Arabidopsis thaliana , кресс-салат , кресс-салат мышиного уха или арабидопсис — небольшое растение из семейства горчичных ( Brassicaceae ), произрастающее в Евразии и Африке. [2] [3] [4] [5] [6] [7] Обычно встречается вдоль обочин дорог и на нарушенных землях, обычно считается сорняком.
Зимний однолетник с относительно коротким жизненным циклом, A. thaliana — популярный модельный организм в биологии и генетике растений . Для сложного многоклеточного эукариота A. thaliana имеет относительно небольшой геном , составляющий около 135 пар мегануклеотидов . [8] Это было первое растение, геном которого секвенировали, и оно является важным инструментом для понимания молекулярной биологии многих свойств растений, включая развитие цветов и светочувствительность . [9]
Arabidopsis thaliana — однолетнее (реже двулетнее ) растение, обычно вырастающее до 20–25 см в высоту. [6] Листья образуют розетку у основания растения, а также несколько листьев на цветущем стебле . Прикорневые листья от зеленого до слегка пурпурного цвета, длиной 1,5–5 см и шириной 2–10 мм, с цельным или крупнозубчатым краем; стеблевые листья мельче, без черешков, обычно со всем краем. Листья покрыты мелкими одноклеточными волосками, называемыми трихомами . Цветки диаметром 3 мм, собраны в щиток ; их структура такая же, как у типичных Brassicaceae . Плод — кремень длиной 5–20 мм, содержащий 20–30 семян . [10] [11] [12] [13] Корни имеют простую структуру, с единственным главным корнем, который растет вертикально вниз, позже образуя более мелкие боковые корни. Эти корни взаимодействуют с ризосферными бактериями, такими как Bacillus megaterium . [14]
A. thaliana может завершить весь свой жизненный цикл за шесть недель. Центральный стебель, на котором появляются цветы, вырастает примерно через 3 недели, и цветы самоопыляются естественным путем. В лаборатории A. thaliana можно выращивать в чашках Петри, горшках или на гидропонике, под флуоресцентным освещением или в теплице. [15]
Растение было впервые описано в 1577 году в горах Гарц Йоханнесом Талем (1542–1583), врачом из Нордхаузена , Тюрингия , Германия, который назвал его Pilosella siliquosa . В 1753 году Карл Линней переименовал растение в Arabis thaliana в честь Таля. В 1842 году немецкий ботаник Густав Хейнхольд выделил новый род Arabidopsis и поместил растение в этот род. Родовое название Arabidopsis происходит от греческого языка , что означает «похожий на Arabis » (род, к которому Линней первоначально отнес его) .
Тысячи естественных инбредных образцов A. thaliana были собраны со всего его природного и интродуцированного ареала. [16] Эти образцы демонстрируют значительную генетическую и фенотипическую изменчивость, которая может быть использована для изучения адаптации этого вида к различным средам обитания. [16]
A. thaliana произрастает в Европе, Азии и Африке, и его географическое распространение довольно непрерывно от Средиземноморья до Скандинавии и от Испании до Греции . [17] Он также, по-видимому, является родным для тропических альпийских экосистем Африки и, возможно, Южной Африки. [18] [19] Он был завезен и натурализован во всем мире, [20] в том числе в Северной Америке примерно в 17 веке. [21]
A. thaliana легко растет и часто осваивает каменистые, песчаные и известковые почвы. Обычно считается сорняком из-за его широкого распространения на сельскохозяйственных полях, обочинах дорог, железнодорожных путях, пустырях и других нарушенных средах обитания, [20] [22] , но из-за его ограниченной конкурентоспособности и небольшого размера он не классифицируется как сорняк. как злостный сорняк. [23] Как и большинство видов Brassicaceae, A. thaliana съедобна человеком в салате или в приготовленном виде, но не получила широкого распространения в качестве весеннего овоща. [24]
Ботаники и биологи начали исследовать A. thaliana в начале 1900-х годов, а первое систематическое описание мутантов было сделано примерно в 1945 году . [25] A. thaliana в настоящее время широко используется для изучения наук о растениях , включая генетику , эволюцию , популяционную генетику и развитие растений. [26] [27] [28] Хотя растение A. thaliana не имеет прямого значения для сельского хозяйства, модельный организм A. thaliana произвел революцию в нашем понимании генетической, клеточной и молекулярной биологии цветковых растений.
