stringtranslate.com

Мышечная клетка

Мышечная клетка , также известная как миоцит , является зрелой сократительной клеткой в ​​мышце животного. [1] У людей и других позвоночных существует три типа: скелетная , гладкая и сердечная (кардиомиоциты). [2] Скелетная мышечная клетка длинная и нитевидная со множеством ядер и называется мышечным волокном . [3] Мышечные клетки развиваются из эмбриональных клеток-предшественников , называемых миобластами . [1]

Клетки скелетных мышц образуются путем слияния миобластов с образованием многоядерных клеток ( синцитиев ) в процессе, известном как миогенез . [4] [5] Клетки скелетных мышц и клетки сердечной мышцы содержат миофибриллы и саркомеры и образуют поперечно-полосатую мышечную ткань . [6]

Клетки сердечной мышцы образуют сердечную мышцу в стенках камер сердца и имеют одно центральное ядро . [7] Клетки сердечной мышцы соединены с соседними клетками вставочными дисками , и когда они соединены в видимую единицу, их называют сердечным мышечным волокном . [8]

Клетки гладких мышц контролируют непроизвольные движения, такие как перистальтические сокращения в пищеводе и желудке . Гладкие мышцы не имеют миофибрилл или саркомеров и поэтому не имеют поперечно-полосатой структуры. Клетки гладких мышц имеют одно ядро.

Структура

Необычная микроскопическая анатомия мышечной клетки дала начало ее терминологии. Цитоплазма в мышечной клетке называется саркоплазмой ; гладкий эндоплазматический ретикулум мышечной клетки называется саркоплазматическим ретикулумом ; а клеточная мембрана в мышечной клетке называется сарколеммой . [9] Сарколемма получает и проводит стимулы.

Клетки скелетных мышц

Схема строения скелетных мышечных волокон

Клетки скелетных мышц представляют собой отдельные сократительные клетки внутри мышцы и обычно называются мышечными волокнами из-за их более длинной нитевидной формы. [10] В целом, существует два типа мышечных волокон, участвующих в мышечном сокращении : либо медленно сокращающиеся ( тип I ), либо быстро сокращающиеся ( тип II ).

Одна мышца, такая как двуглавая мышца плеча у молодого взрослого мужчины, содержит около 253 000 мышечных волокон. [11] Скелетные мышечные волокна являются единственными мышечными клетками, которые являются многоядерными с ядрами, обычно называемыми миоядрами . Это происходит во время миогенеза при слиянии миобластов , каждый из которых вносит свой вклад в ядро ​​новообразованной мышечной клетки или миотрубки . [12] Слияние зависит от мышечно-специфических белков, известных как фузогены, называемые миомейкерами и миомергерами . [13]

Поперечно-полосатое мышечное волокно содержит миофибриллы, состоящие из длинных белковых цепей миофиламентов . Существует три типа миофиламентов: тонкие, толстые и эластичные, которые работают вместе, чтобы произвести сокращение мышцы . [14] Тонкие миофиламенты представляют собой нити, состоящие в основном из актина , а толстые нити состоят в основном из миозина , и они скользят друг по другу, чтобы сократить длину волокна при сокращении мышцы. Третий тип миофиламентов представляет собой эластичные нити, состоящие из титина , очень большого белка.

В полосах мышечных полос миозин образует темные нити, составляющие полосу А. Тонкие нити актина — это светлые нити, составляющие полосу I. Наименьшая сократительная единица в волокне называется саркомером, который представляет собой повторяющуюся единицу в пределах двух полос Z. Саркоплазма также содержит гликоген , который обеспечивает клетку энергией во время усиленных упражнений, и миоглобин , красный пигмент, который хранит кислород до тех пор, пока он не понадобится для мышечной активности. [14]

Саркоплазматический ретикулум , специализированный тип гладкого эндоплазматического ретикулума , образует сеть вокруг каждой миофибриллы мышечного волокна. Эта сеть состоит из группировок из двух расширенных концевых мешочков, называемых терминальными цистернами, и одной Т-трубочки (поперечной трубочки), которая просверливается через клетку и выходит с другой стороны; вместе эти три компонента образуют триады , которые существуют в сети саркоплазматического ретикулума, в которой каждая Т-трубочка имеет две терминальные цистерны с каждой стороны. Саркоплазматический ретикулум служит резервуаром для ионов кальция, поэтому, когда потенциал действия распространяется по Т-трубочке, он сигнализирует саркоплазматическому ретикулуму о необходимости высвободить ионы кальция из закрытых мембранных каналов для стимуляции сокращения мышц. [14] [15]

