Arabidopsis thaliana , кресс-салат Таля , кресс-салат мышиного уха или арабидопсис — небольшое растение из семейства крестоцветных ( Brassicaceae ), произрастающее в Евразии и Африке. [2] [3] [4] [5] [6] [7] Обычно его можно встретить вдоль обочин дорог и на нарушенных землях. Обычно его считают сорняком.
Зимний однолетник с относительно коротким жизненным циклом, A. thaliana является популярным модельным организмом в биологии растений и генетике. Для сложного многоклеточного эукариота , A. thaliana имеет относительно небольшой геном около 135 мегапар оснований . [8] Это было первое растение, геном которого был секвенирован, и это важный инструмент для понимания молекулярной биологии многих признаков растений, включая развитие цветков и светочувствительность . [9]
Arabidopsis thaliana — однолетнее (редко двухлетнее ) растение, обычно достигающее 20–25 см в высоту. [6] Листья образуют розетку у основания растения, а также несколько листьев на цветоносном стебле . Базальные листья имеют зеленый или слегка пурпурный цвет, 1,5–5 см в длину и 2–10 мм в ширину, с цельным или грубо зазубренным краем; стеблевые листья меньше и не имеют черешка, обычно с цельным краем. Листья покрыты небольшими одноклеточными волосками, называемыми трихомами . Цветки имеют диаметр 3 мм, расположены в щитке ; их структура такая же, как у типичных Brassicaceae . Плод — стручковая фасоль длиной 5–20 мм, содержащая 20–30 семян . [10] [11] [12] [13] Корни простые по строению, с одним основным корнем, который растет вертикально вниз, позже производя более мелкие боковые корни. Эти корни взаимодействуют с ризосферными бактериями, такими как Bacillus megaterium . [14]
A. thaliana может завершить весь свой жизненный цикл за шесть недель. Центральный стебель, который производит цветы, вырастает примерно через 3 недели, и цветы естественным образом самоопыляются. В лаборатории A. thaliana можно выращивать в чашках Петри, горшках или гидропонике, под флуоресцентными лампами или в теплице. [15]
Растение было впервые описано в 1577 году в горах Гарц Иоганнесом Талем (1542–1583), врачом из Нордхаузена , Тюрингия , Германия, который назвал его Pilosella siliquosa . В 1753 году Карл Линней переименовал растение в Arabis thaliana в честь Таля. В 1842 году немецкий ботаник Густав Хейнхольд выделил новый род Arabidopsis и поместил растение в этот род. Родовое название Arabidopsis происходит от греческого , что означает «похожий на Arabis » (род, в который Линней изначально поместил его).
Тысячи естественных инбридинговых образцов A. thaliana были собраны по всему его естественному и интродуцированному ареалу. [16] Эти образцы демонстрируют значительную генетическую и фенотипическую изменчивость, которая может быть использована для изучения адаптации этого вида к различным средам. [16]
A. thaliana произрастает в Европе, Азии и Африке, а его географическое распространение довольно непрерывно от Средиземноморья до Скандинавии и от Испании до Греции . [17] Также, по-видимому, он произрастает в тропических альпийских экосистемах Африки и, возможно, Южной Африки. [18] [19] Он был завезен и натурализовался по всему миру, [20] включая Северную Америку около 17 века. [21]
A. thaliana легко растет и часто становится пионером на каменистых, песчаных и известковых почвах. Обычно его считают сорняком из-за его широкого распространения на сельскохозяйственных полях, обочинах дорог, железнодорожных путях, пустырях и других нарушенных местообитаниях, [20] [22] но из-за его ограниченной конкурентоспособности и небольшого размера он не классифицируется как вредный сорняк. [23] Как и большинство видов Brassicaceae, A. thaliana съедобен для людей в салате или приготовленном виде, но он не пользуется широким распространением как весенний овощ. [24]
Ботаники и биологи начали изучать A. thaliana в начале 1900-х годов, а первое систематическое описание мутантов было сделано около 1945 года. [25] В настоящее время A. thaliana широко используется для изучения наук о растениях , включая генетику , эволюцию , популяционную генетику и развитие растений. [26] [27] [28] Хотя растение A. thaliana не имеет непосредственного значения для сельского хозяйства, модельный организм A. thaliana произвел революцию в нашем понимании генетической, клеточной и молекулярной биологии цветковых растений.