Первый мутант A. thaliana был задокументирован в 1873 году Александром Брауном , описывающим фенотип двойного цветка (мутантный ген, вероятно, был Agamous , клонирован и охарактеризован в 1990 году). [29] Фридрих Лайбах (опубликовавший число хромосом в 1907 году) не предлагал A. thaliana в качестве модельного организма до 1943 года. [30] Его ученица Эрна Рейнхольц опубликовала свою диссертацию по A. thaliana в 1945 году: описание первой коллекции мутантов A. thaliana , которую они создали с помощью рентгеновского мутагенеза . Лайбах продолжил свой важный вклад в исследования A. thaliana , собрав большое количество образцов (часто сомнительно называемых « экотипами »). С помощью Альберта Кранца они были организованы в большую коллекцию из 750 природных образцов A. thaliana со всего мира.
В 1950-х и 1960-х годах Джон Лэнгридж и Джордж Редей сыграли важную роль в превращении A. thaliana в полезный организм для биологических лабораторных экспериментов. Редеи написал несколько научных обзоров, которые способствовали представлению этой модели научному сообществу. Начало деятельности исследовательского сообщества A. thaliana относится к информационному бюллетеню под названием « Информационная служба арабидопсиса » , созданному в 1964 году. Первая Международная конференция по арабидопсису состоялась в 1965 году в Геттингене , Германия.
В 1980-х годах A. thaliana начала широко использоваться в лабораториях по исследованию растений по всему миру. Это был один из нескольких кандидатов, среди которых были кукуруза, петуния и табак. [30] Последние два были привлекательными, поскольку их можно было легко трансформировать с помощью современных технологий, в то время как кукуруза была хорошо зарекомендовавшей себя генетической моделью для биологии растений. Годом прорыва для A. thaliana как модельного растения стал 1986 год, когда были описаны трансформация , опосредованная Т-ДНК , и первый клонированный ген A. thaliana . [32] [33]
Из-за небольшого размера генома и диплоидности Arabidopsis thaliana полезен для генетического картирования и секвенирования — A. thaliana имеет около 157 пар мегабаз [36] и пять хромосом и имеет один из самых маленьких геномов среди растений. [8] Долгое время считалось, что у него самый маленький геном из всех цветковых растений, [37] но теперь считается, что это название принадлежит растениям рода Genlisea , отряда Lamiales , с Genlisea tuberosa , плотоядным растением, имеющим размер генома. около 61 Мбит/с. [38] Это был первый геном растения, секвенированный в 2000 году в рамках Инициативы по геному арабидопсиса . [39] Самая последняя версия генома A. thaliana поддерживается Информационным ресурсом Arabidopsis. [40]
Геном кодирует около 27 600 белоккодирующих генов и около 6500 некодирующих генов. [41] Однако в базе данных Uniprot указано 39 342 белка в эталонном протеоме Arabidopsis . [42] Среди 27 600 генов, кодирующих белки, 25 402 (91,8%) в настоящее время помечены «осмысленными» названиями продуктов, [43] хотя большая часть этих белков, вероятно, плохо изучена и известна только в общих чертах (например, как « ДНК-связывающий белок без известной специфичности»). Uniprot перечисляет более 3000 белков как «неохарактеризованные» как часть эталонного протеома.
