Фиксация углерода C 4 или путь Хэтча-Слэка является одним из трех известных фотосинтетических процессов фиксации углерода в растениях. Он обязан названиями открытию 1960-х годов Маршаллом Дэвидсоном Хэтчем и Чарльзом Роджером Слэком . [1]
Фиксация C 4 является дополнением к предковой и более распространенной фиксации углерода C 3 . Основной карбоксилирующий фермент в фотосинтезе C 3 называется RuBisCO , который катализирует две различные реакции, используя в качестве субстрата либо CO 2 (карбоксилирование), либо кислород (оксигенация). Оксигенация RuBisCO приводит к образованию фосфогликолата , который токсичен и требует затрат энергии для рециркуляции посредством фотодыхания . Фотосинтез C 4 снижает фотодыхание, концентрируя CO 2 вокруг RuBisCO.
Чтобы RuBisCO мог работать в среде, где много углекислого газа и очень мало кислорода, листья C4 обычно содержат два частично изолированных отсека, называемых клетками мезофилла и клетками обкладки пучков . CO2 изначально фиксируется в клетках мезофилла в реакции, катализируемой ферментом PEP-карбоксилазой , в которой трехуглеродный фосфоенолпируват (PEP) реагирует с CO2 , образуя четырехуглеродную щавелевоуксусную кислоту (OAA). Затем OAA может быть восстановлена до малата или трансаминирована в аспартат . Эти промежуточные продукты диффундируют в клетки обкладки пучков, где они декарбоксилируются, создавая богатую CO2 среду вокруг RuBisCO и тем самым подавляя фотодыхание. Образующийся пируват (PYR) вместе с примерно половиной фосфоглицерата (PGA), произведенного RuBisCO, диффундирует обратно в мезофилл. Затем PGA химически восстанавливается и диффундирует обратно в оболочку пучка, чтобы завершить восстановительный пентозофосфатный цикл (RPP). Этот обмен метаболитами необходим для работы фотосинтеза C4 .
Дополнительные биохимические шаги требуют больше энергии в форме АТФ для регенерации PEP, но концентрирование CO 2 обеспечивает высокие скорости фотосинтеза при более высоких температурах. Более высокая концентрация CO 2 преодолевает снижение растворимости газа с температурой ( закон Генри ). Механизм концентрирования CO 2 также поддерживает высокие градиенты концентрации CO 2 через устьичные поры. Это означает, что растения C 4 имеют, как правило, более низкую устьичную проводимость , сниженные потери воды и, как правило, более высокую эффективность использования воды . [2] Растения C 4 также более эффективны в использовании азота, поскольку PEP-карбоксилаза дешевле в производстве, чем RuBisCO. [3] Однако, поскольку путь C 3 не требует дополнительной энергии для регенерации PEP, он более эффективен в условиях, когда фотодыхание ограничено, как правило, при низких температурах и в тени. [4]
Первые эксперименты, показывающие, что некоторые растения не используют фиксацию углерода C 3 , а вместо этого производят малат и аспартат на первом этапе фиксации углерода, были проведены в 1950-х и начале 1960-х годов Хьюго Питером Корчаком и Юрием Карпиловым. [5] [6] Путь C 4 был выяснен Маршаллом Дэвидсоном Хэтчем и Чарльзом Роджером Слэком в Австралии в 1966 году. [1] Хотя Хэтч и Слэк изначально называли этот путь «путем дикарбоновой кислоты C 4 », иногда его называют путем Хэтча–Слэка. [6]
Растения C 4 часто обладают характерной анатомией листьев , называемой кранц-анатомией , от немецкого слова, означающего венок . Их сосудистые пучки окружены двумя кольцами клеток; внутреннее кольцо, называемое клетками обкладки пучка , содержит богатые крахмалом хлоропласты без гран , которые отличаются от таковых в клетках мезофилла , присутствующих в качестве внешнего кольца. Поэтому хлоропласты называются диморфными. Основная функция кранц-анатомии заключается в обеспечении места, в котором CO 2 может концентрироваться вокруг RuBisCO, тем самым избегая фотодыхания . Мезофилл и клетки обкладки пучка соединены посредством многочисленных цитоплазматических рукавов, называемых плазмодесмами, проницаемость которых на уровне листьев называется проводимостью обкладки пучка. Слой суберина [7] часто откладывается на уровне средней пластинки (тангенциальный интерфейс между мезофиллом и обкладкой пучка) для того, чтобы уменьшить апопластическую диффузию CO 2 (называемую утечкой). Механизм концентрации углерода в растениях C4 отличает их изотопную сигнатуру от других фотосинтезирующих организмов.
