . 1 (11): 1934578X0600101. doi : 10.1177/1934578X0600101123 . ISSN  1934-578X.
  4. ^ Холлоуэй, П. Дж.; Джеффри, К. Э. (2005). «Эпикутикулярные воски». Энциклопедия прикладных наук о растениях . 3 : 1190–1204.
  5. ^ ab Walter C. Blasdale (1945). «Состав твердого секрета, вырабатываемого Primula denticulata ». Журнал Американского химического общества . 67 (3): 491–493. doi :10.1021/ja01219a036.
  6. ^ Энсикат, Х. Дж. и др. (2000). «Прямой доступ к кристаллам эпикутикулярного воска растений с помощью нового метода механической изоляции». Международный журнал наук о растениях . 161 (1): 143–148. doi :10.1086/314234. PMID  10648204. S2CID  92392.
  7. ^ Jetter, R.; et al. (2000). «Листовые кутикулярные воски расположены в химически и механически различных слоях: доказательства из растения Prunus laurocerasus L.». Cell and Environment . 23 (6): 619–628. doi : 10.1046/j.1365-3040.2000.00581.x .
  8. ^ Pambou, E.; et al. (2016). «Структурные особенности восстановленных пленок пшеничного воска». JR Soc. Interface . 13 (120). 20160396. doi : 10.1098/rsif.2016.0396 . PMC 4971226. PMID  27466439 . 
  9. ^ Малрой, Томас В. (1979). «Спектральные свойства сильно сизых и не сизых листьев суккулентного розеточного растения». Oecologia . 38 (3): 349–357. Bibcode : 1979Oecol..38..349M. doi : 10.1007/BF00345193. PMID  28309493. S2CID  23753011.
  10. ^ Хенк Бентье (2016). Глоссарий завода в Кью (2-е изд.). Ричмонд, Суррей: Издательство Кью. ISBN 978-1-84246-604-9.
  11. ^ Холлоуэй, П. Дж. (1969). «Влияние поверхностного воска на смачиваемость листьев». Annals of Applied Biology . 63 (1): 145–153. doi :10.1111/j.1744-7348.1969.tb05475.x.
  12. ^ Barthlott, W.; Neinhuis, C. (1997). «Чистота священного лотоса, или избавление от загрязнения биологических поверхностей». Planta . 202 : 1–8. doi :10.1007/s004250050096. S2CID  37872229.
  13. ^ ab Hallam, ND (1967). Исследование восков листьев рода Eucalyptus L'Heritier с помощью электронного микроскопа (диссертация на степень доктора философии). Мельбурнский университет. OCLC  225630715.
  14. ^ Джеффри, CE; Бейкер, EA; Холлоуэй, PJ (1975). «Ультраструктура и перекристаллизация растительных эпикутикулярных восков». New Phytologist . 75 (3): 539–549. doi : 10.1111/j.1469-8137.1975.tb01417.x .
  15. ^ Juniper, BE; Bradley, DE (1958). «Техника углеродных реплик в изучении ультраструктуры листовых поверхностей». Journal of Ultrastructure Research . 2 : 16–27. doi :10.1016/S0022-5320(58)90045-5.
  16. ^ Джеффри, CE (2006). «Тонкая структура кутикулы растений». В Riederer, M.; Müller, C. (ред.). Биология кутикулы растений. Blackwell Publishing. стр. 11–125. Архивировано из оригинала 6 апреля 2007 г.
  17. ^ Кох, К.; и др. (2004). «Самоорганизация эпикутикулярных восков на живых поверхностях растений, полученная с помощью атомно-силовой микроскопии (АСМ)». Журнал экспериментальной ботаники . 55 (397): 711–718. doi : 10.1093/jxb/erh077 . PMID  14966216.
  18. ^ Кох, К. и др. (2005). «Структурный анализ воска пшеницы (Triticum aestivum, cv 'Naturastar' L.): от молекулярного уровня до трехмерных кристаллов». Planta . 223 (2): 258–270. doi :10.1007/s00425-005-0081-3. PMID  16133211. S2CID  20775168.
  19. ^ abcd Паталано, Роберт; Робертс, Патрик; Буавен, Николь; Петралья, Майкл Д.; Меркадер, Хулио (2021). «Биомаркеры растительного воска в исследованиях эволюции человека». Эволюционная антропология: выпуски, новости и обзоры . 30 (6): 385–398. doi : 10.1002/evan.21921. hdl : 10072/409183 . ISSN  1060-1538. PMID  34369041. S2CID  236960097 – через Wiley Online Library.
  20. ^ ab Pancost, Richard D.; Boot, Christopher S. (2004-12-01). "Палеоклиматическая полезность наземных биомаркеров в морских отложениях". Морская химия . Новые подходы в морской органической биогеохимии: дань уважения жизни и науке Джона И. Хеджеса. 92 (1): 239–261. Bibcode :2004MarCh..92..239P. doi :10.1016/j.marchem.2004.06.029. ISSN  0304-4203.

Библиография