Пластом A. thaliana представляет собой молекулу ДНК длиной 154 478 пар оснований, [34] размер, обычно встречающийся у большинства цветковых растений (см. Список секвенированных пластомов ). Он включает 136 генов, кодирующих малые субъединичные рибосомальные белки ( rps , желтый: см. рисунок), большие субъединичные рибосомальные белки ( rpl , оранжевый), гипотетические белки открытой рамки считывания хлоропластов ( ycf , лимон), белки, участвующие в фотосинтетических реакциях (зеленый). или по другим функциям (красный), рибосомальные РНК ( rrn , синий) и транспортные РНК ( trn , черный). [35]
Митохондриальный геном A. thaliana имеет длину 367 808 пар оснований и содержит 57 генов. [44] В митохондриальном геноме Arabidopsis имеется множество повторяющихся участков . Самые крупные повторы регулярно рекомбинируют и изомеризуют геном. [45] Как и большинство митохондриальных геномов растений, митохондриальный геном Arabidopsis существует в виде сложной структуры перекрывающихся разветвленных и линейных молекул in vivo . [46]
Генетическая трансформация A. thaliana является обычным делом с использованием Agrobacterium tumefaciens для переноса ДНК в геном растения. Текущий протокол, получивший название «цветочное погружение», включает простое погружение цветов в раствор, содержащий Agrobacterium , несущий интересующую плазмиду, и детергент. [47] [48] Этот метод позволяет избежать необходимости культуры ткани или регенерации растений.
Коллекции нокаутных генов A. thaliana представляют собой уникальный ресурс для биологии растений, который стал возможен благодаря доступности высокопроизводительной трансформации и финансированию ресурсов геномики. Место вставки Т-ДНК было определено для более чем 300 000 независимых трансгенных линий, причем информация и семена доступны через онлайн-базы данных Т-ДНК. [49] Благодаря этим коллекциям инсерционные мутанты доступны для большинства генов A. thaliana .
Охарактеризованные образцы и мутантные линии A. thaliana служат экспериментальным материалом в лабораторных исследованиях. Наиболее часто используемые фоновые линии — L er (Landsberg erecta ) и Col, или Columbia. [50] Другие фоновые линии, реже цитируемые в научной литературе, — это Ws, или Wassilewskija, C24, Cvi, или Острова Зеленого Мыса, Носсен и т. д. (см., например, [51] ). Наборы близкородственных образцов, названных Col- 0, Col-1 и т.д. были получены и охарактеризованы; в целом, мутантные линии доступны через складские центры, наиболее известными из которых являются Ноттингемский центр запасов арабидопсиса (NASC) [50] и Центр биологических ресурсов арабидопсиса (ABRC) в Огайо, США. [52] Образец Col-0 был выбран Редеи из (необлученной) популяции семян, обозначенной как «Ландсберг», которую он получил от Лайбаха. [53] Колумбия (названная в честь местоположения бывшего учреждения Редеи, Университета Миссури - Колумбия ) была эталонным образцом, секвенированным в Инициативе по геному арабидопсиса . Линия Later (Landsberg erecta) была выбрана Редеи (из-за ее небольшого роста) из популяции Ландсберга, которую он мутагенизировал с помощью рентгеновских лучей. Поскольку коллекция мутантов L er происходит от этой исходной линии, L er -0 не соответствует образцам Ландсберга, обозначавшим La-0, La-1 и т. д.
Формирование трихом инициируется белком GLABROUS1. Нокауты соответствующего гена приводят к голым растениям. Этот фенотип уже использовался в экспериментах по редактированию генов и может представлять интерес в качестве визуального маркера для исследований растений с целью улучшения методов редактирования генов, таких как CRISPR/Cas9. [54] [55]
В 2005 году ученые из Университета Пердью предположили, что A. thaliana обладает альтернативой ранее известным механизмам репарации ДНК , вызывая необычный характер наследования , но наблюдаемый феномен (возврат мутантных копий гена HOTHEAD в состояние дикого типа) Позже было высказано предположение, что это артефакт, поскольку у мутантов наблюдается повышенное скрещивание из-за слияния органов. [56] [57] [58]
Небольшие размеры и быстрый жизненный цикл растения также выгодны для исследований. Специализируясь на яровых эфемерах , он был использован для создания нескольких лабораторных штаммов, которым от прорастания до созревания семян требуется около 6 недель. Небольшой размер растения удобен для выращивания на небольшом пространстве, дает много семян. Кроме того, самоопыляющаяся природа этого растения способствует генетическим экспериментам. Кроме того, поскольку отдельное растение может давать несколько тысяч семян, каждый из вышеперечисленных критериев приводит к тому, что A. thaliana ценится как генетический модельный организм.