Хотя большинство растений C 4 демонстрируют анатомию кранца, есть, однако, несколько видов, которые используют ограниченный цикл C 4 без какой-либо отчетливой ткани обкладки пучка. Suaeda aralocaspica , Bienertia cycloptera , Bienertia sinuspersici и Bienertia kavirense (все маревые ) — наземные растения, обитающие в сухих соленых впадинах пустынь Ближнего Востока . Было показано, что эти растения используют одноклеточные механизмы концентрации C 4 CO 2 , которые являются уникальными среди известных механизмов C 4 . [8] [9] [10] [11] Хотя цитология обоих родов немного отличается, основной принцип заключается в том, что заполненные жидкостью вакуоли используются для разделения клетки на две отдельные области. Ферменты карбоксилирования в цитозоле отделены от ферментов декарбоксилазы и RuBisCO в хлоропластах. Диффузионный барьер находится между хлоропластами (содержащими RuBisCO) и цитозолем. Это позволяет установить область типа обкладки пучка и область типа мезофилла в пределах одной клетки. Хотя это позволяет работать ограниченному циклу C4 , это относительно неэффективно. Происходит значительная утечка CO2 вокруг RuBisCO.
Также имеются данные об индуцируемом фотосинтезе C4 водным макрофитом Hydrilla verticillata в теплых условиях, хотя механизм, посредством которого утечка CO2 вокруг RuBisCO минимизируется, в настоящее время не определен. [12]
В растениях C 3 первым шагом в светонезависимых реакциях фотосинтеза является фиксация CO 2 ферментом RuBisCO с образованием 3-фосфоглицерата . Однако RuBisCo обладает двойной карбоксилазной и оксигеназной активностью. Оксигенация приводит к тому, что часть субстрата окисляется , а не карбоксилируется , что приводит к потере субстрата и потреблению энергии, что известно как фотодыхание . Оксигенация и карбоксилирование являются конкурентными , что означает, что скорость реакций зависит от относительной концентрации кислорода и CO 2 .
Для того чтобы снизить скорость фотодыхания , растения C4 увеличивают концентрацию CO2 вокруг RuBisCO. Для этого в листьях различают два частично изолированных отсека: мезофилл и обкладка пучков . Вместо прямой фиксации RuBisCO, CO2 первоначально включается в четырехуглеродную органическую кислоту ( малат или аспартат ) в мезофилле. Затем органические кислоты диффундируют через плазмодесмы в клетки обкладки пучков . Там они декарбоксилируются, создавая богатую CO2 среду . Хлоропласты клеток обкладки пучков преобразуют этот CO2 в углеводы по обычному пути C3 .
Существует большая изменчивость в биохимических особенностях ассимиляции C4, и она, как правило, группируется в три подтипа, различающихся по основному ферменту, используемому для декарбоксилирования ( НАДФ-малик-фермент , НАДФ-МЭ; НАД-малик-фермент , НАД-МЭ; и ФЕП-карбоксикиназа , ПЕПКК). Поскольку ПЕПКК часто рекрутируется поверх НАДФ-МЭ или НАД-МЭ, было предложено классифицировать биохимическую изменчивость по двум подтипам. Например, кукуруза и сахарный тростник используют комбинацию НАДФ-МЭ и ПЕПКК, просо использует преимущественно НАД-МЭ, а Megathyrsus maximus использует преимущественно ПЕПКК.
Первый шаг в пути NADP-ME типа C 4 — это преобразование пирувата (Pyr) в фосфоенолпируват (PEP) ферментом пируватфосфатдикиназой (PPDK). Для этой реакции требуются неорганический фосфат и АТФ плюс пируват, в результате чего образуются PEP, AMP и неорганический пирофосфат (PP i ). Следующий шаг — карбоксилирование PEP ферментом PEP-карбоксилазой (PEPC), в результате чего образуется оксалоацетат . Оба эти шага происходят в клетках мезофилла:
PEPC имеет низкий показатель K M для HCO−
3— и, следовательно, высокое сродство, и не мешается с O 2 , поэтому он будет работать даже при низких концентрациях CO 2 .
