Криоконсервация или криоконсервация — это процесс, при котором биологический материал — клетки , ткани или органы — замораживается для сохранения материала в течение длительного периода времени. [1] При низких температурах (обычно -80 °C (-112 °F) или -196 °C (-321 °F) с использованием жидкого азота ) любой клеточный метаболизм , который может вызвать повреждение рассматриваемого биологического материала, эффективно прекращается. Криоконсервация — эффективный способ транспортировки биологических образцов на большие расстояния, длительного хранения образцов и создания банка образцов для пользователей. Молекулы, называемые криозащитными агентами (CPA), добавляются для уменьшения осмотического шока и физического стресса, которым подвергаются клетки в процессе замораживания. [2] Некоторые криозащитные средства, используемые в исследованиях, созданы на основе растений и животных в природе, которые обладают уникальной устойчивостью к холоду, позволяющей пережить суровые зимы, в том числе: деревья, [3] [4] лесные лягушки, [5] и тихоходки. [6]
Тихоходки , микроскопические многоклеточные организмы, могут выжить при замерзании , заменяя большую часть своей внутренней воды сахаром, называемым трегалозой , предотвращая ее кристаллизацию, которая в противном случае повреждает клеточные мембраны . Смеси растворенных веществ могут достигать аналогичных эффектов. Некоторые растворенные вещества, включая соли, имеют тот недостаток, что они могут быть токсичными при высоких концентрациях. Помимо водяного медведя, переносить замерзание своей крови и других тканей могут древесные лягушки. Мочевина накапливается в тканях при подготовке к зимовке, а гликоген печени в больших количествах превращается в глюкозу в ответ на образование внутреннего льда. И мочевина, и глюкоза действуют как « криопротекторы », ограничивая количество образующегося льда и уменьшая осмотическое сжатие клеток. Лягушки могут пережить многие случаи замерзания/оттаивания зимой, если замерзает не более 65% общей воды в организме. Исследования по изучению феномена «замерзающих лягушек» были проведены в первую очередь канадским исследователем доктором Кеннетом Б. Стори . [ нужна цитата ]
Морозоустойчивость , при которой организмы переживают зиму, замерзая и прекращая жизненные функции, известна у нескольких позвоночных: пяти видов лягушек ( Rana sylvatica , Pseudacris triseriata , Hyla Crusfer , Hyla versicolor , Hyla chrysoscelis ), одному из саламандр ( Salamandrella ). keyserlingii ), одна из змей ( Thamnophis sirtalis ) и три черепахи ( Chrysemys picta , Terrapene carolina , Terrapene ornata ). [7] Щелкающие черепахи Chelydra serpentina и настенные ящерицы Podarcis muralis также переживают номинальное замораживание, но их адаптивность к зимовке не установлена. В случае Rana sylvatica одним криоконсервантом является обычная глюкоза, концентрация которой увеличивается примерно на 19 ммоль/л при медленном охлаждении лягушек. [7]
Одним из первых теоретиков криоконсервации был Джеймс Лавлок . В 1953 году он предположил, что повреждение эритроцитов при замораживании происходит из-за осмотического стресса [8] и что увеличение концентрации соли в обезвоживаемой клетке может привести к ее повреждению. [9] [10] В середине 1950-х годов он экспериментировал с криоконсервацией грызунов, определив, что хомяков можно заморозить, при этом 60% воды в мозге кристаллизуется в лед без каких-либо побочных эффектов; Было показано, что другие органы подвержены повреждениям. [11]
Криоконсервация человеческих материалов применялась начиная с 1954 года, когда были зафиксированы три беременности в результате осеменения ранее замороженной спермы. [12] Сперма курицы была заморожена в 1957 году группой учёных из Великобритании под руководством Кристофера Полджа . [13] В 1963 году Питер Мазур из Национальной лаборатории Ок-Ридж в США продемонстрировал, что летального внутриклеточного замораживания можно избежать, если охлаждение будет достаточно медленным, чтобы позволить достаточному количеству воды покинуть клетку во время постепенного замораживания внеклеточной жидкости. Эта скорость различается для клеток разного размера и водопроницаемости: типичная скорость охлаждения около 1 °C/мин подходит для многих клеток млекопитающих после обработки криопротекторами, такими как глицерин или диметилсульфоксид, но эта скорость не является универсальным оптимальным. [14]
22 апреля 1966 года первый человеческий труп был заморожен (его бальзамировали в течение двух месяцев) путем помещения в жидкий азот и хранения при температуре чуть выше нуля. Труп принадлежал пожилой женщине из Лос-Анджелеса, имя которой неизвестно. Вскоре его разморозили и похоронили родственники. Первым человеческим трупом, замороженным с надеждой на будущее воскрешение, был труп Джеймса Бедфорда , сделанный через несколько часов после его смерти от рака в 1967 году. [15] труп Бедфорда — единственный крионический труп, замороженный до 1974 года, который до сих пор заморожен. [16]
Явления , которые могут вызвать повреждение клеток во время криоконсервации, в основном возникают на стадии замораживания и включают эффекты растворения, образование внеклеточного льда, обезвоживание и образование внутриклеточного льда. Многие из этих эффектов можно уменьшить с помощью криопротекторов. Как только сохранившийся материал замерзнет, он относительно безопасен от дальнейшего повреждения. [17]
Основными методами предотвращения повреждений при криоконсервации являются хорошо зарекомендовавшая себя комбинация контролируемой скорости и медленного замораживания , а также новый процесс мгновенной заморозки, известный как витрификация .