Первый мутант в A. thaliana был задокументирован в 1873 году Александром Брауном , описав фенотип двойного цветка (мутировавший ген, вероятно, был Agamous , клонирован и охарактеризован в 1990 году). [29] Фридрих Лайбах (который опубликовал число хромосом в 1907 году) не предлагал A. thaliana в качестве модельного организма, однако, до 1943 года. [30] Его студентка Эрна Рейнхольц опубликовала свою диссертацию по A. thaliana в 1945 году, описав первую коллекцию мутантов A. thaliana , которую они создали с помощью рентгеновского мутагенеза . Лайбах продолжил свой важный вклад в исследование A. thaliana , собрав большое количество образцов (часто сомнительно называемых « экотипами »). С помощью Альберта Кранца они были организованы в большую коллекцию из 750 естественных образцов A. thaliana со всего мира.
В 1950-х и 1960-х годах Джон Лэнгридж и Джордж Редей сыграли важную роль в утверждении A. thaliana как полезного организма для биологических лабораторных экспериментов. Редей написал несколько научных обзоров, которые сыграли важную роль в представлении модели научному сообществу. Начало исследовательского сообщества A. thaliana относится к информационному бюллетеню Arabidopsis Information Service [31] , созданному в 1964 году. Первая Международная конференция по Arabidopsis состоялась в 1965 году в Геттингене , Германия.
В 1980-х годах A. thaliana начала широко использоваться в лабораториях по исследованию растений по всему миру. Это был один из нескольких кандидатов, среди которых были кукуруза, петуния и табак. [30] Последние два были привлекательны, так как их можно было легко трансформировать с помощью современных технологий, в то время как кукуруза была хорошо зарекомендовавшей себя генетической моделью для биологии растений. Прорывным годом для A. thaliana как модельного растения стал 1986 год, когда были описаны трансформация, опосредованная T-ДНК , и первый клонированный ген A. thaliana . [32] [33]
Из-за небольшого размера генома и того, что он диплоиден , Arabidopsis thaliana полезен для генетического картирования и секвенирования — имея около 157 мегапар оснований [36] и пять хромосом , A. thaliana имеет один из самых маленьких геномов среди растений. [8] Долгое время считалось, что у него самый маленький геном среди всех цветковых растений, [37] но теперь это звание считается принадлежащим растениям рода Genlisea , порядка Lamiales , с Genlisea tuberosa , плотоядным растением, показывающим размер генома приблизительно 61 Мбн. [38] Это был первый геном растения, который был секвенирован, завершенный в 2000 году Инициативой по геному Arabidopsis . [39] Самая последняя версия генома A. thaliana поддерживается Информационным ресурсом Arabidopsis. [40]
Геном кодирует ~27 600 генов, кодирующих белки , и около 6500 некодирующих генов. [41] Однако база данных Uniprot перечисляет 39 342 белка в своем референтном протеоме Arabidopsis . [42] Среди 27 600 генов, кодирующих белки, 25 402 (91,8%) теперь аннотированы «осмысленными» названиями продуктов, [43] хотя большая часть этих белков, вероятно, плохо изучена и известна только в общих чертах (например, как «ДНК-связывающий белок без известной специфичности»). Uniprot перечисляет более 3000 белков как «неохарактеризованные» как часть референтного протеома.