Арабидопсис часто является моделью для изучения SNARE в растениях . Это показало, что SNARE активно участвуют в торговле везикулами . Чжэн и др. В 1999 году была обнаружена ловушка арабидопсиса под названиемAtVTI1a , вероятно, важен для Гольджи - торговли вакуолями . Это все еще широко открытое поле, и роль SNARE в незаконном обороте растений остается недостаточно изученной. [59]
ДНК растений уязвима к ультрафиолетовому излучению, и механизмы восстановления ДНК эволюционировали, чтобы избежать или восстановить повреждения генома, вызванные ультрафиолетом . Кайзер и др. [60] показали, что у A. thaliana димеры циклобутан-пиримидина (CPD), индуцированные УФ-светом, могут восстанавливаться за счет экспрессии фотолиазы CPD .
12 мая 2022 года НАСА объявило, что образцы Arabidopsis thaliana были успешно проращены и выращены в образцах лунного реголита . Хотя растения успешно проросли и превратились в рассаду, они были не такими крепкими, как образцы, выращенные в вулканическом пепле в качестве контрольной группы, хотя эксперименты также обнаружили некоторые различия в растениях, выращенных в реголите, в зависимости от места, где были взяты образцы. поскольку A. thaliana , выращенная в реголите, собранном во время Аполлона-12 и Аполлона-17, была более устойчивой, чем те, которые выращены в образцах, взятых во время Аполлона-11 . [61]
A. thaliana тщательно изучалась как модель развития цветов. Развивающийся цветок имеет четыре основных органа — чашелистики , лепестки , тычинки и плодолистики (которые впоследствии образуют пестики ). Эти органы расположены в виде серии мутовок: четыре чашелистика на внешнем обороте, за которыми следуют четыре лепестка внутри него, шесть тычинок и центральная область плодолистика. Гомеотические мутации у A. thaliana приводят к замене одного органа на другой - например, в случае агамной мутации тычинки становятся лепестками, а плодолистики заменяются новым цветком, что приводит к рекурсивно повторяющейся схеме чашелистик-лепесток-лепесток. .
Наблюдения за гомеозисными мутациями привели к формулировке Э. Коэном и Э. Мейеровицем АВС-модели развития цветка . [62] Согласно этой модели, гены идентичности цветочных органов делятся на три класса - гены класса А (которые влияют на чашелистики и лепестки), гены класса В (которые влияют на лепестки и тычинки) и гены класса С (которые влияют на тычинки и плодолистики). ). Эти гены кодируют факторы транскрипции , которые в совокупности вызывают спецификацию тканей в соответствующих регионах во время развития. Хотя эта модель разработана на основе изучения цветков A. thaliana , в целом она применима и к другим цветковым растениям.
Исследования A. thaliana дали значительную информацию о генетике морфогенеза листьев, особенно у растений двудольного типа . [63] [64] Большая часть понимания пришла в результате анализа мутантов в развитии листьев, некоторые из которых были идентифицированы в 1960-х годах, но не анализировались с помощью генетических и молекулярных методов до середины 1990-х годов. Листья A. thaliana хорошо подходят для изучения развития листьев, поскольку они относительно просты и стабильны.