Медленное замораживание с контролируемой скоростью , также известное как медленное программируемое замораживание (SPF) [ 18] — это метод, при котором клетки охлаждаются примерно до -196 °C в течение нескольких часов.
Медленное программируемое замораживание было разработано в начале 1970-х годов и в конечном итоге привело к рождению первого человеческого замороженного эмбриона в 1984 году. С тех пор машины, которые замораживают биологические образцы с использованием программируемых последовательностей или контролируемых скоростей, используются для биологии человека, животных и клеток. – «замораживание» образца, чтобы лучше сохранить его для возможного оттаивания, прежде чем он будет заморожен или криоконсервирован в жидком азоте. Такие машины используются для замораживания ооцитов, кожи, продуктов крови, эмбрионов, спермы, стволовых клеток и общей консервации тканей в больницах, ветеринарных клиниках и исследовательских лабораториях по всему миру. Например, количество живорождений из замороженных эмбрионов, «медленно замороженных», оценивается примерно в 300 000–400 000, или 20% от примерно 3 миллионов рождений, родившихся в результате экстракорпорального оплодотворения (ЭКО). [19]
Летального внутриклеточного замораживания можно избежать, если охлаждение будет достаточно медленным, чтобы позволить достаточному количеству воды покинуть клетку во время постепенного замораживания внеклеточной жидкости. Чтобы свести к минимуму рост внеклеточных кристаллов льда и рекристаллизацию, [20] биоматериалы , такие как альгинаты , поливиниловый спирт или хитозан , могут использоваться для замедления роста кристаллов льда наряду с традиционными низкомолекулярными криопротекторами. [21] Эта скорость различается для клеток разного размера и водопроницаемости : типичная скорость охлаждения около 1 °C/мин подходит для многих клеток млекопитающих после обработки криопротекторами, такими как глицерин или диметилсульфоксид (ДМСО), но эта скорость не универсальный оптимум. Скорость 1 °C/мин может быть достигнута с помощью таких устройств, как морозильная камера с регулируемой скоростью или настольный портативный морозильный контейнер. [22]
Несколько независимых исследований предоставили доказательства того, что замороженные эмбрионы, хранящиеся с использованием методов медленного замораживания, могут в некотором смысле «лучше», чем свежие при ЭКО. Исследования показывают, что использование замороженных эмбрионов и яиц вместо свежих эмбрионов и яиц снижает риск мертворождения и преждевременных родов, хотя точные причины все еще изучаются.
Витрификация — это процесс мгновенной заморозки (сверхбыстрого охлаждения), который помогает предотвратить образование кристаллов льда и помогает предотвратить повреждение криоконсервации.
Исследователи Грег Фэйи и Уильям Ф. Ралл помогли внедрить витрификацию в криоконсервацию репродуктивных органов в середине 1980-х годов. [23] По состоянию на 2000 год исследователи утверждают, что витрификация обеспечивает преимущества криоконсервации без повреждений из-за образования кристаллов льда. [24] Ситуация усложнилась с развитием тканевой инженерии, поскольку и клетки, и биоматериалы должны оставаться свободными ото льда, чтобы сохранить высокую жизнеспособность и функции клеток, целостность конструкций и структуру биоматериалов. О витрификации тканеинженерных конструкций впервые сообщила Лилия Кулешова [25] , которая также была первым ученым, добившимся витрификации ооцитов , что привело к живорождению в 1999 году . [26] Для клинической криоконсервации витрификация обычно требует добавления криопротекторов перед охлаждение. Криопротекторы — это макромолекулы, добавляемые в среду замораживания для защиты клеток от вредного воздействия внутриклеточного образования кристаллов льда или от воздействия раствора в процессе замораживания и оттаивания. Они обеспечивают более высокую степень выживаемости клеток во время замораживания, снижают температуру замерзания и защищают клеточную мембрану от повреждений, связанных с замораживанием. Криопротекторы обладают высокой растворимостью, малой токсичностью при высоких концентрациях, низкой молекулярной массой и способностью взаимодействовать с водой посредством водородных связей.