Пластом A. thaliana представляет собой молекулу ДНК длиной 154 478 пар оснований [34] , размер, типичный для большинства цветковых растений (см. список секвенированных пластомов ). Он включает 136 генов, кодирующих малые субъединичные рибосомальные белки ( rps , желтый: см. рисунок), большие субъединичные рибосомальные белки ( rpl , оранжевый), гипотетические белки открытой рамки считывания хлоропласта ( ycf , лимонный), белки, участвующие в реакциях фотосинтеза (зеленый) или в других функциях (красный), рибосомальные РНК ( rrn , синий) и транспортные РНК ( trn , черный). [35]
Митохондриальный геном A. thaliana имеет длину 367 808 пар оснований и содержит 57 генов. [44] В митохондриальном геноме Arabidopsis имеется множество повторяющихся участков . Самые большие повторы регулярно рекомбинируют и изомеризуют геном. [45] Как и большинство митохондриальных геномов растений, митохондриальный геном Arabidopsis существует в виде сложной структуры перекрывающихся разветвленных и линейных молекул in vivo . [46]
Генетическая трансформация A. thaliana является рутинной процедурой, использующей Agrobacterium tumefaciens для переноса ДНК в геном растения. Текущий протокол, называемый «цветочным погружением», включает простое погружение цветов в раствор, содержащий Agrobacterium, несущий интересующую плазмиду, и детергент. [47] [48] Этот метод позволяет избежать необходимости в культуре тканей или регенерации растений.
Коллекции нокаутов генов A. thaliana являются уникальным ресурсом для биологии растений, что стало возможным благодаря доступности высокопроизводительной трансформации и финансированию ресурсов геномики. Место вставки T-ДНК было определено для более чем 300 000 независимых трансгенных линий, при этом информация и семена доступны через онлайн-базы данных T-ДНК. [49] Благодаря этим коллекциям инсерционные мутанты доступны для большинства генов в A. thaliana .
Охарактеризованные образцы и мутантные линии A. thaliana служат экспериментальным материалом в лабораторных исследованиях. Наиболее часто используемые фоновые линии - L er (Landsberg erecta ) и Col или Columbia. [50] Другие фоновые линии, реже упоминаемые в научной литературе, - Ws или Wassilewskija, C24, Cvi или Cape Verde Islands, Nossen и т. д. (см. напр. [51] ). Были получены и охарактеризованы наборы близкородственных образцов, названных Col-0, Col-1 и т. д.; в целом мутантные линии доступны через фондовые центры, из которых наиболее известны Nottingham Arabidopsis Stock Center-NASC [50] и Arabidopsis Biological Resource Center-ABRC в Огайо, США. [52] Образец Col-0 был выбран Редеем из (необлученной) популяции семян, обозначенных «Landsberg», которые он получил от Laibach. [53] Columbia (названный в честь местонахождения бывшего учреждения Редея, Университета Миссури - Колумбия ) был эталонным образцом, секвенированным в рамках Инициативы по геному арабидопсиса . Линия Later (Landsberg erecta) была выбрана Редеем (из-за ее низкого роста) из популяции Ландсберга, которую он мутагенизировал с помощью рентгеновских лучей. Поскольку коллекция мутантов L er получена из этой исходной линии, L er -0 не соответствует образцам Ландсберга, которые обозначались как La-0, La-1 и т. д.
Формирование трихом инициируется белком GLABROUS1. Нокауты соответствующего гена приводят к голым растениям. Этот фенотип уже использовался в экспериментах по редактированию генов и может представлять интерес в качестве визуального маркера для исследований растений с целью улучшения методов редактирования генов, таких как CRISPR/Cas9. [54] [55]
В 2005 году ученые из Университета Пердью предположили, что A. thaliana обладает альтернативой ранее известным механизмам восстановления ДНК , что приводит к необычной схеме наследования , однако позднее было высказано предположение, что наблюдаемое явление (возврат мутантных копий гена HOTHEAD к состоянию дикого типа) является артефактом, поскольку мутанты демонстрируют повышенный ауткроссинг из-за слияния органов. [56] [57] [58]
Небольшой размер растения и быстрый жизненный цикл также выгодны для исследований. Специализируясь как весенний эфемер , он использовался для обнаружения нескольких лабораторных штаммов, которым требуется около 6 недель от прорастания до созревания семян. Небольшой размер растения удобен для выращивания в небольшом пространстве, и оно производит много семян. Кроме того, самоопыляющаяся природа этого растения помогает в генетических экспериментах. Кроме того, поскольку отдельное растение может производить несколько тысяч семян, каждый из вышеперечисленных критериев приводит к тому, что A. thaliana ценится как генетический модельный организм.