В скелетных мышцах, на конце каждого мышечного волокна, внешний слой сарколеммы соединяется с сухожильными волокнами в миотендинозном соединении . [16] [17] Внутри мышечного волокна, прижатого к сарколемме, находится множество уплощенных ядер ; эмбриологически это многоядерное состояние возникает в результате слияния нескольких миобластов для образования каждого мышечного волокна, где каждый миобласт вносит свой вклад в одно ядро. [14]

Клетки сердечной мышцы

Клеточная мембрана клетки сердечной мышцы имеет несколько специализированных областей, которые могут включать в себя вставочный диск и поперечные канальцы . Клеточная мембрана покрыта ламинарной оболочкой, ширина которой составляет приблизительно 50 нм. Ламинарная оболочка разделяется на два слоя: lamina densa и lamina lucida . Между этими двумя слоями может находиться несколько различных типов ионов, включая кальций . [18]

Сердечная мышца, как и скелетная мышца, также имеет поперечно-полосатую структуру, а клетки содержат миофибриллы, миофиламенты и саркомеры, как и скелетная мышечная клетка. Клеточная мембрана прикреплена к цитоскелету клетки якорными волокнами шириной около 10 нм. Они обычно располагаются на Z-линиях, так что образуют бороздки и отходят поперечные трубочки. В сердечных миоцитах это образует фестончатую поверхность. [18]

Цитоскелет — это то, из чего строится остальная часть клетки, и у него есть две основные цели: первая — стабилизировать топографию внутриклеточных компонентов, а вторая — помогать контролировать размер и форму клетки. В то время как первая функция важна для биохимических процессов, последняя имеет решающее значение для определения соотношения поверхности к объему клетки. Это сильно влияет на потенциальные электрические свойства возбудимых клеток . Кроме того, отклонение от стандартной формы и размера клетки может иметь отрицательное прогностическое воздействие. [18]

Гладкие мышечные клетки

Гладкие мышечные клетки так называются, потому что они не имеют ни миофибрилл, ни саркомеров и, следовательно, не имеют исчерченности . Они находятся в стенках полых органов , включая желудок , кишечник , мочевой пузырь и матку , в стенках кровеносных сосудов и в трактах дыхательной , мочевыделительной и репродуктивной систем . В глазах цилиарные мышцы расширяют и сжимают радужную оболочку и изменяют форму хрусталика . В коже гладкие мышечные клетки, такие как клетки arrector pili, заставляют волосы вставать дыбом в ответ на холодную температуру или страх . [19]

Клетки гладких мышц имеют веретенообразную форму с широкой серединой и сужающимися концами. Они имеют одно ядро ​​и имеют длину от 30 до 200 микрометров . Это в тысячи раз короче, чем волокна скелетных мышц. Диаметр их клеток также намного меньше, что устраняет необходимость в Т-трубочках, обнаруженных в клетках поперечно-полосатых мышц. Хотя клетки гладких мышц не имеют саркомеров и миофибрилл, они содержат большое количество сократительных белков актина и миозина. Актиновые нити закреплены плотными тельцами (похожими на Z-диски в саркомерах) на сарколемме. [19]

Разработка

Миобласт — это эмбриональная клетка - предшественник , которая дифференцируется , давая начало различным типам мышечных клеток. [20] Дифференцировка регулируется миогенными регуляторными факторами , включая MyoD , Myf5 , миогенин и MRF4 . [21] GATA4 и GATA6 также играют роль в дифференцировке миоцитов. [22]

Скелетные мышечные волокна образуются, когда миобласты сливаются вместе; поэтому мышечные волокна представляют собой клетки с несколькими ядрами , известными как миоядра , при этом каждое клеточное ядро ​​происходит из одного миобласта. Слияние миобластов характерно для скелетных мышц, а не для сердечной мышцы или гладкой мышцы .

