stringtranslate.com

Кристаллизация вируса

Сравнение кристаллизации соли (слева) и вируса табачной мозаики (справа), наблюдаемое с помощью электронного микроскопа .

Кристаллизация вирусов — это перегруппировка вирусных компонентов в твердые кристаллические частицы. [1] Кристаллы состоят из тысяч неактивных форм определенного вируса, расположенных в форме призмы . [ 2] Неактивная природа вирусных кристаллов дает иммунологам преимущества для эффективного анализа структуры и функций вирусов. Понимание таких характеристик было улучшено благодаря усовершенствованию и разнообразию технологий кристаллизации. Вирусные кристаллы имеют глубокую историю широкого применения в эпидемиологии и вирусологии и по сей день остаются катализатором для изучения вирусных моделей с целью смягчения потенциальных вспышек заболеваний .

Историческая справка

До 20 века

Кристаллы вирусов берут свое начало в конце 19 века, когда первые открытия кристаллизации белков были сделаны немецкими биологами Риттхаузеном и Осборном , в основном для гемоглобина у червей и рыб . [3] Эти ранние наблюдения в первую очередь рассматривались как лабораторные курьезы. То, что начиналось как простые курьезы, превратилось в необходимость очистки и выделения белков для более четкой визуализации, что привело к кристаллизации белков . Методы кристаллизации белков в конечном итоге были введены в вирусологию после появления вирусов табачной мозаики (ВТМ) , которые были первыми из когда-либо обнаруженных вирусов. [4]

1930-е годы

Достижение четкой визуализации вирусов с использованием ограниченной технологии, такой как микроскопия, было затруднено из-за их относительно миниатюрных размеров, при этом наименьший из вирусов имел диаметр около 20 нм. [5] Поэтому микроскопия была относительно сложной областью, с альтернативными методами наблюдения, пользовавшимися большим спросом. Вирусы TMV были впервые кристаллизованы Уэнделлом Стэнли , который продемонстрировал, что вирусы TMV сохраняли свою инфекционность даже в кристаллической форме. [3] Именно в это время исследователи обнаружили, что кристаллизованные вирусы (подобно белкам и другим органическим молекулам) могут дифрагировать рентгеновские лучи, что подразумевает сложный структурный механизм в вирусных телах. Этот прорыв послужил основой для расширения вирусологии в рентгеновскую кристаллографию . [3]

1950-е, 1960-е

Кристаллы вируса табачной мозаики сателлитов (STMV) с различной геометрией позволяют использовать различные перспективы визуализации. Как орторомбические кристаллы (слева), так и кубические кристаллы (справа) имеют эквивалентные размеры. [6]

Рентгеновская кристаллография была разработана в середине 20-го века усилиями ученых по изучению характеристик кристаллизованных вирусов в лабораторных исследованиях. Среди них была Дороти Ходжкин , эксперт в области молекулярной микробиологии, которая определила структуру ВТМ с помощью вирусных кристаллов, которые могли преломлять рентгеновские лучи. [7] Это открытие послужило основой для непрерывного совершенствования методов вирусной кристаллографии, что впоследствии привело к определению множества других вирусных структур , включая полиовирус , риновирус и ретровирус человека (ВИЧ) . Такие достижения дали ценную информацию о механизмах вирусной инфекции и репликации , тем самым способствуя разработке противовирусных препаратов и вакцин в конце 20-го века.

1990-е годы-сегодня

К концу 20-го века ученые поняли, что вирусы, окруженные толстыми липидными мембранами, не способны образовывать упорядоченные кристаллы. [3] Такие вирусы затрудняли правильное получение результатов рентгеновской дифракции . [3] В ответ на это появилась криогенная электронная микроскопия (крио-ЭМ) как новый альтернативный метод изучения вирусных структур . Крио-ЭМ позволяет ученым визуализировать вирусы с разрешением, близким к атомарному, без кристаллизации . [3] Сочетание рентгеновской кристаллографии и крио-ЭМ внесло вклад в область морфологии вирусов и поведения в иммунной системе . Такие достижения в области технологий не только пролили свет на вирусные характеристики, но и произвели революцию в вирусологии в целом и продолжают оставаться предметом пристального внимания по сей день.