Arabidopsis часто является моделью для изучения SNAREs в растениях . Это показало, что SNAREs активно участвуют в транспортировке везикул . Zheng et al. 1999 обнаружили Arabidopsis SNARE, называемыйAtVTI1a, вероятно, необходим для перемещения Гольджи - вакуоль . Это все еще широкое открытое поле, и роль растительных SNARE в перемещении остается недостаточно изученной. [59]
ДНК растений уязвима для ультрафиолетового света, и механизмы репарации ДНК развились, чтобы избежать или восстановить повреждения генома, вызванные УФ-излучением. Кайзер и др. [ 60] показали, что в A. thaliana циклобутановые пиримидиновые димеры (CPD), индуцированные УФ-излучением, могут быть восстановлены путем экспрессии фотолиазы CPD .
12 мая 2022 года НАСА объявило, что образцы Arabidopsis thaliana были успешно проращены и выращены в образцах лунного реголита . Хотя растения успешно проросли и превратились в сеянцы, они были не такими крепкими, как образцы, выращенные в вулканическом пепле в качестве контрольной группы, хотя эксперименты также обнаружили некоторые различия в растениях, выращенных в реголите, в зависимости от места взятия образцов, поскольку A. thaliana, выращенные в реголите, собранном во время Аполлона-12 и Аполлона-17, были более крепкими, чем выращенные в образцах, взятых во время Аполлона-11 . [61]
A. thaliana широко изучалась как модель развития цветка. Развивающийся цветок имеет четыре основных органа — чашелистики , лепестки , тычинки и плодолистики (которые затем образуют пестики ). Эти органы расположены в ряд завитков, четыре чашелистика на внешнем завитке, за которыми следуют четыре лепестка внутри него, шесть тычинок и центральная область плодолистика. Гомеозисные мутации у A. thaliana приводят к изменению одного органа на другой — например, в случае агамной мутации тычинки становятся лепестками, а плодолистики заменяются новым цветком, что приводит к рекурсивно повторяющемуся шаблону чашелистик-лепесток-лепесток.
Наблюдения за гомеотическими мутациями привели к формулировке модели развития цветка ABC Э. Коэном и Э. Мейеровицем . [62] Согласно этой модели, гены идентичности цветочных органов делятся на три класса — гены класса A (которые влияют на чашелистики и лепестки), гены класса B (которые влияют на лепестки и тычинки) и гены класса C (которые влияют на тычинки и плодолистики). Эти гены кодируют факторы транскрипции , которые объединяются, чтобы вызвать спецификацию тканей в их соответствующих областях во время развития. Хотя эта модель была разработана путем изучения цветов A. thaliana , она в целом применима и к другим цветковым растениям.
Исследования A. thaliana дали существенные знания в отношении генетики морфогенеза листьев, особенно у двудольных растений. [63] [64] Большая часть понимания пришла из анализа мутантов в развитии листьев, некоторые из которых были идентифицированы в 1960-х годах, но не были проанализированы с помощью генетических и молекулярных методов до середины 1990-х годов. Листья A. thaliana хорошо подходят для исследований развития листьев, поскольку они относительно просты и стабильны.