Миобласты в скелетных мышцах, которые не образуют мышечные волокна , дедифференцируются обратно в миосателлитные клетки . Эти сателлитные клетки остаются прилегающими к волокну скелетной мышцы, расположенному между сарколеммой и базальной мембраной [23] эндомизия (соединительнотканная оболочка, которая разделяет мышечные пучки на отдельные волокна). Для повторной активации миогенеза сателлитные клетки должны быть стимулированы для дифференциации в новые волокна .

Миобласты и их производные, включая сателлитные клетки, теперь можно генерировать in vitro посредством направленной дифференциации плюрипотентных стволовых клеток . [24]

Киндлин-2 играет роль в удлинении во время миогенеза. [25]

Функция

Сокращение поперечнополосатых мышц

Сокращение скелетных мышц

При сокращении тонкие и толстые нити скользят относительно друг друга с помощью аденозинтрифосфата . Это сближает Z-диски в процессе, называемом механизмом скользящих нитей. Сокращение всех саркомеров приводит к сокращению всего мышечного волокна. Это сокращение миоцита запускается потенциалом действия над клеточной мембраной миоцита. Потенциал действия использует поперечные канальцы , чтобы добраться от поверхности к внутренней части миоцита, которая является непрерывной внутри клеточной мембраны. Саркоплазматические ретикулумы представляют собой мембранные мешки, с которыми поперечные канальцы соприкасаются, но остаются отделенными от них. Они оборачиваются вокруг каждого саркомера и заполнены Ca 2+ . [26]

Возбуждение миоцита вызывает деполяризацию в его синапсах, нервно-мышечных соединениях , что запускает потенциал действия. При наличии одного нервно-мышечного соединения каждое мышечное волокно получает вход только от одного соматического эфферентного нейрона. Потенциал действия в соматическом эфферентном нейроне вызывает высвобождение нейротрансмиттера ацетилхолина . [27]

Когда ацетилхолин высвобождается, он диффундирует через синапс и связывается с рецептором на сарколемме , термин, уникальный для мышечных клеток, который относится к клеточной мембране. Это инициирует импульс, который проходит через сарколемму. [28]

Когда потенциал действия достигает саркоплазматического ретикулума, он запускает высвобождение Ca 2+ из каналов Ca 2+ . Ca 2+ течет из саркоплазматического ретикулума в саркомер с обеими его нитями. Это заставляет нити начинать скользить, а саркомеры становятся короче. Для этого требуется большое количество АТФ, так как он используется как при прикреплении, так и при высвобождении каждой головки миозина . Очень быстро Ca 2+ активно транспортируется обратно в саркоплазматический ретикулум, что блокирует взаимодействие между тонким и толстым филаментом. Это, в свою очередь, заставляет мышечную клетку расслабиться. [28]

Существует четыре основных типа мышечных сокращений : изометрические, изотонические, эксцентрические и концентрические. [29] Изометрические сокращения — это сокращения скелетных мышц, которые не вызывают движения мышцы. а изотонические сокращения — это сокращения скелетных мышц, которые вызывают движение. Эксцентрическое сокращение — это когда мышца движется под нагрузкой. Концентрическое сокращение — это когда мышца укорачивается и генерирует силу.

Сокращение сердечной мышцы

Специализированные кардиомиоциты в синоатриальном узле генерируют электрические импульсы, которые контролируют частоту сердечных сокращений. Эти электрические импульсы координируют сокращение всей оставшейся сердечной мышцы через электрическую проводящую систему сердца . Активность синоатриального узла модулируется, в свою очередь, нервными волокнами как симпатической , так и парасимпатической нервной системы. Эти системы действуют, увеличивая и уменьшая, соответственно, скорость производства электрических импульсов синоатриальным узлом.

Эволюция

Эволюционное происхождение мышечных клеток у животных является предметом жарких споров: одна точка зрения заключается в том, что мышечные клетки эволюционировали один раз, и, таким образом, все мышечные клетки имеют одного общего предка. Другая точка зрения заключается в том, что мышечные клетки эволюционировали более одного раза, и любые морфологические или структурные сходства обусловлены конвергентной эволюцией и развитием общих генов, которые предшествуют эволюции мышц – даже мезодермы ( мезодерма – это зародышевый слой , который дает начало мышечным клеткам у позвоночных).