С использованием A. thaliana генетика развития формы листа стала более ясной и была разбита на три стадии: зарождение зачатка листа, установление дорсивентральности и развитие маргинальной меристемы . Зачатки листьев инициируются подавлением генов и белков класса I семейства KNOX (таких как SHOOT APICAL MERISTEMLESS ). Эти белки KNOX класса I непосредственно подавляют биосинтез гиббереллина в зачатке листа. Было обнаружено, что многие генетические факторы участвуют в подавлении этих генов KNOX класса I в зачатках листьев (таких как ASYMMETRIC LEAVES1, BLADE-ON-PETIOLE1 , SAWTOOTH1 и т. д.). Таким образом, при таком подавлении уровни гиббереллина повышаются и зачаток листа инициирует рост.
Установление дорсивентральности листа важно, поскольку дорсальная (адаксиальная) поверхность листа отличается от вентральной (абаксиальной) поверхности. [65]
A. thaliana хорошо подходит для анализа с помощью световой микроскопии . Молодые саженцы в целом и их корни в частности относительно полупрозрачны. Это, вместе с их небольшим размером, облегчает визуализацию живых клеток с использованием как флуоресцентной , так и конфокальной лазерной сканирующей микроскопии . [66] Путем влажной установки саженцев в воду или в питательную среду растения можно визуализировать неинвазивно, что устраняет необходимость фиксации и секционирования и позволяет проводить покадровые измерения. [67] Конструкции флуоресцентных белков могут быть введены путем трансформации . Стадию развития каждой клетки можно определить по ее местоположению в растении или с помощью флуоресцентных белковых маркеров , что позволяет провести детальный анализ развития .
Фоторецепторы- фитохромы A, B, C, D и E опосредуют фототропную реакцию на красный свет. Понимание функции этих рецепторов помогло биологам растений понять сигнальные каскады, которые регулируют фотопериодизм , прорастание , деэтиоляцию и избегание тени у растений. Гены FCA , [68] fy , [68] fpa , [68] LUMINIDEPENDENS ( ld ), [68] Fly , [68] fve [68] и FLOWERING LOCUS C ( FLC ) [69] [70] участвуют в фотопериод , запускающий цветение и яровизацию . В частности, Ли и др., 1994 г. обнаружили, что ld производит гомеодомен , а Blazquez и др., 2001 г., что fve производит повтор WD40 . [68]
Белок UVR8 обнаруживает ультрафиолетовый свет B и опосредует реакцию на эту длину волны, повреждающую ДНК.
A. thaliana широко использовалась при изучении генетических основ фототропизма , выравнивания хлоропластов , апертуры устьиц и других процессов, происходящих под влиянием синего света. [71] Эти черты реагируют на синий свет, который воспринимается фототропиновыми световыми рецепторами. Арабидопсис также сыграл важную роль в понимании функций другого рецептора синего света, криптохрома , который особенно важен для захвата света и контроля циркадных ритмов растений . [72] Когда наступление темноты необычно рано, A. thaliana снижает метаболизм крахмала на величину, которая фактически требует деления . [73]
Световая реакция была обнаружена даже у корней, которые ранее считались в значительной степени нечувствительными к свету. Хотя гравитропная реакция корневых органов A. thaliana является их преобладающей тропической реакцией, образцы, обработанные мутагенами и отобранные по отсутствию гравитропного действия, показали отрицательную фототропную реакцию на синий или белый свет и положительную реакцию на красный свет, что указывает на то, что корни также проявляют положительный фототропизм. [74]
В 2000 году доктор Джанет Браам из Университета Райса генетически сконструировала A. thaliana , чтобы она светилась в темноте при прикосновении. Эффект был виден сверхчувствительным камерам. [75] [ нужен лучший источник ]
Многочисленные усилия, в том числе проект «Светящееся растение» , были направлены на использование A. thaliana для увеличения интенсивности свечения растений до коммерчески жизнеспособного уровня.