Используя A. thaliana , генетика, лежащая в основе развития формы листа, стала более ясной и была разбита на три этапа: инициация листового примордия, установление дорсивентральности и развитие краевой меристемы . Листовые примордии инициируются подавлением генов и белков семейства класса I KNOX (таких как SHOOT APICAL MERISTEMLESS ). Эти белки класса I KNOX напрямую подавляют биосинтез гиббереллина в листовом примордии. Было обнаружено, что многие генетические факторы участвуют в подавлении этих генов класса I KNOX в листовых примордиях (таких как ASYMMETRIC LEAVES1, BLADE-ON-PETIOLE1 , SAWTOOTH1 и т. д.). Таким образом, при этом подавлении уровни гиббереллина увеличиваются, и листовой примордиум инициирует рост.
Установление дорсивентральности листа важно, поскольку дорсальная (адаксиальная) поверхность листа отличается от вентральной (абаксиальной) поверхности. [65]
A. thaliana хорошо подходит для анализа с помощью световой микроскопии . Молодые саженцы в целом и их корни в частности относительно полупрозрачны. Это, вместе с их небольшим размером, облегчает визуализацию живых клеток с использованием как флуоресцентной , так и конфокальной лазерной сканирующей микроскопии . [66] Путем влажного монтажа саженцев в воде или в культуральной среде растения можно визуализировать неинвазивно, что устраняет необходимость в фиксации и сечении и позволяет проводить покадровые измерения. [67] Конструкции флуоресцентных белков могут быть введены посредством трансформации . Стадию развития каждой клетки можно вывести из ее местоположения в растении или с помощью маркеров флуоресцентных белков , что позволяет проводить подробный анализ развития .
Фоторецепторы фитохромы A, B, C, D и E опосредуют фототропную реакцию на красный свет . Понимание функции этих рецепторов помогло биологам растений понять каскады сигналов, которые регулируют фотопериодизм , прорастание , деэтиоляцию и избегание тени у растений. Гены FCA , [68] fy , [68] fpa , [68] LUMINIDEPENDENS ( ld ), [68] fly , [68] fve [68] и FLOWERING LOCUS C ( FLC ) [69] [70] участвуют в запуске фотопериода цветения и яровизации . В частности, Ли и др. 1994 обнаружили, что ld производит гомеодомен , а Блазкес и др. 2001 — что fve производит повтор WD40 . [68]
Белок UVR8 обнаруживает УФ-В- излучение и опосредует реакцию на эту повреждающую ДНК длину волны.
A. thaliana широко использовался в изучении генетической основы фототропизма , выравнивания хлоропластов , а также апертуры устьиц и других процессов, на которые влияет синий свет. [71] Эти признаки реагируют на синий свет, который воспринимается фототропиновыми световыми рецепторами. Arabidopsis также сыграл важную роль в понимании функций другого рецептора синего света, криптохрома , который особенно важен для увлечения света для управления циркадными ритмами растений . [72] Когда наступление темноты происходит необычно рано, A. thaliana снижает свой метаболизм крахмала на величину, которая фактически требует деления . [73]
Световые реакции были обнаружены даже в корнях, которые ранее считались в значительной степени нечувствительными к свету. В то время как гравитропная реакция корневых органов A. thaliana является их преобладающей тропической реакцией, образцы, обработанные мутагенами и отобранные по отсутствию гравитропного действия, показали отрицательную фототропную реакцию на синий или белый свет и положительную реакцию на красный свет, что указывает на то, что корни также демонстрируют положительный фототропизм. [74]
В 2000 году доктор Джанет Браам из Университета Райса генетически модифицировала A. thaliana , чтобы она светилась в темноте при прикосновении. Эффект был виден сверхчувствительным камерам. [75] [ нужен лучший источник ]
Многочисленные проекты, включая проект Glowing Plant , были направлены на использование A. thaliana для повышения интенсивности свечения растений до коммерчески рентабельных уровней.