Шмид и Зайпель (2005) [30] утверждают, что происхождение мышечных клеток является монофилетическим признаком, который произошел одновременно с развитием пищеварительной и нервной систем всех животных, и что это происхождение можно проследить до одного предка многоклеточных животных, у которых присутствуют мышечные клетки. Они утверждают, что молекулярное и морфологическое сходство между мышечными клетками у Cnidaria и Ctenophora достаточно похоже на таковое у билатерий , поэтому у многоклеточных животных должен быть один предок, от которого произошли мышечные клетки. В этом случае Шмид и Зайпель утверждают, что последний общий предок Bilateria, Ctenophora и Cnidaria был триплобластом ( организмом, имеющим три зародышевых листка), и что диплобластия , то есть организм с двумя зародышевыми листками, развилась вторично из-за их наблюдения за отсутствием мезодермы или мышц, обнаруженных у большинства книдарий и гребневиков. Сравнивая морфологию книдарий и гребневиков с билатериями, Шмид и Зайпель смогли сделать вывод, что в щупальцах и кишечнике некоторых видов книдарий и щупальцах гребневиков имеются миобластоподобные структуры. Поскольку эта структура уникальна для мышечных клеток, эти ученые на основе данных, собранных их коллегами, определили, что это маркер поперечно-полосатых мышц, аналогичный наблюдаемому у билатерий. Авторы также отмечают, что мышечные клетки, обнаруженные у книдарий и гребневиков, часто оспариваются из-за того, что происхождение этих мышечных клеток — эктодерма, а не мезодерма или мезендодерма.

Другие авторы утверждают, что происхождение настоящих мышечных клеток — это энтодермальная часть мезодермы и энтодерма. Однако Шмид и Зайпель (2005) [30] опровергают скептицизм относительно того, являются ли мышечные клетки, обнаруженные у гребневиков и книдарий, «истинными» мышечными клетками, считая, что книдарии развиваются через стадию медузы и стадию полипа. Они отмечают, что на стадии медузы гидроидных есть слой клеток, который отделяется от дистальной стороны эктодермы, которая образует поперечно-полосатые мышечные клетки аналогично мезодерме; они называют этот третий отделенный слой клеток эктокодоном . Шмид и Зайпель утверждают, что даже у билатерий не все мышечные клетки происходят из мезентодермы: их ключевыми примерами являются то, что как в глазных мышцах позвоночных, так и в мышцах спиральных животных эти клетки происходят из эктодермальной мезодермы, а не энтодермальной мезодермы. Кроме того, они утверждают, что поскольку миогенез происходит у книдарий с помощью тех же молекулярных регуляторных элементов, которые обнаружены в спецификации мышечных клеток у билатерий, то есть доказательства единого происхождения поперечно-полосатых мышц. [30]