Структура и поведение вируса

Вирусы определяются как «облигатные внутриклеточные паразиты», которые содержат ДНК или РНК в ядре вирусного генома и заключены в защитную белковую оболочку. [8] Как правило, ядро ​​заключено в капсидные белки в однослойной или двухслойной структуре. [8] Некоторые вирусы, такие как некоторые коронавирусы , также образуют большую липидную мембрану, известную как оболочка , когда обнаруживаются у определенных хозяев. [9] Эта мембрана состоит из липидного бислоя, окружающего слой мембраносвязанных белков, с поверхностными гликопротеинами или шиповидными белками, выступающими из внеклеточного аспекта. Такая вирусная оболочка обычно приобретается при перемещении через плазму или внутриклеточные матрицы организма-хозяина и может различаться по составу в зависимости от содержания липидов мембраны клетки-хозяина и белков клетки-хозяина. [8] Структура, которая должна быть отмечена для кристаллизации и идентификации, — это структура капсидного белка . Вирусы имеют в основном икосаэдрическую структуру, а вторая по распространенности организация — спиральная , пружиноподобная структура. [10] Структуры вирусного капсида организованы таким образом, чтобы максимально повысить эффективность переноса определенной длины цепи РНК или ДНК. [11] Кинетика белков капсида также может играть роль в его организации, хотя это еще не полностью выяснено. [12] Симметрия и геометрия вирусов облегчается кристаллизацией вирусов (и, в частности, субъединиц их белков капсида) с целью изучения белок -белковых взаимодействий ; прокси для свойств и функций капсидов. [1]

Спиральная структура капсида

Схематическая модель, демонстрирующая спиральную структуру капсида вируса табачной мозаики (ВТМ).

Спиральная структура капсида в значительной степени зависит от длины вирусного генома РНК или ДНК . [11] Из-за природы упаковки идентичных асимметричных белков без вращательной симметрии для минимизации нарушения белок-белковых связей в специфических связывающих и рецепторных участках, структуры капсидного белка, состоящие из повторения идентичных белковых субъединиц, обязательно выстраиваются в решетку, которая сворачивается, чтобы заключить свое содержимое в спиральную структуру, очень похожую на естественную спиральную структуру, наблюдаемую в ДНК . [11] Эта результирующая спиральная структура возникает из-за геометрических ограничений и симметричной природы, необходимых для массива белковых субсборок и его белок-белковых взаимодействий. [11] Было обнаружено, что вирус табачной мозаики , изученный Каспаром и Клугом в их исследовании кристаллизации 1962 года, состоит из «агрегата из 2–5 капсидных белковых субъединиц», организованных в спиральную структуру капсида. [11]

Икосаэдрическая структура капсида

(Слева) Ленточная диаграмма , показывающая асимметричный структурный агрегат капсида вируса ящура (FMDV) , повторяющуюся субъединицу, которая составляет его сферическую капсидную структуру. (Справа) Изображение трехмерной икосаэдрической симметрии капсида. Белковые цепи VP1, VP2, VP3 и VP4 по отдельности происходят от более мелких структурных белковых компонентов капсида.

Структура икосаэдрического капсида в значительной степени зависит от энергетической эффективности и геометрических ограничений упаковки генома. [11] Подобно ограничениям, которые придают симметричную природу спиральной капсидной структуре, определенные геометрические ограничения естественным образом и обязательно применяются к возможным конформациям оболочки. Структура икосаэдрического капсида является наиболее распространенной компоновкой из-за симметрии 2-3-5 ее одноименной формы, что позволяет использовать до наибольшего числа (60 единиц) треугольных «идентичных симметричных единиц» для построения «сферической» оболочки, чтобы заключить в себя некоторый заданный материал в любом заданном размере. [12] С точки зрения оптимизации соотношения количества требуемых белковых субсборок и площади заключенной поверхности, икосаэдрическая симметрия снова оказывается наименьшей и наиболее эффективной симметрией для принятия. [11] Икосаэдрическая структура капсида является оптимальной конструкцией для материала оболочки благодаря ее геометрическим и симметричным свойствам, что обеспечивает ее эффективную конструкцию, которая естественным образом и обязательно принимается большинством вирусных линий. [11] Симметричная и высокоупорядоченная природа большинства вирусных кристаллов может быть отнесена к присущей симметрии икосаэдрической структуры капсида и ее белок-белковым взаимодействиям. [1]