В 1990 году Джанет Браам и Рональд В. Дэвис определили, что A. thaliana демонстрирует тигмоморфогенез в ответ на ветер, дождь и прикосновение. [76] Было обнаружено, что четыре или более генов, вызванных прикосновением, у A. thaliana регулируются такими стимулами. [76] В 2002 году Массимо Пильюччи обнаружил, что A. thaliana развивает различные модели ветвления в ответ на постоянное воздействие ветра, что является проявлением фенотипической пластичности . [77]
2 января 2019 года китайский посадочный модуль Chang'e-4 доставил A. thaliana на Луну. [78] Небольшая микрокосмическая «банка» в посадочном модуле содержала A. thaliana , семена картофеля и яйца шелкопряда . Поскольку растения будут поддерживать шелкопрядов кислородом, а шелкопряды, в свою очередь, будут обеспечивать растения необходимым углекислым газом и питательными веществами через свои отходы, [79] исследователи оценят, успешно ли растения выполняют фотосинтез , растут и цветут в лунной среде. [78]
Талианин — это тритерпен корня Arabidopsis . [80] Поттер и др. , 2018 обнаружили, что синтез индуцируется комбинацией по крайней мере двух фактов: клеточно-специфических факторов транскрипции (TF) и доступности хроматина . [ 80]
Понимание того, как растения достигают устойчивости, важно для защиты мирового производства продовольствия и сельскохозяйственной отрасли. Было разработано множество модельных систем для лучшего понимания взаимодействия между растениями и бактериальными , грибковыми , оомицетными , вирусными и нематодными патогенами. A. thaliana стал мощным инструментом для изучения субдисциплины фитопатологии , то есть взаимодействия между растениями и болезнетворными патогенами .
Использование A. thaliana привело ко многим прорывам в развитии знаний о том, как растения проявляют устойчивость к болезням растений . Причина, по которой большинство растений устойчивы к большинству патогенов, заключается в нехозяинной устойчивости — не все патогены заражают все растения. Примером, когда A. thaliana использовался для определения генов, ответственных за нехозяинную устойчивость, является Blumeria graminis , возбудитель мучнистой росы злаков. Мутанты A. thaliana были разработаны с использованием мутагена этилметансульфоната и подвергнуты скринингу для выявления мутантов с повышенной зараженностью B. graminis . [82] [83] [84] Мутанты с более высокими показателями заражения называются мутантами PEN из-за способности B. graminis проникать в A. thaliana , чтобы начать процесс заболевания. Гены PEN были позже картированы для выявления генов, ответственных за нехозяинную устойчивость к B. graminis .
В целом, когда растение подвергается воздействию патогена или непатогенного микроба, возникает первоначальная реакция, известная как иммунитет, вызванный PAMP (PTI), поскольку растение обнаруживает консервативные мотивы, известные как молекулярные паттерны, ассоциированные с патогенами (PAMP). [85] Эти PAMP обнаруживаются специализированными рецепторами в хозяине, известными как рецепторы распознавания образов (PRR) на поверхности растительной клетки.
Наиболее охарактеризованным PRR в A. thaliana является FLS2 (Flagellin-Sensing2), который распознает бактериальный флагеллин , [86] [87] специализированную органеллу, используемую микроорганизмами для обеспечения подвижности, а также лиганд flg22, который включает 22 аминокислоты, распознаваемые FLS2. Открытие FLS2 было облегчено идентификацией экотипа A. thaliana , Ws-0, который не смог обнаружить flg22, что привело к идентификации гена, кодирующего FLS2. FLS2 демонстрирует поразительное сходство с рисом XA21, первым PRR, выделенным в 1995 году . [ необходима цитата ] Как флагеллин, так и УФ-С действуют схожим образом, увеличивая гомологичную рекомбинацию в A. thaliana , как продемонстрировали Молинье и др. в 2006 году. Помимо этого соматического эффекта, они обнаружили, что это распространяется на последующие поколения растения . [88]
Второй PRR, рецептор EF-Tu (EFR), идентифицированный в A. thaliana , распознает бактериальный белок EF-Tu , прокариотический фактор удлинения, используемый в синтезе белка , а также используемый в лаборатории лиганд elf18. [89] Используя трансформацию, опосредованную Agrobacterium , метод, который использует преимущества естественного процесса, посредством которого Agrobacterium переносит гены в растения-хозяева, ген EFR был трансформирован в Nicotiana benthamiana , растение табака, которое не распознает EF-Tu, тем самым позволяя распознавать бактериальный EF-Tu [90], тем самым подтверждая EFR как рецептор EF-Tu.