В отличие от этого аргумента о едином происхождении мышечных клеток, Steinmetz, Kraus, et al . (2012) [31] утверждают, что молекулярные маркеры, такие как белок миозин II , используемый для определения этого единого происхождения поперечно-полосатых мышц, предшествуют образованию мышечных клеток. Они используют пример сократительных элементов, присутствующих в Porifera, или губках, у которых действительно отсутствует эта поперечно-полосатая мышца, содержащая этот белок. Кроме того, Steinmetz, Kraus, et al . представляют доказательства полифилетического происхождения развития поперечно-полосатых мышечных клеток посредством своего анализа морфологических и молекулярных маркеров, которые присутствуют у билатерий и отсутствуют у книдарий, гребневиков и билатерий. Steinmetz, Kraus, et al . показали, что традиционные морфологические и регуляторные маркеры, такие как актин , способность связывать фосфорилирование боковых цепей миозина с более высокими концентрациями положительных концентраций кальция и другие элементы MyHC присутствуют у всех метазоа, а не только у организмов, у которых, как было показано, есть мышечные клетки. Таким образом, использование любого из этих структурных или регуляторных элементов для определения того, достаточно ли похожи мышечные клетки книдарий и гребневиков на мышечные клетки билатерий, чтобы подтвердить единую линию, сомнительно, согласно Штейнметцу, Краусу и др . Кроме того, они объясняют, что ортологи генов Myc, которые использовались для гипотезы о происхождении поперечнополосатых мышц, произошли через событие дупликации генов, которое предшествовало первым настоящим мышечным клеткам (имея в виду поперечнополосатых мышц), и они показывают, что гены Myc присутствуют у губок, у которых есть сократительные элементы, но нет настоящих мышечных клеток. Штейнметц, Краус и др . также показали, что локализация этого дублированного набора генов, которые выполняют как функцию содействия формированию генов поперечно-полосатых мышц, так и генов регуляции и движения клеток, уже была разделена на MHC поперечно-полосатых и немышечных. Это разделение дублированного набора генов показано через локализацию поперечно-полосатых в сократительной вакуоли у губок, в то время как немышечные были более диффузно выражены во время развития формы клетки и изменения. Штейнмец, Краус и др . обнаружили схожую картину локализации у книдарий, за исключением книдарий N. vectensisналичие этого маркера поперечно-полосатой мускулатуры в гладкой мускулатуре пищеварительного тракта. Таким образом, они утверждают, что плезиоморфный признак разделенных ортологов многих не может быть использован для определения монофилогении мускулатуры, и дополнительно утверждают, что наличие маркера поперечно-полосатой мускулатуры в гладкой мускулатуре этого книдария показывает фундаментально иной механизм развития и структуры мышечных клеток у книдарий. [31]

Steinmetz, Kraus, et al . (2012) [31] далее приводят доводы в пользу множественного происхождения поперечно-полосатых мышц у метазоа, объясняя, что ключевой набор генов, используемых для формирования тропонинового комплекса для регуляции и формирования мышц у билатерий, отсутствует у книдарий и гребневиков, и 47 наблюдаемых структурных и регуляторных белков, Steinmetz, Kraus, et al . не смогли найти даже уникальный белок поперечно-полосатых мышечных клеток, который был бы экспрессирован как у книдарий, так и у билатерий. Более того, Z-диск, по-видимому, развивался по-разному даже у билатерий, и существует большое разнообразие белков, разработанных даже между этой кладой, показывая большую степень радиации для мышечных клеток. Благодаря этому расхождению Z-диска , Steinmetz, Kraus, et al . утверждают, что есть только четыре общих белковых компонента, которые присутствовали у всех предков мышц билатерий, и что из них для необходимых компонентов Z-диска только актиновый белок, который, как они уже утверждали, является неинформативным маркером из-за его плезиоморфного состояния, присутствует у книдарий. С помощью дальнейшего тестирования молекулярных маркеров Штейнмец и др. наблюдают, что у небилатерий отсутствуют многие регуляторные и структурные компоненты, необходимые для формирования мышц билатерий, и не находят какого-либо уникального набора белков как для билатерий, так и для книдарий и гребневиков, которые не присутствуют у более ранних, более примитивных животных, таких как губки и амебозои . С помощью этого анализа авторы приходят к выводу, что из-за отсутствия элементов, от которых зависят мышцы билатерий для структуры и использования, мышцы небилатерий должны иметь другое происхождение с другим набором регуляторных и структурных белков. [31]

В другом подходе к аргументу, Андрику и Арноне (2015) [32] используют недавно доступные данные о сетях регуляции генов, чтобы посмотреть, как иерархия генов и морфогенов и другой механизм спецификации тканей расходятся и похожи среди ранних вторичноротых и первичноротых. Понимая не только, какие гены присутствуют у всех билатерий, но также время и место развертывания этих генов, Андрику и Арноне обсуждают более глубокое понимание эволюции миогенеза. [32]