Продукт обычно преобразуется в малат (М), который диффундирует в клетки обкладки пучка, окружающие близлежащую жилку . Здесь он декарбоксилируется ферментом НАДФ -яблочной кислоты (НАДФ-МЭ) с образованием CO2 и пирувата . CO2 фиксируется RuBisCo с образованием фосфоглицерата (PGA), в то время как пируват транспортируется обратно в клетку мезофилла вместе с примерно половиной фосфоглицерата ( PGA). Этот PGA химически восстанавливается в мезофилле и диффундирует обратно в обкладку пучка, где он вступает в фазу преобразования цикла Кальвина . Для каждой молекулы CO2 , экспортируемой в обкладку пучка, челнок малата переносит два электрона и, следовательно, снижает потребность в восстановительной энергии в обкладке пучка.
Здесь OAA, произведенный PEPC, трансаминируется аспартатаминотрансферазой в аспартат (ASP), который является метаболитом, диффундирующим в оболочку пучка. В оболочке пучка ASP снова трансаминируется в OAA, а затем подвергается бесполезному восстановлению и окислительному декарбоксилированию с высвобождением CO2 . Полученный пируват трансаминируется в аланин, диффундирующий в мезофилл. Аланин в конечном итоге трансаминируется в пируват (PYR), который может быть регенерирован в PEP с помощью PPDK в хлоропластах мезофилла. Этот цикл обходит реакцию малатдегидрогеназы в мезофилле и, следовательно, не переносит восстанавливающие эквиваленты в оболочку пучка.
В этом варианте OAA, продуцируемый аспартатаминотрансферазой в оболочке пучка, декарбоксилируется до PEP с помощью PEPCK. Судьба PEP все еще обсуждается. Самое простое объяснение заключается в том, что PEP будет диффундировать обратно в мезофилл, чтобы служить субстратом для PEPC. Поскольку PEPCK использует только одну молекулу АТФ, регенерация PEP через PEPCK теоретически увеличит эффективность фотосинтеза этого подтипа, однако это никогда не измерялось. Увеличение относительной экспрессии PEPCK наблюдалось при слабом освещении, и было предложено, что он играет роль в обеспечении баланса энергетических потребностей между мезофиллом и оболочкой пучка.
В то время как в фотосинтезе C 3 каждый хлоропласт способен завершать световые и темновые реакции , хлоропласты C 4 дифференцируются на две популяции, содержащиеся в клетках мезофилла и обкладки пучка. Разделение фотосинтетической работы между двумя типами хлоропластов неизбежно приводит к обильному обмену промежуточными продуктами между ними. Потоки велики и могут в десять раз превышать скорость валовой ассимиляции. [13] Тип обмениваемого метаболита и общая скорость будут зависеть от подтипа. Чтобы уменьшить ингибирование продукта фотосинтетических ферментов (например, PECP), градиенты концентрации должны быть как можно ниже. Это требует увеличения проводимости метаболитов между мезофиллом и обкладкой пучка, но это также увеличит ретродиффузию CO 2 из обкладки пучка, что приведет к неотъемлемому и неизбежному компромиссу в оптимизации механизма концентрации CO 2 .
Для удовлетворения потребностей в НАДФН и АТФ в мезофилле и оболочке пучков необходимо собирать свет и распределять его между двумя различными цепями переноса электронов. АТФ может вырабатываться в оболочке пучков в основном посредством циклического потока электронов вокруг фотосистемы I или в М в основном посредством линейного потока электронов в зависимости от света, доступного в оболочке пучков или в мезофилле. Относительная потребность в АТФ и НАДФН в каждом типе клеток будет зависеть от фотосинтетического подтипа. [13] Распределение энергии возбуждения между двумя типами клеток будет влиять на доступность АТФ и НАДФН в мезофилле и оболочке пучков. Например, зеленый свет не сильно адсорбируется клетками мезофилла и может преимущественно возбуждать клетки оболочки пучков, или наоборот для синего света. [14] Поскольку оболочки пучков окружены мезофиллом, сбор света в мезофилле уменьшит количество света, доступного для достижения клеток BS. Кроме того, размер оболочки пучков ограничивает количество света, которое может быть собрано. [15]
Возможны различные формулировки эффективности в зависимости от того, какие выходы и входы рассматриваются. Например, средняя квантовая эффективность представляет собой отношение между валовой ассимиляцией и интенсивностью поглощенного или падающего света. В литературе сообщается о большой изменчивости измеренной квантовой эффективности между растениями, выращенными в разных условиях и отнесенными к разным подтипам, но основы все еще неясны. Одним из компонентов квантовой эффективности является эффективность темновых реакций, биохимическая эффективность, которая обычно выражается в обратных терминах как стоимость АТФ валовой ассимиляции (АТФ/ГА).