FLS2 и EFR используют схожие пути передачи сигнала для инициирования PTI. A. thaliana сыграла важную роль в изучении этих путей для лучшего понимания регуляции иммунных реакций, наиболее заметным из которых является каскад митоген-активируемой протеинкиназы (MAP-киназы). Нижестоящие реакции PTI включают отложение каллозы , окислительный взрыв и транскрипцию генов, связанных с защитой. [91]
PTI способен бороться с патогенами неспецифическим образом. Более сильный и специфический ответ у растений — это иммунитет, запускаемый эффекторами (ETI), который зависит от распознавания эффекторов патогенов, белков, секретируемых патогеном, которые изменяют функции у хозяина, генами устойчивости растений (R-генами) , часто описываемыми как связь ген-ген . Это распознавание может происходить напрямую или косвенно через белок-защитник в гипотезе, известной как гипотеза стража . Первым R-геном, клонированным в A. thaliana, был RPS2 (устойчивость к Pseudomonas syringae 2), который отвечает за распознавание эффектора avrRpt2. [92] Бактериальный эффектор avrRpt2 доставляется в A. thaliana через систему секреции типа III штамма томата P. syringae pv. DC3000 . Распознавание avrRpt2 RPS2 происходит через белок-защитник RIN4, который расщепляется. [ необходимо разъяснение ] Распознавание эффектора патогена приводит к резкому иммунному ответу, известному как реакция гиперчувствительности , при которой инфицированные растительные клетки подвергаются гибели, чтобы предотвратить распространение патогена. [93]
Системная приобретенная устойчивость (SAR) — еще один пример устойчивости, которая лучше изучена у растений благодаря исследованиям, проведенным на A. thaliana . Бензотиадиазол (BTH), аналог салициловой кислоты (SA), исторически использовался в качестве противогрибкового соединения в сельскохозяйственных культурах. Было показано, что BTH, как и SA, вызывает SAR у растений.Инициирование пути SAR было впервые продемонстрировано в A. thaliana , в котором повышенные уровни SA распознаются неэкспрессирующими генами PR 1 ( NPR1 ) [94] из-за окислительно-восстановительных изменений в цитозоле, что приводит к восстановлению NPR1. NPR1 , который обычно существует в мультиплексном (олигомерном) состоянии, становится мономерным (единичной единицей) при восстановлении. [ 95] Когда NPR1 становится мономерным, он транслоцируется в ядро, где взаимодействует со многими факторами транскрипции TGA и способен индуцировать гены, связанные с патогенами, такие как PR1 . [96] Другим примером SAR может быть исследование, проведенное с трансгенными растениями табака, которые экспрессируют бактериальную салицилатгидроксилазу, ген nahG, требующую накопления SA для своей экспрессии [97]
Хотя внутриклеточный транспорт не является напрямую иммунологическим, он влияет на восприимчивость , включая (или обманываясь, включая) патогенные частицы. Например, ген белка 2b/drp2b, связанный с Dynamin, помогает перемещать инвагинированный материал в клетки, а некоторые мутанты еще больше увеличивают вирулентность PstDC3000 . [98]
Растения подвергаются воздействию множества патогенов на протяжении всей своей жизни. В ответ на присутствие патогенов растения выработали рецепторы на поверхности своих клеток для обнаружения и реагирования на патогены. [99] Arabidopsis thaliana — это модельный организм, используемый для определения специфических защитных механизмов устойчивости растений к патогенам. [100] Эти растения имеют специальные рецепторы на поверхности своих клеток, которые позволяют обнаруживать патогены и инициировать механизмы для подавления роста патогенов. [100] Они содержат два рецептора, FLS2 (бактериальный рецептор флагеллина) и EF-Tu (бактериальный белок EF-Tu), которые используют пути передачи сигнала для инициирования пути ответа на заболевание. [100] Путь приводит к распознаванию патогена, заставляя инфицированные клетки подвергаться клеточной гибели, чтобы остановить распространение патогена. [100] Растения с рецепторами FLS2 и EF-Tu показали повышенную приспособленность в популяции. [97] Это привело к убеждению, что устойчивость к фитопатогенам является эволюционным механизмом, который вырабатывался на протяжении поколений в ответ на динамические условия окружающей среды, такие как возросшее хищничество и экстремальные температуры. [97]