В 1990 году Джанет Браам и Рональд В. Дэвис определили, что A. thaliana проявляет тигмоморфогенез в ответ на ветер, дождь и прикосновение. [76] Было обнаружено , что четыре или более генов, индуцированных прикосновением, у A. thaliana регулируются такими стимулами. [76] В 2002 году Массимо Пильуччи обнаружил, что A. thaliana развивает различные модели ветвления в ответ на длительное воздействие ветра, что является проявлением фенотипической пластичности . [77]
2 января 2019 года китайский спускаемый аппарат «Чанъэ-4» доставил A. thaliana на Луну. [78] Небольшая консервная банка микрокосма в посадочном модуле содержала A. thaliana , семена картофеля и яйца тутового шелкопряда . Поскольку растения будут обеспечивать шелковичных червей кислородом, а шелковичные черви, в свою очередь, будут обеспечивать растения необходимым углекислым газом и питательными веществами через свои отходы, [79] исследователи оценят, успешно ли растения осуществляют фотосинтез , растут и цветут в лунной среде. [78]
Талианин представляет собой тритерпен корня арабидопсиса . [80] Поттер и др. , 2018 обнаружил, что синтез индуцируется комбинацией как минимум двух фактов: клеточно-специфичных факторов транскрипции (ТФ) и доступности хроматина . [80]
Понимание того, как растения приобретают устойчивость, важно для защиты мирового производства продуктов питания и сельскохозяйственной отрасли. Многие модельные системы были разработаны для лучшего понимания взаимодействия между растениями и патогенами бактерий , грибков , оомицетов , вирусов и нематод . A. thaliana стала мощным инструментом для изучения субдисциплины патологии растений , то есть взаимодействия между растениями и болезнетворными патогенами .
Использование A. thaliana привело ко многим прорывам в развитии знаний о том, как растения проявляют устойчивость к болезням . Причина, по которой большинство растений устойчивы к большинству патогенов, заключается в устойчивости, не связанной с хозяином: не все патогены заражают все растения. Примером использования A. thaliana для определения генов, ответственных за нехозяинную устойчивость, является Blumeria graminis , возбудитель мучнистой росы трав. Мутанты A. thaliana были созданы с использованием мутагена этилметансульфоната и подвергнуты скринингу для выявления мутантов с повышенной инфицированностью B. graminis . [82] [83] [84] Мутанты с более высокой частотой инфицирования называются PEN- мутантами из-за способности B. graminis проникать в A. thaliana и запускать болезненный процесс. Позже гены PEN были картированы для идентификации генов, ответственных за нехозяинную устойчивость к B. graminis .
В общем, когда растение подвергается воздействию патогена или непатогенного микроба, возникает первоначальный ответ, известный как иммунитет, запускаемый PAMP (PTI), потому что растение обнаруживает консервативные мотивы, известные как молекулярные паттерны, связанные с патогеном (PAMP). [85] Эти PAMP обнаруживаются специализированными рецепторами хозяина, известными как рецепторы распознавания образов (PRR), на поверхности растительных клеток.
Наиболее охарактеризованным PRR у A. thaliana является FLS2 (Flagellin-Sensing2), который распознает бактериальный флагеллин , [86] [87] специализированную органеллу, используемую микроорганизмами для обеспечения подвижности, а также лиганд flg22 , который включает 22 аминокислоты, распознаваемые FLS2. Открытию FLS2 способствовала идентификация экотипа A. thaliana , Ws-0, который не смог обнаружить flg22, что привело к идентификации гена, кодирующего FLS2. FLS2 демонстрирует поразительное сходство с XA21 риса, первым PRR, выделенным в 1995 году . [ нужна цитация ] И флагеллин, и УФ-С действуют одинаково, увеличивая гомологичную рекомбинацию у A. thaliana , как продемонстрировали Molinier et al. 2006. Помимо этого соматического эффекта, они обнаружили, что он распространяется и на последующие поколения растения . [88]
Второй PRR, рецептор EF-Tu (EFR), идентифицированный у A. thaliana , распознает бактериальный белок EF-Tu , прокариотический фактор элонгации, используемый в синтезе белка , а также используемый в лаборатории лиганд elf18. [89] Используя трансформацию, опосредованную Agrobacterium , метод, который использует преимущества естественного процесса, с помощью которого Agrobacterium переносит гены в растения-хозяева, ген EFR был трансформирован в Nicotiana benthamiana , растение табака, которое не распознает EF-Tu, тем самым позволяя распознавать бактериальный EF-Tu [90] , тем самым подтвердив, что EFR является рецептором EF-Tu.