Вирусное поведение

Вирусы обычно вторгаются в клетки-хозяева и захватывают их в качестве метода репликации. [13] После заражения клеточные процессы клетки-хозяина нарушаются , поскольку вирусно-кодируемые белки производятся в результате репликации и размножения вируса. [13] Этот процесс состоит из белок-белковых взаимодействий первичной и третичной структуры капсида и является предметом пристального внимания для лучшего понимания молекулярных и биохимических механизмов поведения вируса. [1]

Процедура кристаллизации

Целью кристаллизации является выращивание кристаллов вируса подходящего размера и высокого качества для их правильного считывания в процессе визуализации. [1] Искусственная кристаллизация в лаборатории обычно выполняется в четыре основных этапа:

Инженер НАСА Майкл Хопкинс загружает пластины для кристаллографии белков подготовленными растворами белков для эксперимента по выращиванию кристаллов белков в реальном времени на этапе II [14]

1. Размножение

Вирусы определенных видов помещаются в инкубаторы со здоровыми клетками, что имитирует идеальные условия для их правильного функционирования. [3] При наличии здоровых клеток вирусы прикрепляются и подвергаются репликации, образуя большие образцы. [13]

2. Экстракция и очистка (выделение)

Реплицированные вирусные частицы извлекаются, после чего следует очистка для удаления нежелательных веществ, таких как мусор. [3] Этот процесс изолирует вирусные частицы и оставляет их в растворах с высокой концентрацией. [3] Затем они подвергаются центрифугированию , которое отделяет жидкий супернатант от твердого вирусного осадка . [3] Этот процесс повторяется до тех пор, пока осадок не уплотнится и не превратится в вирусный осадок. [3]

3. Зародышеобразование

Концентрированные вирусные гранулы обрабатываются реагентами, которые позволяют им образовывать небольшие кристаллические ядра. Такие стадии называются зародышеобразованием , критическим процессом на ранних стадиях кристаллизации, где небольшие кластеры белков оболочки объединяются для формирования строительных блоков внешней структуры капсида. [15] Некоторые белки оболочки заряжены и производят электростатическое отталкивание , которое необходимо преодолеть с помощью гидрофобных взаимодействий для кристаллизации капсида. [15] Гидрофобные взаимодействия относятся к тенденции неполярных областей молекул, которые прочно связываются друг с другом в водной среде, но минимизируют контакт с водой. [16]

4. Рост кристаллов

Кристаллы вируса обычно выращивают in vitro после того, как сформированы начальные ядра кристалла. [17] На рост кристаллов вируса могут влиять различные факторы, такие как температура , pH и наличие определенных добавок или осадителей в растворе. [3] В случае успеха вирусные частицы выстраиваются и связываются друг с другом в регулярную структуру, образуя повторяющиеся трехмерные решетки . [3] Процесс роста может занять от нескольких часов до нескольких дней, в зависимости от вируса и условий кристаллизации.

Методы визуализации

Кристаллические структуры вирусных кристаллов подвергаются визуализации для получения визуальных результатов. Они разработаны для получения информации о микроскопических расположениях в иммобилизованных вирусных частицах. Визуализация со временем улучшилась, поскольку достижения в области рентгеновских источников, детекторов и компьютерных программ визуализации повысили осуществимость таких процедур, как рентгеновская кристаллография и криогенная электронная микроскопия . [18]

рентгеновская кристаллография

Здесь показана структура вириона энтеробактериального фага PRD1, типа тективируса из рода Alphatectivirus, определенная с помощью рентгеновской кристаллографии в виде 2-кратной симметрии. [19] Кристаллы вируса усиливают слабые сигналы от рассеяния дифрагированных рентгеновских лучей отдельными атомами и вирусными частицами. [20] Точные положения атомов и расположение белков капсида генерируются с высоким разрешением.

