SOS -ответ — это глобальный ответ на повреждение ДНК , при котором клеточный цикл останавливается и индуцируется репарация ДНК и мутагенез . В системе участвует белок RecA ( Rad51 у эукариот). Белок RecA, стимулируемый одноцепочечной ДНК, участвует в инактивации репрессора ( LexA ) генов SOS-ответа, тем самым индуцируя ответ. Это склонная к ошибкам система восстановления, которая вносит значительный вклад в изменения ДНК, наблюдаемые у широкого круга видов.
Ответ SOS был сформулирован Эвелин Уиткин . [3] [4] Позже, охарактеризовав фенотипы мутагенизированной кишечной палочки , она и аспирант Мирослав Радман подробно описали SOS-ответ бактерий на УФ-излучение. [3] [5] SOS-реакция на повреждение ДНК стала плодотворным открытием, поскольку это была первая скоординированная реакция на стресс, которую удалось выяснить. [6]
Во время нормального роста гены SOS отрицательно регулируются димерами белка-репрессора LexA . В нормальных условиях LexA связывается с консенсусной последовательностью длиной 20 пар оснований ( SOS-бокс ) в операторной области этих генов. Некоторые из этих SOS-генов экспрессируются на определенных уровнях даже в подавленном состоянии, в зависимости от сродства LexA к их SOS-боксу. Активация генов SOS происходит после повреждения ДНК путем накопления одноцепочечных (оцДНК) областей, образующихся в репликационных вилках, где блокируется ДНК-полимераза . RecA формирует нить вокруг этих областей оцДНК АТФ-зависимым образом и активируется. [7] Активированная форма RecA взаимодействует с репрессором LexA, облегчая самоотщепление репрессора LexA от оператора. [7] [8]
Как только пул LexA уменьшается, репрессия генов SOS снижается в зависимости от уровня сродства LexA к SOS-боксам. [7] Операторы, которые слабо связывают LexA, первыми полностью выражены. Таким образом, LexA может последовательно активировать различные механизмы восстановления. Гены, имеющие слабый SOSbox (такие как lexA , RecA , uvrA , uvrB и uvrD ), полностью индуцируются в ответ даже на слабое SOS-индуцирующее лечение. Таким образом, первым механизмом SOS-восстановления, который необходимо индуцировать, является эксцизионная репарация нуклеотидов (NER), цель которой — исправить повреждение ДНК без обеспечения полноценного SOS-ответа. Однако если NER недостаточно для устранения повреждения, концентрация LexA еще больше снижается, поэтому индуцируется экспрессия генов с более сильными блоками LexA (такими как sulA , umuD , umuC – они экспрессируются поздно). [7] SulA останавливает деление клеток [7] путем связывания с FtsZ , белком-инициатором этого процесса. Это вызывает филаментацию и индукцию UmuDC-зависимой мутагенной репарации. В результате этих свойств некоторые гены могут частично индуцироваться в ответ даже на эндогенные уровни повреждения ДНК, в то время как другие гены, по-видимому, индуцируются только тогда, когда в клетке присутствует сильное или стойкое повреждение ДНК.
Исследования показали, что система реагирования SOS может привести к мутациям, которые могут привести к устойчивости к антибиотикам. [9] Повышенная скорость мутаций во время SOS-ответа вызвана тремя ДНК-полимеразами низкой точности : Pol II , Pol IV и Pol V. [10] [9] В настоящее время исследователи нацелены на эти белки с целью создания лекарств, предотвращающих восстановление SOS. Таким образом, время, необходимое патогенным бактериям для развития устойчивости к антибиотикам, может быть увеличено, тем самым улучшая долгосрочную жизнеспособность некоторых антибиотиков. [11]
Помимо генетической устойчивости, SOS-ответ может также способствовать фенотипической устойчивости. Здесь геном сохраняется, в то время как другие негенетические факторы изменяются, чтобы бактерии могли выжить. SOS-зависимая система токсин-антитоксин tisB-istR , например, связана с зависимой от повреждения ДНК индукцией персистерных клеток . [12]
У Escherichia coli различные классы агентов, повреждающих ДНК, могут инициировать SOS-ответ, как описано выше. Воспользовавшись преимуществом слияния оперонов, помещающим lac-оперон (ответственный за выработку бета-галактозидазы, белка, расщепляющего лактозу) под контроль SOS-родственного белка, возможен простой колориметрический анализ генотоксичности . К бактериям добавляется аналог лактозы, который затем разлагается под действием бета-галактозидазы, в результате чего образуется окрашенное соединение, количественное измерение которого можно измерить с помощью спектрофотометрии . Степень развития цвета является косвенным показателем вырабатываемой бета-галактозидазы, которая сама по себе напрямую связана с количеством повреждений ДНК.
E. coli дополнительно модифицируется, чтобы иметь ряд мутаций, включая мутацию uvrA, которая делает штамм неспособным к эксцизионной репарации, увеличивая реакцию на определенные агенты, повреждающие ДНК, а также мутацию rfa, которая делает бактерии липополисахаридными. -дефицитный, позволяющий лучше диффузировать определенные химические вещества в клетку, чтобы вызвать SOS-ответ. [13] Доступны коммерческие наборы, которые измеряют первичную реакцию клеток E. coli на генетическое повреждение, и их эффективность может быть тесно связана с тестом Эймса для определенных материалов. [14]
Цианобактерии , единственные прокариоты , способные к фотосинтезу с выделением кислорода , являются основными производителями кислородной атмосферы Земли. [15] Морские цианобактерии Prochromococcus и Synechococcus , по-видимому, имеют SOS-систему, подобную E. coli, для восстановления ДНК, поскольку они кодируют гены, гомологичные ключевым SOS-генам E. coli , таким как lexA и sulA . [16]