Вместо кристаллизации сиропообразный раствор превращается в аморфный лед — он стекловает . Вместо фазового перехода из жидкого состояния в твердое в результате кристаллизации аморфное состояние похоже на «твердую жидкость», и превращение происходит в небольшом температурном диапазоне, называемом температурой « стеклования ».
Стеклованию воды способствует быстрое охлаждение, и ее можно достичь без криопротекторов за счет чрезвычайно быстрого снижения температуры (мегакельвинов в секунду). До 2005 года скорость, необходимая для достижения стеклообразного состояния чистой воды, считалась невозможной [27].
Двумя условиями, обычно необходимыми для осуществления стеклования, являются увеличение вязкости и снижение температуры замерзания. Многие растворенные вещества обладают обоими свойствами, но более крупные молекулы обычно оказывают большее влияние, особенно на вязкость. Быстрое охлаждение также способствует витрификации.
В общепринятых методах криоконсервации растворенное вещество должно проникнуть через клеточную мембрану, чтобы добиться повышенной вязкости и снизить температуру замерзания внутри клетки. Сахара не легко проникают через мембрану. Те растворенные вещества, которые это делают, такие как ДМСО, распространенный криопротектор, часто токсичны в высоких концентрациях. Один из трудных компромиссов при остекловывании криоконсервации касается ограничения ущерба, причиняемого самим криопротектором из-за токсичности криопротектора. Смеси криопротекторов и использование блокаторов льда позволили компании 21st Century Medicine витрифицировать почку кролика при температуре -135 °C с помощью своей запатентованной смеси для витрификации. После согревания почку успешно трансплантировали кролику с полной функциональностью и жизнеспособностью, способной поддерживать кролика в течение неопределенного времени в качестве единственной функционирующей почки. [28] В 2000 году FM-2030 стал первым человеком, которого успешно витрифицировали посмертно.
Кровь можно заменить инертными благородными газами и/или метаболически жизненно важными газами, такими как кислород , чтобы органы могли охлаждаться быстрее и требовалось меньше антифриза. Поскольку участки ткани разделены газом, небольшие расширения не скапливаются, тем самым защищая от растрескивания. [29] Небольшая компания Arigos Biomedical «уже восстановила свиные сердца при температуре 120 градусов ниже нуля», [30] хотя определение «восстановленных» неясно. Давление в 60 атм может способствовать увеличению скорости теплообмена. [31] Перфузия/персуфляция газообразного кислорода может улучшить сохранность органов по сравнению с хранением в статическом холодильнике или перфузией гипотермической машины, поскольку более низкая вязкость газов может помочь достичь большего количества областей сохраненных органов и доставить больше кислорода на грамм ткани. [32]
Как правило, криоконсервацию легче проводить для тонких образцов и взвешенных клеток, поскольку их можно охладить быстрее и поэтому требуются меньшие дозы токсичных криопротекторов . Поэтому криоконсервация печени и сердца человека для хранения и трансплантации пока нецелесообразна.
Тем не менее, подходящие комбинации криопротекторов и режимы охлаждения и промывания во время нагревания часто позволяют успешно криоконсервировать биологические материалы, особенно клеточные суспензии или образцы тонких тканей. Примеры включают в себя:
Криоконсервация эмбрионов используется для хранения эмбрионов, например, когда в результате ЭКО получено больше эмбрионов, чем необходимо в настоящее время.