Рентгеновская кристаллография использует способность вирусных кристаллов дифрагировать электромагнитные волны при воздействии. [21] Дифракция в данном случае относится к интерференции рассеянных волн, испускаемых в разных направлениях через решетку. [21] Дифракционные картины зависят от внутреннего порядка внутри кристалла. [3] Высокий внутренний порядок с плотным расположением создает более обширные дифракционные картины с более высоким разрешением, что позволяет более точно определять атомные позиции. [3] Рентгеновский дифрактометр используется для измерения способности кристалла дифрагировать волны при воздействии источника рентгеновского излучения. [21]

Рентгеновская кристаллография не гарантирует точной работы для всех вирусных кристаллов. Например, вирусные кристаллы макромолекулярного размера имеют существенные ограничения по сравнению с более мелкими кристаллами. [3] Они мягче и более восприимчивы к повреждениям, и могут легко распадаться под действием высокой радиации. [3] Это происходит из-за значительного количества жидкости между молекулами, в среднем примерно 50% растворителя . [3] Растворитель состоит из воды и других небольших молекул, которые свободно диффундируют через междоузлия кристалла. [3] Такое нежелательное присутствие каналов, заполненных растворителем, внутри макромолекулярных кристаллов затрудняет считывание рентгеновских дифракционных картин. [3]

Криогенная электронная микроскопия (Крио-ЭМ)

Криогенная электронная микроскопия (Cryo-EM) использует кинетику пучка электронов для обнаружения и получения изображения образца. [22] Крио-EM обеспечивает общую улучшенную производительность по сравнению с традиционным световым микроскопом благодаря более высокому разрешению и увеличению. [22]

В крио-ЭМ кристаллизация не является обязательной и позволяет напрямую наблюдать биологические образцы, такие как инфицированные клетки-хозяева и активные вирусы. [17] Это обеспечивает значительные преимущества по сравнению с рентгеновской кристаллографией при исследовании сложных вирусных структур, которые создают проблемы во время кристаллизации. Это особенно полезно при наблюдении за конформационными изменениями вируса, чего трудно достичь с помощью кристаллизации. [17]

Однако, несмотря на то, что крио-ЭМ может обеспечить более высокое разрешение по сравнению со световыми микроскопами , этого недостаточно, чтобы превзойти разрешение рентгеновской кристаллографии. [17] Рентгеновская кристаллография по-прежнему остается наиболее подходящим подходом при учете структур атомного уровня и микромолекулярных взаимодействий. [17] Поэтому исследователи объединяют крио-ЭМ и рентгеновскую кристаллизацию как методы преодоления ограничений друг друга.

Достижения в области технологий обработки изображений

В типичном крио-ЭМ- эксперименте задействовано пять основных этапов : подготовка образца, подготовка сетки, сбор данных, обработка изображений и определение структуры. Реконструкция трехмерной карты плотности выводится на основе ее двухмерной модели, что позволяет более четко визуализировать структуру для лучшего понимания ее морфологии.

Недавние достижения в криоэлектронной микроскопии (крио-ЭМ) расширили пределы, в которых исследователи могут раскрыть морфологию вируса. Крио-ЭМ начала использовать прямые электронные детекторы (DED), которые включают прямое преобразование выброшенных электронов в электрические сигналы, тем самым повышая скорость и осуществимость процедуры визуализации. [23] Ограничения при изучении больших молекулярных комплексов были преодолены с введением криоэлектронной томографии (крио-ЭТ) . Это альтернатива крио-ЭМ, которая позволяет визуализировать окружающую среду и взаимодействие за пределами клетки-хозяина, в которой обитает вирус. [23] Такие достижения продвинули понимание активности вируса в среде его клетки-хозяина, а не только сосредоточение внимания на самом вирусе. [23]

Достижения в рентгеновской кристаллографии под названием макромолекулярной кристаллографии (МКР) также были вовлечены в фазу обновления технологии изображения. [18] МКР считается новой научной дисциплиной, которая адаптирует передовые инструменты и автоматизированные процедуры. Это осуществляется с помощью синхротронных источников, быстрых детекторов и инновационных методов доставки образцов для изучения динамических характеристик макромолекул. [18] Такая техника, которая наблюдает динамику вируса, а не его статический состав, называется кристаллографией с временным разрешением . [18]