И FLS2, и EFR используют схожие пути передачи сигнала для инициации PTI. A. thaliana сыграла важную роль в анализе этих путей, чтобы лучше понять регуляцию иммунных ответов, наиболее заметным из которых является каскад митоген-активируемых протеинкиназ (MAP-киназы). Последующие реакции PTI включают отложение каллозы , окислительный взрыв и транскрипцию генов, связанных с защитой. [91]
ПТИ способен бороться с патогенами неспецифическим способом. Более сильным и более специфичным ответом у растений является эффекторно-запускаемый иммунитет (ETI), который зависит от распознавания эффекторов патогена, белков, секретируемых патогеном, которые изменяют функции хозяина, генами устойчивости растений (R-генами). , часто описываемый как связь «ген за геном» . Это распознавание может происходить прямо или косвенно через охранный белок в гипотезе, известной как защитная гипотеза . Первым R-геном, клонированным у A. thaliana, был RPS2 (устойчивость к Pseudomonas syringae 2), ответственный за узнавание эффектора avrRpt2. [92] Бактериальный эффектор avrRpt2 доставляется в A. thaliana через систему секреции типа III P. syringae pv. штамм томатов DC3000 . Узнавание avrRpt2 с помощью RPS2 происходит через защитный белок RIN4, который расщепляется. [ необходимы разъяснения ] Распознавание эффектора патогена приводит к драматическому иммунному ответу, известному как реакция гиперчувствительности , при которой инфицированные растительные клетки подвергаются клеточной гибели, чтобы предотвратить распространение патогена. [93]
Системная приобретенная устойчивость (SAR) – еще один пример устойчивости, который лучше изучен у растений благодаря исследованиям, проведенным на A. thaliana . Бензотиадиазол (БТГ), аналог салициловой кислоты (СК), исторически использовался в качестве противогрибкового соединения в сельскохозяйственных культурах. Было показано, что БТГ, как и СК, индуцирует САР у растений.Инициирование пути SAR было впервые продемонстрировано у A. thaliana , у которого повышенные уровни SA распознаются неэкспрессором генов PR 1 ( NPR1 ) [94] из-за окислительно-восстановительных изменений в цитозоле, приводящих к снижению NPR1 . NPR1 , который обычно существует в мультиплексном (олигомерном) состоянии, при восстановлении становится мономерным (единственным звеном). [95] Когда NPR1 становится мономерным, он перемещается в ядро, где взаимодействует со многими факторами транскрипции TGA и способен индуцировать гены, связанные с патогеном, такие как PR1 . [96] Другим примером SAR могут быть исследования, проведенные с трансгенными растениями табака, которые экспрессируют бактериальную салицилатгидроксилазу, ген nahG, для его экспрессии требуется накопление SA [97]
Внутриклеточный транспорт , хотя и не имеет прямого иммунологического характера, влияет на восприимчивость путем включения (или обмана) частиц патогена. Например, родственный Dynamin ген белка 2b/drp2b помогает перемещать инвагинированный материал в клетки, при этом некоторые мутанты еще больше повышают вирулентность PstDC3000 . [98]
На протяжении всей жизни растения поражаются множеством патогенов . В ответ на присутствие патогенов у растений на поверхности клеток появились рецепторы для обнаружения патогенов и реагирования на них. [99] Arabidopsis thaliana — модельный организм, используемый для определения специфических защитных механизмов устойчивости растений к патогенам. [100] Эти растения имеют специальные рецепторы на поверхности клеток, которые позволяют обнаруживать патогены и запускать механизмы подавления роста патогенов. [100] Они содержат два рецептора, FLS2 (бактериальный рецептор флагеллина) и EF-Tu (бактериальный белок EF-Tu), которые используют пути передачи сигнала для инициирования пути реакции на заболевание. [100] Этот путь приводит к распознаванию патогена, вызывая гибель инфицированных клеток, чтобы остановить распространение патогена. [100] Показано, что растения с рецепторами FLS2 и EF-Tu обладают повышенной приспособленностью в популяции. [97] Это привело к убеждению, что устойчивость растений к патогенам является эволюционным механизмом, который создавался на протяжении поколений, чтобы реагировать на динамичные условия окружающей среды, такие как усиление нападения хищников и экстремальные температуры. [97]