Сообщалось об одной беременности и, в результате, здоровых родах от эмбриона, хранившегося в течение 27 лет, после успешной беременности эмбриона из той же партии тремя годами ранее. [37] Многие исследования оценивали детей, рожденных из замороженных эмбрионов, или «заморозков». Результат был равномерно положительным без увеличения врожденных дефектов или аномалий развития. [38] Исследование более 11 000 криоконсервированных человеческих эмбрионов не выявило существенного влияния времени хранения на выживаемость после оттаивания для циклов ЭКО или донорства ооцитов, а также для эмбрионов, замороженных на стадиях пронуклеуса или дробления. [39] Кроме того, продолжительность хранения не оказала существенного влияния на клиническую беременность, выкидыши, имплантацию или частоту живорождения, будь то в результате ЭКО или циклов донорства ооцитов. [39] Скорее, возраст ооцитов, процент выживаемости и количество перенесенных эмбрионов являются предикторами исхода беременности. [39]
Криоконсервация ткани яичников представляет интерес для женщин, которые хотят сохранить свою репродуктивную функцию за пределами естественного предела или чей репродуктивный потенциал находится под угрозой из-за терапии рака [40] , например, при гематологических злокачественных новообразованиях или раке молочной железы. [41] Процедура заключается в том, чтобы взять часть яичника и выполнить медленное замораживание перед ее хранением в жидком азоте на время лечения. Затем ткань можно разморозить и имплантировать рядом с фаллопиевой трубкой либо ортотопически (в естественное место), либо гетеротопически (на брюшную стенку), [41] где она начинает производить новые яйцеклетки, обеспечивая нормальное зачатие. [42] Ткань яичника также можно трансплантировать мышам с ослабленным иммунитетом ( мышам SCID ), чтобы избежать отторжения трансплантата , а ткань можно собирать позже, когда разовьются зрелые фолликулы. [43]
Криоконсервация яйцеклеток человека — это новая технология, при которой яйцеклетки женщины ( ооциты ) извлекаются, замораживаются и хранятся. Позже, когда она будет готова забеременеть, яйцеклетки можно будет разморозить, оплодотворить и перенести в матку в виде эмбрионов . С 1999 года, когда Кулешова и соавт. сообщили о рождении первого ребенка из эмбриона, полученного из витрифицированных и нагретых женских яйцеклеток в журнале «Репродукция человека» [25] , эта концепция получила признание и широкое распространение. Этот прорыв в достижении витрификации женских ооцитов стал важным шагом вперед в наших знаниях и практике процесса ЭКО, поскольку частота клинической беременности после витрификации ооцитов в четыре раза выше, чем после медленного замораживания. [44] Витрификация ооцитов жизненно важна для сохранения фертильности у молодых онкологических больных и для лиц, проходящих ЭКО, которые по религиозным или этическим причинам возражают против практики замораживания эмбрионов.
После криоконсервации сперму можно успешно использовать практически неограниченное время. Самый длительный успешный срок хранения составляет 22 года. [45] Его можно использовать для донорства спермы , когда реципиент хочет пройти лечение в другое время или в другом месте, или как средство сохранения фертильности для мужчин, перенесших вазэктомию или лечение, которое может поставить под угрозу их фертильность, такое как химиотерапия , лучевая терапия или хирургическое вмешательство.
Криоконсервация незрелой ткани яичек — это развивающийся метод, позволяющий обеспечить репродукцию мальчикам, нуждающимся в гонадотоксической терапии. Данные на животных являются многообещающими, поскольку здоровое потомство было получено после трансплантации замороженных суспензий клеток яичек или кусочков тканей. Однако ни один из вариантов восстановления фертильности из замороженных тканей, то есть трансплантация суспензии клеток, трансплантация тканей и созревание in vitro, пока не доказал свою эффективность и безопасность для человека. [46]
Криоконсервация целых растений мха , особенно Physcomitrella patens , была разработана Ральфом Рески и его коллегами [47] и выполняется в Международном центре запасов мха . Этот биобанк собирает, сохраняет и распространяет мутанты и экотипы мхов . [48]
МСК при переливании сразу в течение нескольких часов после размораживания могут демонстрировать снижение функции или демонстрировать снижение эффективности при лечении заболеваний по сравнению с теми МСК, которые находятся в логарифмической фазе роста клеток (свежие). В результате криоконсервированные МСК необходимо вернуть в логарифмическую фазу роста клеток в культуре in vitro , прежде чем их вводить для клинических испытаний или экспериментальной терапии. Повторное культивирование МСК поможет восстановиться после шока, который клетки получают при замораживании и оттаивании. Различные клинические испытания МСК, в которых использовались криоконсервированные продукты сразу после оттаивания, оказались неудачными, по сравнению с теми клиническими испытаниями, в которых использовались свежие МСК. [49]