Кристаллография с временным разрешением облегчается с помощью рентгеновских лазеров на свободных электронах (XFEL) , которые представляют собой новое поколение источников света, пришедших на смену традиционному понятию синхротронного излучения , поскольку они позволяют лучше контролировать мощность света и диапазон. [18] [24] Несмотря на быстрое развитие крио-ЭМ, не требующей кристаллизации, MX и XFEL позволяют кристаллизации вирусов оставаться актуальной и продолжать играть важную роль в предоставлении деталей вирусов на атомном уровне. [18]

Неоткрытые области

Являются ли вирусы «живыми» или нет, является предметом ожесточенных споров во всем мире. Хотя вирусы демонстрируют некоторые формы поведения, которые можно охарактеризовать как «живые», такие как их способность к репликации и эволюции, у них отсутствуют некоторые существенные черты, обычно связанные с жизнью, такие как клеточная структура и независимый метаболизм. [25] Преодоление ограничений кристаллизации вирусов может предоставить важные сведения о неизвестных молекулярных взаимодействиях, которые определяют их поведение, подобное поведению жизни, тем самым позволяя сравнивать их характеристики с характеристиками, принадлежащими биологическому царству .

Перспективы на будущее

С учетом значительных усовершенствований, достигнутых в рентгеновской кристаллографии и криоэлектронной микроскопии , исследователи снова переключают свое внимание на процесс выращивания кристаллов , поскольку они остаются важными проблемами, накладывая ограничения на изменчивость размера кристаллов. Требуется больше внимания на преодоление ограничений макромолекулярных кристаллов, поскольку спрос на них растет среди исследователей. [26] Многие вирусные кристаллы попадают в эту категорию, поэтому, как говорят, традиционная технология кристаллизации получит больше внимания в будущем. [26]