В фотосинтезе C 3 АТФ/ГА зависит в основном от концентрации CO 2 и O 2 в карбоксилирующих участках RuBisCO. Когда концентрация CO 2 высока, а концентрация O 2 низкая, фотодыхание подавляется, а ассимиляция C 3 происходит быстро и эффективно, при этом АТФ/ГА приближается к теоретическому минимуму 3.
При фотосинтезе C4 концентрация CO2 в центрах карбоксилирования RuBisCO в основном является результатом работы механизмов концентрации CO2 , что требует дополнительных затрат около 2 АТФ/ГА, но делает эффективность относительно нечувствительной к внешней концентрации CO2 в широком диапазоне условий.
Биохимическая эффективность зависит в основном от скорости доставки CO 2 в оболочку пучка и, как правило, снижается при слабом освещении, когда скорость карбоксилирования PEP снижается, снижая соотношение концентрации CO 2 /O 2 на участках карбоксилирования RuBisCO. Ключевым параметром, определяющим, насколько снизится эффективность при слабом освещении, является проводимость оболочки пучка. Растения с более высокой проводимостью оболочки пучка будут иметь возможность обмениваться метаболитами между мезофиллом и оболочкой пучка и будут способны к высоким скоростям ассимиляции при сильном освещении. Однако у них также будут высокие скорости ретродиффузии CO 2 из оболочки пучка (называемой утечкой), что увеличит фотодыхание и снизит биохимическую эффективность при слабом освещении. Это представляет собой неотъемлемый и неизбежный компромисс в работе фотосинтеза C 4 . Растения C 4 обладают выдающейся способностью настраивать проводимость оболочки пучка. Интересно, что проводимость оболочки пучка снижается у растений, выращенных при слабом освещении [16] , а также у растений, выращенных при ярком освещении, впоследствии переведенных в условия слабого освещения, как это происходит в пологе сельскохозяйственных культур, где старые листья затеняются новыми побегами. [17]
Растения C 4 имеют конкурентное преимущество перед растениями, обладающими более распространенным путем фиксации углерода C 3 в условиях засухи , высоких температур и ограничения азота или CO 2. При выращивании в той же среде при 30 °C травы C 3 теряют приблизительно 833 молекулы воды на молекулу CO 2 , которая фиксируется, тогда как травы C 4 теряют только 277. Эта повышенная эффективность использования воды травами C 4 означает, что влажность почвы сохраняется, что позволяет им расти дольше в засушливых условиях. [18]
Фиксация углерода C4 развивалась по крайней мере в 62 независимых случаях в 19 различных семействах растений, что делает ее ярким примером конвергентной эволюции . [19] [20] Эта конвергенция могла быть обусловлена тем фактом, что существует множество потенциальных эволюционных путей к фенотипу C4 , многие из которых включают начальные эволюционные шаги, не связанные напрямую с фотосинтезом. [21] Растения C4 возникли около 35 миллионов лет назад [20] во время олигоцена (точное время определить трудно) и стали экологически значимыми в раннем миоцене около 21 миллиона лет назад . [22] Метаболизм C4 у злаков возник, когда их среда обитания переместилась из тенистого подлеска леса в более открытую среду, [23] где яркий солнечный свет давал ему преимущество перед путем C3 . [ 24] Засуха не была необходима для его инновации; Скорее, возросшая экономия в использовании воды была побочным продуктом этого пути и позволила растениям C4 более легко колонизировать засушливые среды. [24]
Сегодня растения C 4 составляют около 5% растительной биомассы Земли и 3% известных видов растений. [18] [25] Несмотря на этот дефицит, на их долю приходится около 23% наземной фиксации углерода. [26] [27] Увеличение доли растений C 4 на Земле может способствовать биосеквестрации CO 2 и представлять собой важную стратегию предотвращения изменения климата . Современные растения C 4 сосредоточены в тропиках и субтропиках (ниже широты 45 градусов), где высокая температура воздуха увеличивает скорость фотодыхания у растений C 3 .