Криоконсервация растений становится жизненно важной из-за ценности их биоразнообразия. Семена часто рассматривают как важную систему доставки генетической информации. Криоконсервация непокорных семян является наиболее сложной из-за непереносимости низких температур и низкого содержания воды. Однако раствор для витрификации растений может решить проблему и помочь криоконсервировать непокорные семена (Nymphaea caerulea). [50]
Бактерии и грибы можно хранить кратковременно (от месяцев до года в зависимости от того) в холодильнике, однако деление клеток и метаболизм не останавливаются полностью, и поэтому это не оптимальный вариант для длительного хранения (годы) или для генетического сохранения культур. или фенотипически, поскольку деление клеток может привести к мутациям, а субкультивирование может вызвать фенотипические изменения. Предпочтительным вариантом, зависящим от вида, является криоконсервация. Нематоды — единственные многоклеточные эукариоты, которые, как было показано, выживают при криоконсервации. [51] [52]
Грибы, особенно зигомицеты, аскомицеты и высшие базидиомицеты, независимо от спорообразования, могут храниться в жидком азоте или глубоко заморожены. Криоконсервация является отличительным методом для грибов, которые не образуют спор (в противном случае можно использовать другие методы сохранения спор с меньшими затратами и легкостью), образуют споры, но имеют деликатные споры (крупные или чувствительные к замораживанию), являются патогенными (опасны для поддержания метаболически активной активности). гриб) или должны использоваться для генетических фондов (в идеале, чтобы они имели тот же состав, что и исходный депозит). Как и в случае со многими другими организмами, используются криопротекторы, такие как ДМСО или глицерин (например, мицелиальные грибы - 10% глицерина или дрожжи - 20% глицерина). Различия в выборе криопротекторов зависят от вида (или класса), но обычно для грибов наиболее эффективны проникающие криопротекторы, такие как ДМСО, глицерин или полиэтиленгликоль (к другим непроникающим средствам относятся сахара маннит, сорбит, декстран и т. д.). Повторение замораживания-оттаивания не рекомендуется, поскольку это может снизить жизнеспособность. Рекомендуется использовать резервные морозильники или хранилища жидкого азота. Ниже приведены несколько протоколов замораживания (в каждом используются полипропиленовые криопробирки с завинчивающейся крышкой): [53]
Многие распространенные культивируемые лабораторные штаммы подвергаются глубокой заморозке для сохранения генетически и фенотипически стабильных и долговременных запасов. [54] Субкультивирование и длительное хранение образцов в холодильнике может привести к потере плазмиды (плазмид) или мутациям. Обычно конечное процентное содержание глицерина составляет 15, 20 и 25. Из чашки со свежей культурой выбирают одну интересующую колонию и готовят жидкую культуру. Из жидкой культуры среду непосредственно смешивают с равным количеством глицерина; колонию следует проверить на наличие каких-либо дефектов, таких как мутации. Все антибиотики следует вымыть из культуры перед длительным хранением. Методы различаются, но смешивание можно производить осторожно путем переворачивания или быстро с помощью вортекса, а охлаждение можно варьировать, помещая криопробирку непосредственно при температуре от -50 до -95 ° C, шоковой заморозки в жидком азоте или постепенного охлаждения и последующего хранения при температуре -80 °. C или ниже (жидкий азот или пары жидкого азота). Выделение бактерий также может варьироваться, а именно: если гранулы хранятся внутри пробирки, то несколько шариков можно использовать для посева или замороженный исходный материал можно соскоблить петлей и затем поместить в чашку, однако, поскольку требуется лишь небольшой запас, вся пробирка никогда не следует полностью размораживать и следует избегать повторного замораживания-оттаивания. 100% восстановление невозможно независимо от методологии. [55] [56] [57]
Микроскопические почвенные нематоды - круглые черви Panagrolaimus detritophagus и Plectus parvus — единственные эукариотические организмы, жизнеспособность которых на сегодняшний день доказана после длительного криоконсервирования. В данном случае сохранение было естественным, а не искусственным, благодаря вечной мерзлоте .
Было доказано, что некоторые виды животных, включая рыб, амфибий и рептилий, переносят замораживание. По крайней мере четыре вида лягушек ( Pseudacris Crusfer , Hyla versicolor , Pseudacris triseriata , Lithobates sylvaticus ) и несколько видов черепах ( Terrapene carolina , детеныши Chrysemys picta ), ящериц и змей устойчивы к морозам и развили приспособления к выживанию при замерзании. Хотя некоторые лягушки зимуют под землей или в воде, температура тела все равно падает до -5–7 °C, заставляя их замерзать. Лесная лягушка ( Lithobates sylvaticus ) выдерживает многократное замораживание, при котором около 65% ее внеклеточной жидкости превращается в лед. [54]
{{cite web}}
: CS1 maint: архивная копия в заголовке ( ссылка ){{cite book}}
: CS1 maint: отсутствует местоположение издателя ( ссылка ){{cite book}}
: CS1 maint: отсутствует местоположение издателя ( ссылка )