Ссылки

  1. ^ abcde Sehnke, Paul C.; Harrington, Melissa; Hosur, MV; Li, Yunge; Usha, R.; Craig Tucker, R.; Bomu, Wu; Stauffacher, Cynthia V.; Johnson, John E. (июль 1988 г.). «Кристаллизация вирусов и вирусных белков». Journal of Crystal Growth . 90 (1–3): 222–230. Bibcode :1988JCrGr..90..222S. doi :10.1016/0022-0248(88)90319-3. ISSN  0022-0248.
  2. ^ Эриксон, Джон В.; Франкенбергер, Элизабет А.; Россманн, Майкл Г.; Фоут, Г. Шей; Медаппа, К. К.; Рюкерт, Роланд Р. (февраль 1983 г.). «Кристаллизация вируса простуды, человеческого риновируса 14: «изоморфизм» с кристаллами полиовируса». Труды Национальной академии наук . 80 (4): 931–934. Bibcode : 1983PNAS...80..931E. doi : 10.1073/pnas.80.4.931 . ISSN  0027-8424. PMC 393501. PMID 6302674  . 
  3. ^ abcdefghijklmnopqrst McPherson, Alexander; Gavira, Jose A. (2014-01-01). "Введение в кристаллизацию белков". Acta Crystallographica Section F . 70 (1): 2–20. Bibcode :2014AcCrF..70....2M. doi :10.1107/S2053230X13033141. ISSN  2053-230X. PMC 3943105 . PMID  24419610. Архивировано из оригинала 2024-03-27 . Получено 2024-03-27 . 
  4. ^ Лекок, Эрве (октябрь 2001 г.). «Обнаруженный вирус премьеры, вирус мозаики табака: 1892 или 1898?». Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series III - Sciences de la Vie (на французском языке). 324 (10): 929–933. дои : 10.1016/S0764-4469(01)01368-3. PMID  11570281. Архивировано из оригинала 10 апреля 2024 г. Проверено 27 марта 2024 г.
  5. ^ Лаутен, Дженнифер (2016), «Структура и классификация вируса», Essential Human Virology , Elsevier: 19–29, doi : 10.1016/b978-0-12-800947-5.00002-8, ISBN 978-0-12-800947-5, ЧМЦ  7150055
  6. ^ Макферсон, Александр; ДеЛукас, Лоуренс Джеймс (2015-09-03). «Микрогравитационная кристаллизация белка». npj Microgravity . 1 (1): 15010. doi :10.1038/npjmgrav.2015.10. ISSN  2373-8065. PMC 5515504 . PMID  28725714. 
  7. Dodson, Guy (декабрь 2002 г.). «Dorothy Mary Crowfoot Hodgkin, OM 12 мая 1910 г. — 29 июля 1994 г.». Биографические мемуары членов Королевского общества . 48 : 179–219. doi : 10.1098/rsbm.2002.0011. Архивировано из оригинала 20 октября 2022 г. Получено 27 марта 2024 г. — через JSTOR.
  8. ^ abc Gelderblom, Hans R. (1996), Baron, Samuel (ред.), "Структура и классификация вирусов", Medical Microbiology (4-е изд.), Галвестон (Техас): Медицинское отделение Техасского университета в Галвестоне, ISBN 978-0-9631172-1-2, PMID  21413309, заархивировано из оригинала 2024-04-24 , извлечено 2024-03-27
  9. ^ Fauquet, Claude M. (1999), «Таксономия, классификация и номенклатура вирусов», Энциклопедия вирусологии , Elsevier, стр. 1730–1756, doi :10.1006/rwvi.1999.0277, ISBN 978-0-12-227030-7, PMC  7149719 , получено 2024-03-27
  10. ^ Лаутен, Дженнифер (2016), «Структура и классификация вируса», Essential Human Virology , Elsevier: 19–29, doi : 10.1016/b978-0-12-800947-5.00002-8, ISBN 978-0-12-800947-5, PMC  7150055 , получено 2024-03-27
  11. ^ abcdefgh Каспар, ДЛД; Клуг, А. (1962-01-01). "Физические принципы построения обычных вирусов". Симпозиумы по количественной биологии в Колд-Спринг-Харбор . 27 : 1–24. doi :10.1101/SQB.1962.027.001.005. ISSN  0091-7451. PMID  14019094. Архивировано из оригинала 27.03.2024 . Получено 27.03.2024 .
  12. ^ ab Zandi, Roya; Reguera, David; Bruinsma, Robijn F.; Gelbart, William M.; Rudnick, Joseph (2004-11-02). «Происхождение икосаэдрической симметрии у вирусов». Труды Национальной академии наук . 101 (44): 15556–15560. doi : 10.1073/pnas.0405844101 . ISSN  0027-8424. PMC 524849. PMID 15486087  . 
  13. ^ abc Cohen, Fredric S. (март 2016 г.). «Как вирусы проникают в клетки». Biophysical Journal . 110 (5): 1028–1032. Bibcode : 2016BpJ...110.1028C. doi : 10.1016/j.bpj.2016.02.006. PMC 4788752. PMID  26958878 . 