В своей статье Андрику и Арноне (2015) [32] утверждают, что для истинного понимания эволюции мышечных клеток функция транскрипционных регуляторов должна быть понята в контексте других внешних и внутренних взаимодействий. В ходе своего анализа Андрику и Арноне обнаружили, что существуют консервативные ортологи сети регуляции генов как у беспозвоночных билатерий, так и у книдарий. Они утверждают, что наличие этой общей, общей регуляторной схемы допускает высокую степень расхождения от единой хорошо функционирующей сети. Андрику и Арноне обнаружили, что ортологи генов, обнаруженных у позвоночных, были изменены посредством различных типов структурных мутаций у беспозвоночных вторичноротых и первичноротых, и они утверждают, что эти структурные изменения в генах допускают большую дивергенцию мышечной функции и формирования мышц у этих видов. Андрику и Арноне смогли распознать не только любые различия из-за мутации в генах, обнаруженных у позвоночных и беспозвоночных, но и интеграцию видоспецифичных генов, которые также могли вызвать расхождение с исходной функцией сети регуляции генов. Таким образом, хотя была определена общая система мышечной паттернизации, они утверждают, что это может быть связано с более предковой сетью регуляции генов, которая несколько раз кооптировалась в разных линиях с дополнительными генами и мутациями, вызывающими очень расходящееся развитие мышц. Таким образом, кажется, что структура миогенной паттернизации может быть предковой чертой. Однако Андрику и Арноне объясняют, что базовую структуру мышечной паттернизации также следует рассматривать в сочетании с цис-регуляторными элементами, присутствующими в разное время в ходе развития. В отличие от высокого уровня структуры аппаратов семейства генов, Андрику и Арноне обнаружили, что цис-регуляторные элементы не были хорошо сохранены как во времени, так и в месте в сети, что могло показать большую степень расхождения в формировании мышечных клеток. Благодаря этому анализу становится ясно, что миогенная GRN является предковой GRN с реальными изменениями в миогенной функции и структуре, возможно, связанными с более поздним поглощением генов в разное время и в разных местах. [32]

Эволюционно специализированные формы скелетных и сердечных мышц предшествовали расхождению эволюционной линии позвоночных / членистоногих . [33] Это указывает на то, что эти типы мышц развились у общего предка где-то до 700  миллионов лет назад (млн лет назад) . Было обнаружено, что гладкие мышцы позвоночных эволюционировали независимо от типов скелетных и сердечных мышц.

Типы мышечных клеток беспозвоночных

Свойства, используемые для различения быстрых, промежуточных и медленных мышечных волокон, могут быть разными для летательных и прыгательных мышц беспозвоночных. [34] Чтобы еще больше усложнить эту схему классификации, митохондриальное содержание и другие морфологические свойства внутри мышечного волокна могут меняться у мухи цеце в зависимости от физических упражнений и возраста. [35]