A. thaliana также использовалась для изучения SAR. [101] Этот путь использует бензотиадиазол, химический индуктор, для индукции транскрипционных факторов, мРНК, генов SAR. Такое накопление факторов транскрипции приводит к ингибированию генов, связанных с патогеном. [101]
Взаимодействие растений и патогенов важно для понимания того, как растения эволюционировали для борьбы с различными типами патогенов, которые могут на них влиять. [97] Различия в устойчивости растений в разных популяциях обусловлены различиями в факторах окружающей среды. Растения, у которых развилась устойчивость, будь то общая вариация или вариация SAR, способны жить дольше и сдерживать некроз своих тканей (преждевременную смерть клеток), что приводит к лучшей адаптации и приспособленности для популяций, находящихся в быстром развитии. меняющаяся среда. [97] В будущем сравнение патосистем диких популяций + их совместно эволюционировавших патогенов с дико-дикими гибридами известного происхождения может выявить новые механизмы балансирующего отбора . В теории истории жизни мы можем обнаружить, что A. thaliana сохраняет определенные аллели из-за плейтропии между эффектами растительного патогена и другими признаками, как у домашнего скота. [102]
Исследования A. thaliana показывают, что семейство белков-регуляторов иммунитета EDS1 в целом эволюционировало совместно с семейством нуклеотидсвязывающих рецепторов с богатыми лейцином повторами (NLR) CCHELO . Сяо и др. 2005 показали, что иммунитет к мучнистой росе , опосредованный RPW8 A. thaliana ( который имеет домен CC HELO ), зависит от двух членов этого семейства: самого EDS1 и PAD4 . [103]
УСТОЙЧИВОСТЬ К PSEUDOMONAS SYRINGAE 5/RPS5 представляет собой белок устойчивости к болезням , который защищает AvrPphB SUSCEPTIBLE 1 /PBS1 . PBS1 , как следует из названия, является мишенью AvrPphB , эффектора, продуцируемого Pseudomonas syringae pv. фазеоликола . [104]
Продолжающиеся исследования A. thaliana проводятся на Международной космической станции Европейским космическим агентством . Целью является изучение роста и размножения растений от семени к семени в условиях микрогравитации . [105] [106]
Описаны устройства типа «растение на чипе», в которых ткани A. thaliana можно культивировать в условиях полу- in vitro . [107] Использование этих устройств может помочь понять направление пыльцевой трубки и механизм полового размножения A. thaliana.
Исследователи из Университета Флориды смогли вырастить это растение в лунной почве из Моря Спокойствия . [108]
A. thaliana — преимущественно самоопыляющееся растение, уровень ауткроссинга которого оценивается менее чем в 0,3%. [109] Анализ общегеномной картины неравновесия по сцеплению показал, что самоопыление возникло примерно миллион лет назад или больше. [110] Мейозы, которые приводят к самоопылению, вряд ли приведут к значительной полезной генетической изменчивости. Однако эти мейозы могут обеспечить адаптивное преимущество рекомбинационного восстановления повреждений ДНК во время образования зародышевых клеток в каждом поколении. [111] Такого преимущества могло быть достаточно, чтобы обеспечить долгосрочное сохранение мейозов, даже если за ними последовало самооплодотворение. Физический механизм самоопыления у A. thaliana заключается в автогамии перед цветением, при которой оплодотворение происходит в основном до раскрытия цветка.
{{cite journal}}
: CS1 maint: числовые имена: список авторов ( ссылка )