  14. ^ "RTPCG-2". nasa.gov . Архивировано из оригинала 10 апреля 2024 года . Получено 10 апреля 2024 года .
  15. ^ ab Zandi, Roya; van der Schoot, Paul; Reguera, David; Kegel, Willem; Reiss, Howard (март 2006 г.). «Классическая теория зародышеобразования вирусных капсидов». Biophysical Journal . 90 (6): 1939–1948. Bibcode :2006BpJ....90.1939Z. doi :10.1529/biophysj.105.072975. PMC 1386774 . PMID  16387781. 
  16. ^ Сяо, Фань; Чэнь, Чжэ; Вэй, Цзысян; Тянь, Лейлей (август 2020 г.). «Гидрофобное взаимодействие: перспективная движущая сила для биомедицинского применения нуклеиновых кислот». Advanced Science . 7 (16). doi :10.1002/advs.202001048. ISSN  2198-3844. PMC 7435255 . PMID  32832360. 
  17. ^ abcde Duyvesteyn, Хелен М.Э.; Джинн, Хелен М.; Пиетиля, Майя К.; Вагнер, Армин; Хаттне, Йохан; Граймс, Джонатан М.; Хирвонен, Элина; Эванс, Гвиндаф; Парси, Мари-Лора; Заутер, Николас К.; Брюстер, Аарон С.; Хуисконен, Юха Т.; Стюарт, Дэвид И.; Саттон, Джефф; Бэмфорд, Деннис Х. (28 февраля 2018 г.). «На пути к кристаллографии вируса целлюло». Научные отчеты . 8 (1): 3771. Бибкод : 2018НатСР...8.3771Д. дои : 10.1038/s41598-018-21693-3. ISSN  2045-2322. PMC 5830620. PMID  29491457 . 
  18. ^ abcdef Rathore, Ishan; Mishra, Vandana; Bhaumik, Prasenjit (2021-05-10). «Достижения в макромолекулярной кристаллографии: от прошлого к настоящему». Новые темы в науках о жизни . 5 (1): 127–149. doi :10.1042/etls20200316. ISSN  2397-8554. PMID  33969867.
  19. ^ "ICTV 9th Report (2011): Tectiviridae - Figures". Международный комитет по таксономии вирусов (ICTV) . 2011. Архивировано из оригинала 23 июня 2022 года . Получено 10 апреля 2024 года .
  20. ^ Verdaguer, Nuria; Garriga, Damià; Fita, Ignacio (2013), Mateu, Mauricio G. (ред.), "Рентгеновская кристаллография вирусов", Structure and Physics of Viruses: An Integrated Textbook , т. 68, Dordrecht: Springer Netherlands, стр. 117–144, doi : 10.1007/978-94-007-6552-8_4, ISBN 978-94-007-6552-8, PMID  23737050 , получено 2024-04-09
  21. ^ abc Ali, Asif; Chiang, Yi Wai; Santos, Rafael M. (февраль 2022 г.). «Методы рентгеновской дифракции для характеристики минералов: обзор для инженеров по основам, приложениям и направлениям исследований». Minerals . 12 (2): 205. Bibcode :2022Mine...12..205A. doi : 10.3390/min12020205 . ISSN  2075-163X.
  22. ^ ab Goldsmith, Cynthia S.; Miller, Sara E. (октябрь 2009 г.). «Современное использование электронной микроскопии для обнаружения вирусов». Clinical Microbiology Reviews . 22 (4): 552–563. doi :10.1128/CMR.00027-09. ISSN  0893-8512. PMC 2772359. PMID 19822888  . 
  23. ^ abc Guaita, Margherita; Watters, Scott C.; Loerch, Sarah (2022-12-01). "Последние достижения и текущие тенденции в криоэлектронной микроскопии". Current Opinion in Structural Biology . 77 : 102484. doi : 10.1016/j.sbi.2022.102484. ISSN  0959-440X. PMC 10266358. PMID 36323134  . 
  24. ^ Margaritondo, G.; Rebernik Ribic, P. (2011-03-01). "Упрощенное описание рентгеновских лазеров на свободных электронах". Journal of Synchrotron Radiation . 18 (2): 101–108. Bibcode :2011JSynR..18..101M. doi :10.1107/S090904951004896X. ISSN  0909-0495. PMC 3042323 . PMID  21335894. Архивировано из оригинала 2024-04-20 . Получено 09.04.2024 . 
  25. ^ Стефано, Джордж Б.; Крим, Ричард М. (октябрь 2022 г.). «Вирусы расширяют определение жизни путем геномного включения искусственного интеллекта и процессов машинного обучения». Current Neuropharmacology . 20 (10): 1888–1893. doi :10.2174/1570159X20666220420121746. PMC 9886803. PMID  35450524 . 
  26. ^ ab McPherson, Alexander; Gavira, Jose A. (2014-01-01). "Введение в кристаллизацию белков". Acta Crystallographica Section F . 70 (1): 2–20. Bibcode :2014AcCrF..70....2M. doi :10.1107/S2053230X13033141. ISSN  2053-230X. PMC 3943105 . PMID  24419610. Архивировано из оригинала 2024-03-27 . Получено 2024-03-27 .