Около 8100 видов растений используют фиксацию углерода C4 , что составляет около 3% всех наземных видов растений. [27] [28] Все эти 8100 видов являются покрытосеменными . Фиксация углерода C4 более распространена у однодольных по сравнению с двудольными , при этом 40% однодольных используют путь C4 [ необходимо разъяснение ] по сравнению с всего лишь 4,5% двудольных. Несмотря на это, только три семейства однодольных используют фиксацию углерода C4 по сравнению с 15 семействами двудольных. Из клад однодольных, содержащих растения C4 , виды злаков ( Poaceae ) больше всего используют путь фотосинтеза C4 . 46% злаков являются C4 и вместе составляют 61% видов C4 . C 4 возникал независимо в семействе злаковых около двадцати или более раз, в различных подсемействах, трибах и родах, [29] включая трибу Andropogoneae , которая содержит продовольственные культуры кукурузу , сахарный тростник и сорго . Различные виды проса также являются C 4 . [30] [31] Из клад двудольных, содержащих виды C 4 , порядок Caryophyllales содержит больше всего видов. Из семейств в Caryophyllales Chenopodiaceae больше всего используют фиксацию углерода C 4 , 550 из 1400 видов используют ее. Около 250 из 1000 видов родственных Amaranthaceae также используют C 4 . [18] [32]
Представители семейства осоковых (Cyperaceae ) и представители многочисленных семейств эвдикотовых (включая Asteraceae (семейство маргариток), Brassicaceae (семейство капустных) и Euphorbiaceae (семейство молочайных) также используют C4 .
Ни одно крупное дерево (выше 15 м в высоту) не использует C4 , [ 33] однако существует ряд небольших деревьев и кустарников ниже 10 м, которые используют его: шесть видов Euphorbiaceae, все произрастающие на Гавайях, и два вида Amaranthaceae, произрастающие в пустынях Ближнего Востока и Азии. [34]
Учитывая преимущества C 4 , группа ученых из учреждений по всему миру работает над проектом C 4 Rice Project по производству штамма риса , естественно растения C 3 , который использует путь C 4 , изучая растения C 4 кукурузу и Brachypodium . [35] Поскольку рис является важнейшей пищей человека в мире — это основной продукт питания для более чем половины планеты — наличие риса, который более эффективно преобразует солнечный свет в зерно, может иметь значительные глобальные преимущества для улучшения продовольственной безопасности . Команда утверждает, что рис C 4 может производить до 50% больше зерна — и делать это с меньшим количеством воды и питательных веществ. [36] [37] [38]
Исследователи уже определили гены, необходимые для фотосинтеза C4 в рисе, и теперь рассматривают возможность разработки прототипа растения риса C4. В 2012 году правительство Соединенного Королевства совместно с Фондом Билла и Мелинды Гейтс выделило 14 миллионов долларов США на три года на проект C4 Rice в Международном научно-исследовательском институте риса . [39] В 2019 году Фонд Билла и Мелинды Гейтс выделил еще 15 миллионов долларов США на проект C4 Rice, возглавляемый Оксфордским университетом. Целью 5-летнего проекта является создание и запуск экспериментальных полевых участков на Тайване к 2024 году. [40]
Фотосинтез C 2 , промежуточный этап между C 3 и Kranz C 4 , может быть предпочтительнее C 4 для конверсии риса. Более простая система менее оптимизирована для условий высокой освещенности и высоких температур, чем C 4 , но имеет преимущество в том, что требует меньше этапов генной инженерии и работает лучше, чем C 3 при любых температурах и уровнях освещенности. [41] В 2021 году правительство Великобритании выделило 1,2 миллиона фунтов стерлингов на изучение инженерии C 2 . [42]
{{cite journal}}
: CS1 maint: несколько имен: список авторов ( ссылка )