A. thaliana также использовался для изучения SAR. [101] Этот путь использует бензотиадиазол, химический индуктор, для индукции факторов транскрипции, мРНК, генов SAR. Это накопление факторов транскрипции приводит к ингибированию генов, связанных с патогенами. [101]
Взаимодействие растений и патогенов важно для понимания того, как растения эволюционировали для борьбы с различными типами патогенов, которые могут на них влиять. [97] Различия в устойчивости растений в разных популяциях обусловлены различиями в факторах окружающей среды. Растения, которые развили устойчивость, будь то общая вариация или вариация SAR, смогли жить дольше и сдерживать некроз своих тканей (преждевременную смерть клеток), что приводит к лучшей адаптации и приспособленности для популяций, находящихся в быстро меняющихся условиях. [97] В будущем сравнение патосистем диких популяций + их коэволюционировавших патогенов с дико-дикими гибридами известного происхождения может выявить новые механизмы балансирующего отбора . В теории жизненного цикла мы можем обнаружить, что A. thaliana сохраняет определенные аллели из-за плейотропии между эффектами растительных патогенов и другими признаками, как у домашнего скота. [102]
Исследования A. thaliana показывают, что семейство белков-регуляторов иммунитета EDS1 в целом коэволюционировало с семейством нуклеотид-связывающих-лейцин-богатых-повторяющихся-рецепторов (NLR) CCHELO . Сяо и др. 2005 показали, что иммунитет к мучнистой росе, опосредованный RPW8 A. thaliana ( который имеет домен CC HELO ), зависит от двух членов этого семейства: самого EDS1 и PAD4 . [103]
УСТОЙЧИВОСТЬ К PSEUDOMONAS SYRINGAE 5/RPS5 — это белок устойчивости к болезням , который защищает AvrPphB SUSCEPTIBLE 1 /PBS1 . PBS1 , как следует из названия, является целью AvrPphB , эффектора, продуцируемого Pseudomonas syringae pv. phaseolicola . [104]
Текущие исследования A. thaliana проводятся на Международной космической станции Европейским космическим агентством . Целью является изучение роста и размножения растений от семени к семени в условиях микрогравитации . [105] [106]
Были описаны устройства «растение на чипе», в которых ткани A. thaliana можно культивировать в полупробирочных условиях . [107] Использование этих устройств может помочь в понимании направления пыльцевой трубки и механизма полового размножения у A. thaliana.
Исследователи из Университета Флориды смогли вырастить растение на лунной почве, взятой из Моря Спокойствия . [108]
A. thaliana — преимущественно самоопыляющееся растение с показателем ауткроссинга, оцениваемым менее чем в 0,3%. [109] Анализ картины неравновесия сцепления по всему геному показал, что самоопыление возникло примерно миллион лет назад или более. [110] Мейозы, которые приводят к самоопылению, вряд ли приведут к значительной полезной генетической изменчивости. Однако эти мейозы могут обеспечить адаптивное преимущество рекомбинационного восстановления повреждений ДНК во время формирования половых клеток в каждом поколении. [111] Такое преимущество могло быть достаточным для обеспечения долгосрочного сохранения мейозов даже при последующем самооплодотворении. Физический механизм самоопыления у A. thaliana заключается в автогамии до цветения, при которой оплодотворение происходит в основном до раскрытия цветка.
{{cite journal}}
: CS1 maint: числовые имена: список авторов ( ссылка )