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ ab Миоциты в Национальной медицинской библиотеке США Медицинские предметные рубрики (MeSH)
  2. ^ Брюне, Тибо и др. (2016). «Эволюционное происхождение билатеральных гладких и поперечнополосатых миоцитов». eLife . 5 : 1. doi : 10.7554/elife.19607 . ISSN  2050-084X. PMC  5167519 .
  3. ^ Саладин, Кеннет С. (2011). Анатомия человека (3-е изд.). Нью-Йорк: McGraw-Hill. С. 72–73. ISBN 9780071222075.
  4. ^ Скотт, У.; Стивенс, Дж.; Биндер-Маклеод, С.А. (2001). «Классификации типов волокон скелетных мышц человека». Физическая терапия . 81 (11): 1810–1816. doi : 10.1093/ptj/81.11.1810 . PMID  11694174. Архивировано из оригинала 13 февраля 2015 г.
  5. ^ «Знает ли кто-нибудь, почему волокна скелетных мышц имеют периферические ядра, а кардиомиоциты — нет? Каковы функциональные преимущества?». Архивировано из оригинала 19 сентября 2017 г.
  6. ^ Беттс, Дж. Гордон; Янг, Келли А.; Уайз, Джеймс А.; Джонсон, Эдди; По, Брэндон; Круз, Дин Х.; Король, Оксана; Джонсон, Джоди Э.; Уомбл, Марк; Дезе, Питер (6 марта 2013 г.). "Сердечная мышечная ткань" . Получено 3 мая 2021 г.
  7. ^ "Мышечные ткани". Архивировано из оригинала 13 октября 2015 г. Получено 29 сентября 2015 г.
  8. ^ "Структура предсердий, волокна и проводимость" (PDF) . Получено 5 июня 2021 г. .
  9. ^ Саладин, Кеннет С. (2011). Анатомия человека (3-е изд.). Нью-Йорк: McGraw-Hill. С. 244–246. ISBN 9780071222075.
  10. ^ «Структура скелетных мышц | Обучение SEER». training.seer.cancer.gov .
  11. ^ Klein, CS; Marsh, GD; Petrella, RJ; Rice, CL (июль 2003 г.). «Число мышечных волокон в двуглавой мышце плеча у молодых и старых мужчин». Muscle & Nerve . 28 (1): 62–8. doi :10.1002/mus.10386. PMID  12811774. S2CID  20508198.
  12. ^ Cho, CH; Lee, KJ; Lee, EH (август 2018 г.). «С величайшей осторожностью белки молекул стромального взаимодействия (STIM) проверяют, что делают скелетные мышцы». BMB Reports . 51 (8): 378–387. doi :10.5483/bmbrep.2018.51.8.128. PMC 6130827. PMID  29898810 . 
  13. ^ Прасад, В.; Миллей, Д.П. (8 мая 2021 г.). «Скелетные мышечные волокна рассчитывают на ядерные числа для роста». Семинары по клеточной и развивающей биологии . 119 : 3–10. doi : 10.1016/j.semcdb.2021.04.015. PMC 9070318. PMID 33972174.  S2CID 234362466  . 
  14. ^ abcd Саладин, К (2012). Анатомия и физиология: Единство формы и функции (6-е изд.). Нью-Йорк: McGraw-Hill. С. 403–405. ISBN 978-0-07-337825-1.
  15. ^ Sugi, Haruo; Abe, T; Kobayashi, T; Chaen, S; Ohnuki, Y; Saeki, Y; Sugiura, S; Guerrero-Hernandez, Agustin (2013). «Усиление силы, генерируемой отдельными головками миозина в мышечных волокнах поясничной мышцы кролика со снятой кожей при низкой ионной силе». PLOS ONE . 8 (5): e63658. Bibcode : 2013PLoSO...863658S. doi : 10.1371/journal.pone.0063658 . PMC 3655179. PMID  23691080 . 
  16. ^ Charvet, B; Ruggiero, F; Le Guellec, D (апрель 2012 г.). «Развитие миотендинозного соединения. Обзор». Muscles, Ligaments and Tendons Journal . 2 (2): 53–63. PMC 3666507. PMID  23738275 . 
  17. ^ Bentzinger, CF; Wang, YX; Rudnicki, MA (1 февраля 2012 г.). «Строительство мышц: молекулярная регуляция миогенеза». Cold Spring Harbor Perspectives in Biology . 4 (2): a008342. doi :10.1101/cshperspect.a008342. PMC 3281568. PMID 22300977  . 
  18. ^ abc Ferrari, Roberto. "Здоровые и больные миоциты: метаболизм, структура и функция" (PDF) . oxfordjournals.org/en . Oxford University Press. Архивировано из оригинала (PDF) 19 февраля 2015 г. . Получено 12 февраля 2015 г. .
  19. ^ ab Betts, J. Gordon; Young, Kelly A.; Wise, James A.; Johnson, Eddie; Poe, Brandon; Kruse, Dean H.; Korol, Oksana; Johnson, Jody E.; Womble, Mark; Desaix, Peter (6 марта 2013 г.). "Гладкие мышцы" . Получено 10 июня 2021 г.
  20. ^ стр. 395, Биология, Пятое издание, Кэмпбелл, 1999
  21. ^ Перри Р., Рудник М. (2000). «Молекулярные механизмы, регулирующие миогенную детерминацию и дифференциацию». Front Biosci . 5 : D750–67. doi : 10.2741/Perry . PMID  10966875.
  22. ^ Zhao R, Watt AJ, Battle MA, Li J, Bandow BJ, Duncan SA (май 2008 г.). «Потеря как GATA4, так и GATA6 блокирует дифференцировку сердечных миоцитов и приводит к акардии у мышей». Dev. Biol . 317 (2): 614–9. doi :10.1016/j.ydbio.2008.03.013. PMC 2423416. PMID  18400219 . 
  23. ^ Zammit, PS; Partridge, TA; Yablonka-Reuveni, Z (ноябрь 2006 г.). «Сателлитная клетка скелетных мышц: стволовая клетка, пришедшая из холода». Журнал гистохимии и цитохимии . 54 (11): 1177–91. doi : 10.1369/jhc.6r6995.2006 . PMID  16899758.
  24. ^ Чал Дж, Огинума М, Аль Танури З, Гоберт Б, Сумара О, Хик А, Буссон Ф, Зидуни Ю, Мурш С, Монкуке П, Тасси О, Винсент С, Миядзаки А, Бера А, Гарнье Дж. М., Гевара Г, Хестон М., Кеннеди Л., Хаяши С., Дрейтон Б., Черрье Т., Гайро-Морель Б., Гуссони Е., Реле Ф., Таджбахш С., Пуркье О. (август 2015 г.). «Дифференцировка плюрипотентных стволовых клеток в мышечные волокна для моделирования мышечной дистрофии Дюшенна». Природная биотехнология . 33 (9): 962–9. дои : 10.1038/nbt.3297. PMID  26237517. S2CID  21241434. Значок закрытого доступа
  25. ^ Dowling JJ, Vreede AP, Kim S, Golden J, Feldman EL (2008). «Kindlin-2 необходим для удлинения миоцитов и необходим для миогенеза». BMC Cell Biol . 9 : 36. doi : 10.1186/1471-2121-9-36 . PMC 2478659. PMID  18611274 . 
  26. ^ "Структура и функции скелетных мышц". courses.washington.edu . Архивировано из оригинала 15 февраля 2015 г. Получено 13 февраля 2015 г.
  27. ^ "Возбуждение мышечных волокон". courses.washington.edu . Вашингтонский университет. Архивировано из оригинала 27 февраля 2015 г. Получено 11 февраля 2015 г.
  28. ^ ab Ziser, Stephen. "Muscle Cell Anatomy & Function" (PDF) . www.austincc.edu . Архивировано (PDF) из оригинала 23 сентября 2015 г. . Получено 12 февраля 2015 г. .[ мертвая ссылка ]
  29. ^ Гаш, Мэтью К.; Кандл, Патрисия Ф.; Мюррей, Ян В.; Варакалло, Мэтью (2024). «Физиология, сокращение мышц». StatPearls . StatPearls Publishing.
  30. ^ abc Seipel, Katja; Schmid, Volker (1 июня 2005 г.). «Эволюция поперечнополосатых мышц: медузы и происхождение триплобластии». Developmental Biology . 282 (1): 14–26. doi : 10.1016/j.ydbio.2005.03.032 . PMID  15936326.
  31. ^ abcd Steinmetz, Patrick RH; Kraus, Johanna EM; Larroux, Claire; Hammel, Jörg U.; Amon-Hassenzahl, Annette; Houliston, Evelyn; et al. (2012). «Независимая эволюция поперечно-полосатых мышц у книдарий и билатерий». Nature . 487 (7406): 231–234. Bibcode :2012Natur.487..231S. doi :10.1038/nature11180. PMC 3398149 . PMID  22763458. 
  32. ^ abcd Андрику, Кармен; Арноне, Мария Ина (1 мая 2015 г.). «Слишком много способов сделать мышцу: эволюция GRN, управляющих миогенезом». Zoologischer Anzeiger . Специальный выпуск: Труды 3-го Международного конгресса по морфологии беспозвоночных. 256 : 2–13. doi :10.1016/j.jcz.2015.03.005.
  33. ^ OOta, S.; Saitou, N. (1999). «Филогенетические отношения мышечных тканей, выведенные из наложения генных деревьев». Молекулярная биология и эволюция . 16 (6): 856–867. doi : 10.1093/oxfordjournals.molbev.a026170 . ISSN  0737-4038. PMID  10368962.
  34. ^ Хойл, Грэм (1983). "8. Разнообразие мышечных клеток". Мышцы и их нервный контроль . Нью-Йорк, Нью-Йорк: John Wiley & Sons. стр. 293–299. ISBN 9780471877097.
  35. ^ Андерсон, М.; Финлейсон, Л. Х. (1976). «Влияние упражнений на рост митохондрий и миофибрилл в летательных мышцах мухи цеце, Glossina morsitans». J. Morphol . 150 (2): 321–326. doi :10.1002/jmor.1051500205. S2CID  85719905.

Внешние ссылки